Borrelia + VIsE IgG ELISA

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1 Arbeitsanleitung Borrelia + VIsE IgG ELISA Enzymimmunoassay zur qualitativen oder quantitativen in-vitro- Bestimmung von IgG-Antikörpern gegen das Borrelia burgdorferi in humanem Serum, Plasma und Liquor. Es werden Infektionen mit allen drei Borrelia burgdorferi-subspecies (garinii, afzelii und sensu strictu) erfasst. RE C I B L I N T E R N A T I O N A L G M B H Flughafenstrasse 52a Phone: +49 (0) IBL@IBL-International.com D Hamburg, Germany Fax: +49 (0)

2 1. ZWECKBESTIMMUNG Enzymimmunoassay zur qualitativen oder quantitativen in-vitro-bestimmung von IgG-Antikörpern gegen das Borrelia burgdorferi in humanem Serum, Plasma und Liquor. Es werden Infektionen mit allen drei Borrelia burgdorferi-subspecies (garinii, afzelii und sensu strictu) erfasst. 2. KLINISCHE BEDEUTUNG Die Lyme-Borreliose, die durch die Infektionen mit der Spirochaete Borrelia burgdorferi ausgelöst wird, stellt heute die häufigste durch Zecken übertragene Infektionskrankheit in Europa und den USA dar. Es handelt sich dabei um eine multisystemische Erkrankung mit vielfältigen klinischen Manifestationen. Die Krankheit verläuft in drei Stadien mit zunehmend schwerem Krankheitsbild. Typisch für die Akutphase ist das Erythema chronicum migrans (ECM), das häufig von grippeähnlichen Symptomen begleitet wird. Später können Arthritis, Karditis sowie neurologische und dermatologische Manifestationen auftreten. Obwohl die Borreliose in allen Stadien mit Antibiotika behandelt werden kann, ist eine frühestmögliche Behandlung wegen der besseren Heilungschancen wünschenswert. Daher ist eine sichere und sensitive Labordiagnose gerade in den frühen Stadien von großer Wichtigkeit. IgM-Antikörper treten meist ca. 3 Wochen, IgG-Antikörper 4 6 Wochen nach Beginn der Infektion auf. Die Akutphasen zeichnen sich im Allgemeinen durch hohe IgM-Antikörperkonzentrationen im Serum aus. Dabei richtet sich die frühe Immunantwort hauptsächlich gegen das Flagellinpeptid (41 kda) und gegen das Outer Surface Protein C (OspC, 23 kda). Das Flagellinpeptid besteht aus einem Borrelien-spezifischen Bereich und Bereichen, die auch bei anderen Bakterien vorkommen. Bei spontan oder therapiebedingt abklingenden Akutphasen bzw. beim Übergang zu chronischen Stadien können hohe Serum-IgG-Konzentrationen neben niedrigen bis negativen IgM-Antikörpertitern auftreten. Auch hier ist eine Therapie erforderlich. Aus diesem Grunde ist die Durchführung des Borrelien-IgG-Tests insbesondere dann sinnvoll, wenn Seren von Patienten mit Verdacht auf eine Borreliose negativ im Borrelia 14 kda OspC IgM ELISA sind oder wenn eine genauere Abklärung des Immunstatus stattfinden soll. Im vorliegenden Test wird rekombinantes Borrelia burgdorferi VlsE Antigen sowie eine hochspezifische Voll- Lysat Antigenmischung von B. burgdorferi sensu strictu, B. afzelii und B. garinii verwendet. Durch die Auswahl der Antigene werden mit extrem hoher Sensitivität und Spezifität IgG-Antikörper von der einsetzenden IgG-Antwort bis nach der vollständigen Ausheilung der Erkrankung erkannt. Erst 2 4 Monate später sinken die IgG-Titer deutlich ab. 3. TESTPRINZIP Sandwich-Enzymimmunoassay (ELISA). Die Wells der Mikrotiterstreifen sind mit Antigen beschichtet. Die spezifischen Antikörper der Probe binden an die Antigen-beschichteten Wells und werden von einem zweiten enzymmarkierten Antikörper (E-Ab), der gegen humanes IgG gerichtet ist, detektiert. Die Intensität der gebildeten Farbe nach der Substratreaktion ist proportional zur IgG-Konzentration. Die Ergebnisse der Proben können direkt anhand der Standardkurve oder des Cut-off Standards bestimmt werden. 4. WARNHINWEISE UND VORSICHTSMASSNAHMEN 1. Nur zum In-vitro-Gebrauch. Nur für den Gebrauch durch Fachpersonal. 2. Vor der Testdurchführung sollte die Arbeitsanleitung vollständig und sorgfältig gelesen werden und verstanden worden sein. Die gültige Version aus dem Kit verwenden. 3. Im Falle einer erheblichen Beschädigung der Testpackung ist IBL bzw. der jeweilige Lieferant innerhalb einer Woche nach Empfang der Ware schriftlich zu benachrichtigen. Beschädigte Komponenten dürfen nicht zur Testdurchführung verwendet werden, sondern sollten solange aufbewahrt werden, bis der Transportschaden endgültig geregelt ist. 4. Chargen-Nummer und Verfallsdatum beachten. Es dürfen keine Reagenzien aus unterschiedlichen Chargen in einem Test verwendet werden. Verfallene Reagenzien dürfen nicht verwendet werden. 5. Gute Laborpraxis und Sicherheitsrichtlinien beachten. Je nach Bedarf sollten Laborkittel, Einmal- Latexhandschuhe und Schutzbrillen getragen werden. 6. Reagenzien dieses Kits, die Gefahrstoffe enthalten, können Reizungen der Augen und der Haut hervorrufen. Siehe Angaben in KOMPONENTEN DES KITS und auf den Etiketten. Sicherheitsdatenblätter für dieses Produkt sind auf der IBL-Homepage zum Download verfügbar oder auf Anfrage direkt von IBL erhältlich. 7. Chemikalien und vorbereitete oder gebrauchte Reagenzien sind unter Beachtung der jeweiligen nationalen Bestimmungen als Gefahrstoffabfall zu entsorgen. Version / 8

3 8. Das Reinigungspersonal ist durch das Fachpersonal bezüglich möglicher Gefahren und Umgang anzuleiten. 9. Kontakt mit Stopplösung vermeiden. Kann Hautreizungen und Verätzungen hervorrufen. 10. Alle Reagenzien dieses Kits, die humanes Serum oder Plasma enthalten, ergaben bei der Prüfung auf anti-hcv, HBsAg bzw. Antikörper gegen HIV I/II-Virus ein negatives Ergebnis. Trotzdem kann das Vorhandensein solcher infektiöser Erreger nicht mit absoluter Sicherheit ausgeschlossen werden. Die Reagenzien sollten deshalb wie potentiell infektiöses Material behandelt werden. 5. LAGERUNG UND HALTBARKEIT Der Kit wird bei Umgebungstemperatur angeliefert und sollte bei 2-8 C gelagert werden. Vor Hitze und direkter Sonneneinstrahlung schützen. Hinweise zur Lagerung und Haltbarkeit der Proben und vorbereiteten Reagenzien sind den entsprechenden Kapiteln zu entnehmen. Die Mikrotiterplatte ist nach dem Öffnen der Verpackung 3 Monate haltbar, wenn der Beutel sorgfältig wieder verschlossen und bei 2-8 C gelagert wird. 6. PROBENGEWINNUNG UND -AUFBEWAHRUNG Serum, Plasma (EDTA) Die üblichen Vorsichtsmaßnahmen bei der Blutabnahme sind einzuhalten. Die chemische Integrität der Blutproben muss vom Zeitpunkt der Blutabnahme bis zur Testdurchführung erhalten bleiben. Keine hämolytischen, ikterischen oder lipämischen Proben verwenden. Getrübte Proben sollten vor der Testdurchführung zentrifugiert werden, um Partikel zu entfernen. Lagerung Serum/Plasma/Liquor: 2-8 C -20 C (aliquotiert) Haltbarkeit Serum/Plasma/Liquor: 5 Tage 12 Monate Vor Hitze und direkter Sonneneinstrahlung schützen. Wiederholtes Auftauen und Einfrieren vermeiden. 7. KOMPONENTEN DES KITS Anzahl / Menge Symbol 1 x 12 x 8 MTP 1 x 15 ml ENZCONJ 1 x 4 x 1.5 ml CAL A-D 1 x 1.5 ml CONTROL + 1 x 1.5 ml CONTROL - 1 x 100 ml DILBUF 1 x 100 ml WASHBUF CONC 1 x 15 ml TMB SUBS 1 x 15 ml TMB STOP Komponente Mikrotiterplatte Wells einzeln abbrechbar. Beschichtet mit spezifischem Antigen. Enzymkonjugat Gebrauchsfertig. Grün gefärbt. Enthält: anti-humanes IgG, konjugiert mit Peroxidase. Standard A D 2; 10; 50; 200 U/mL Standard B = Cut-off Standard Gebrauchsfertig. Enthält: IgG Antikörper gegen B. burgdorferi, Stabilisatoren. Positivkontrolle Gebrauchsfertig. Enthält: IgG Antikörper gegen B. burgdorferi, Stabilisatoren. Negativkontrolle Gebrauchsfertig. Enthält: Humanserum, Stabilisatoren. Verdünnungspuffer Gebrauchsfertig. Blau gefärbt. Waschpuffer, Konzentrat (10x) Enthält: Phosphatpuffer. TMB Substratlösung Gebrauchsfertig. Enthält: TMB, Puffer, Stabilisatoren. TMB Stopplösung Gebrauchsfertig. 1 M H 2SO ZUSÄTZLICHES MATERIAL (NICHT IM KIT ENTHALTEN) 1. Pipetten (Multipette Eppendorf oder vergleichbare Produkte, < 3 % VK). Volumina: 5; 10; 100; 1000 µl (verstellbar) 2. Vortex-Mischer 3. Röhrchen ( 1 ml) zur Probenverdünnung 4. Inkubator, 37 C 5. 8-Kanal Mikropipette mit Reagenziengefäßen 6. Waschflasche, automatisches oder halbautomatisches Waschsystem für Mikrotiterplatten Version / 8

4 7. Messgerät für Mikrotiterplatten zur Messung der Absorption bei 450 nm (Referenzwellenlänge nm) 8. Bidest. oder deionisiertes Wasser 9. Papiertücher, Pipettenspitzen, Stoppuhr 9. HINWEISE ZUR TESTDURCHFÜHRUNG 1. Fehler bei der Handhabung der Proben oder Abweichungen von der beschriebenen Testdurchführung können die Ergebnisse verfälschen. Die angegebenen Pipettiervolumina, Inkubationszeiten, Temperaturen und Vorbereitungsschritte sind unbedingt gemäß Arbeitsanleitung einzuhalten. Nur kalibrierte Pipetten und Geräte verwenden. 2. Sobald mit der Testdurchführung begonnen wird, sollten alle Arbeitsschritte ohne Unterbrechung durchgeführt werden. Es ist sicherzustellen, dass alle benötigten Reagenzien, Geräte und Hilfsmittel zur rechten Zeit zur Verfügung stehen. Alle Reagenzien und Proben müssen auf Raumtemperatur (18-25 C) gebracht und vor Gebrauch vorsichtig ohne Schaumbildung gemischt werden. 3. Kontaminationen der Reagenzien, Pipetten und Wells/Röhrchen sind zu vermeiden. Neue Einmal- Pipettenspitzen für jede zu pipettierende Komponente und jede Probe verwenden. Die Deckel der Fläschchen nicht vertauschen. Nicht benötigte Fläschchen immer verschlossen halten. Wells/Röhrchen oder Reagenzien dürfen nicht wiederverwendet werden. 4. Es wird empfohlen, Doppelbestimmungen durchzuführen, um eventuelle Pipettierfehler zu erkennen. 5. Es sollte ein Pipettierschema verwendet werden um die Identifikation der Standards und Proben auf der Platte sicherzustellen. 6. Die Inkubationszeiten beeinflussen die Ergebnisse. Bei jedem Pipettierschritt sollten alle Wells in der gleichen Reihenfolge und im gleichen Zeittakt behandelt werden. Die Verwendung einer 8-Kanal- Mikropipette zum Pipettieren in alle Wells wird empfohlen. 7. Die korrekte Durchführung der Waschschritte ist entscheidend. Ungenügend gewaschene Wells ergeben falsche Ergebnisse. Die Verwendung einer Multikanalpipette oder eines automatischen Waschsystems für Mikrotiterplatten wird empfohlen. Zwischen den Inkubationen die Wells nicht austrocknen lassen. Beim Waschen und Ausschütteln dürfen die beschichteten Wells nicht beschädigt werden. Alle Reagenzien müssen daher mit Vorsicht pipettiert werden. Beim Waschvorgang ist es wichtig, dass alle Wells vollständig und gleichmäßig mit Waschpuffer gefüllt werden und nach dem Ausschütteln kein Rückstand an Flüssigkeit zurückbleibt. 8. Feuchtigkeit beeinflusst die beschichteten Wells/Röhrchen. Verpackung nicht öffnen bevor Raumtemperatur erreicht ist. Nicht benötigte Wells/Röhrchen sofort in den wieder verschließbaren Beutel mit Trockenmittel zurückgeben. 10. TESTVORBEREITUNGEN Vorbereitung konzentrierter Komponenten Verd. / rekonst. 100 ml Komponente Diluent Verhältnis Bemerkungen Lagerung Haltbarkeit WASHBUF CONC Probenverdünnung ad 1000 ml bidest. Wasser 1:10 Kristalle bei C lösen Serum, Plasma Probe zu verdünnen mit Verhältnis Bemerkungen Serum, Plasma immer DILBUF 1:101 z.b. 10 µl + 1 ml Proben mit Konzentrationen über dem höchsten Standard müssen weiter verdünnt werden. 2-8 C 2 Monate Version / 8

5 Serum/Liquor Für die Untersuchung von Liquor nach Reiber sollten ähnliche Konzentrationen oder Cut-off Indices (COI) im OD Bereich von für Serum und Liquor verwendet werden. Dies ist normalerweise mit den folgenden Verdünnungen gewährleistet: Probe zu verdünnen mit Verhältnis Bemerkungen Serum immer DILBUF 1:401 z.b. 5 µl + 2 ml Liquor immer DILBUF 1:4 50 µl µl Die Cut-off Indices werden mit den Verdünnungsfaktoren für jede Verdünnung in Relation zur 1:101 Verdünnung korrigiert: Der Cut-off Index für die 1:401 Serum Verdünnung wird mit 4 multipliziert und die 1:4 Liquor Verdünnung durch 25 dividiert. Wenn die Ergebnisse nicht im OD Bereich sind, sollten die Proben als Verdünnungsreihe gemessen werden. Dafür werden folgende Verdünnungen empfohlen: Serum 1:100 1:200 1:400 1:800 1:1600 Liquor 1:2 1:4 1:8 1:16 1: TESTDURCHFÜHRUNG 1. Je 100 µl von jedem Standard, jeder Kontrolle sowie verdünnten Probe in die entsprechenden Wells der Mikrotiterplatte pipettieren. Für den qualitativen Test wird nur Standard B (Cut-off Standard) verwendet h bei 37 C inkubieren. Haftklebefolie oder Feuchtigkeitskammer verwenden. 3. Folie entfernen. Inkubationslösung verwerfen. Platte 3 x mit je 300 µl verdünntem Waschpuffer waschen. Restliche Flüssigkeit auf Papiertüchern ausklopfen µl Enzymkonjugat in jedes Well pipettieren min bei 37 C inkubieren. Haftklebefolie oder Feuchtigkeitskammer verwenden. 6. Folie entfernen. Inkubationslösung verwerfen. Platte 3 x mit je 300 µl verdünntem Waschpuffer waschen. Restliche Flüssigkeit auf Papiertüchern ausklopfen. 7. Substrat- und Stopplösung möglichst mit einer 8-Kanal-Pipette pipettieren und Substrat- und Stopplösung in denselben Zeitintervallen zugeben. Mit positivem Vorhub pipettieren, um die Bildung von Luftbläschen zu vermeiden µl TMB Substratlösung in jedes Well pipettieren min bei RT im Dunkeln inkubieren. 10. Substratreaktion durch Zugabe von je 100 µl TMB Stopplösung in jedes Well stoppen. Platte kurz schütteln. 11. Die optische Dichte innerhalb von 60 min nach Zugabe der Stopplösung mit einem Photometer bei 450 nm messen (Referenzwellenlänge: nm). 12. QUALITÄTSKONTROLLE Die Testergebnisse sind nur gültig, wenn der Test gemäß der vorliegenden Arbeitsanleitung abgearbeitet wurde. Ferner muss der Anwender die GLP-Regeln (Good Laboratory Practice) oder vergleichbare Normen/Gesetze beachten. Anwender und/oder Labor müssen zur Diagnosestellung ein gemäß GLP validiertes System verwenden. Alle Kit-Kontrollen müssen innerhalb der Akzeptanzbereiche, die auf den Etiketten und dem QC-Zertifikat angegeben sind, gefunden werden. Wenn die Kriterien nicht erfüllt sind, sind die Ergebnisse ungültig und der Test sollte wiederholt werden. Jedes Labor sollte darüber hinaus eigene bekannte Proben als weitere Kontrollen mitführen. Es wird empfohlen, an den einschlägigen Ringversuchen teilzunehmen. Bei Abweichungen sind die folgenden Fehlermöglichkeiten zu überprüfen: Haltbarkeit der (vorbereiteten) Reagenzien, Lagerungsbedingungen, Pipetten, Geräte und Hilfsmittel, Inkubationsbedingungen und Waschmethoden. Version / 8

6 13. TESTAUSWERTUNG Die Testauswertung kann wahlweise qualitativ oder quantitativ erfolgen Qualitative Auswertung Der Cut-off Wert ergibt sich aus der optischen Dichte (OD) des Standards B (Cut-off Standard). Der Cut-off Index (COI) wird aus der mittleren optischen Dichte der Probe und der des Cut-offs berechnet. Proben, deren optische Dichte sich nicht mehr als 10 % (Graubereich) von der des Cut-off Wertes unterscheidet, sind als grenzwertig zu beurteilen. Darüberliegende Proben sind positiv, darunterliegende negativ zu bewerten. Typisches Beispiel: Cut-off = OD (Standard B, Cut-off Standard) = 0.45 OD (Probe) = 0.60 Cut-off Index (COI): 0.60 / 0.45 = Die Probe ist als positiv zu bewerten Quantitative Auswertung Die erhaltenen OD der Standards (y-achse, linear) gegen deren Konzentration (x-achse, logarithmisch) auftragen, entweder auf semi-logarithmischem Papier oder durch ein entsprechendes Computerprogramm. Bei Verwendung eines Computerprogramms werden die Cubic-Spline-Methode, 4-Parameter-Analyse (linlog) oder Logit-Log-Berechnung empfohlen. Zur Berechnung der Standardkurve sollten alle Werte der Standards verwendet werden (bei Doppelwerten kann ein offensichtlicher Ausreißerwert eliminiert und stattdessen der plausiblere Einzelwert verwendet werden). Die Konzentrationen der Proben können von der Standardkurve abgelesen werden. Die standardmäßig durchzuführende Verdünnung ist in dem oben beschriebenen Auswerteverfahren bereits berücksichtigt. Wenn Proben anders oder weiter verdünnt wurden, müssen die Ergebnisse mit dem entsprechenden Verdünnungsfaktor multipliziert werden. Proben, die oberhalb des höchsten Standards gemessen werden, können wie in TESTVORBEREITUNGEN beschrieben verdünnt und erneut analysiert werden. Typische Standardkurve (Beispiel. Nicht zur Testauswertung verwenden!) Standard U/mL Mittelwert OD A B C D (OD) Borrelia + VlsE IgG ELISA (U/mL) Version / 8

7 14. INTERPRETATION DER ERGEBNISSE Methode Bereich Interpretation Therapeutische Konsequenzen > 11 U/mL positiv sollten nicht allein aufgrund der Quantitativ 9 11 U/mL grenzwertig mit diesem Test ermittelten (Standardkurve): < 9 U/mL negativ Werte getroffen werden, sondern nur unter Qualitativ (Cut-off Index, COI): > 1.1 positiv grenzwertig < 0.9 negativ Berücksichtigung aller klinischen Beobachtungen und weiterer diagnostischer Mittel. IgG-negative Werte sprechen bei gleichzeitig negativem IgM im Borrelia 14 kda + OspC IgM ELISA gegen eine akute Borreliose. Dennoch kann eine frische Borrelien-Infektion nicht ausgeschlossen werden, wenn die Blutentnahme weniger als 3 Wochen nach dem Zeckenstich erfolgte, da in diesem Zeitraum noch keine spezifischen Antikörper auftreten. Bei Patienten mit positiven IgM-Werten ist eine akute behandlungsbedürftige Borreliose in der frühen Infektionsphase anzunehmen. IgG-grenzwertige Resultate können zusammen sowohl mit positiven als auch mit negativen IgM-Werten im Borrelia 14 kda + OspC IgM ELISA für eine schon länger bestehende akute Borreliose in der späten Infektionsphase oder in einem chronischen Verlauf oder für eine unspezifische polyklonale Antikörperstimulation aufgrund eines anderen akuten Infektes sprechen. Eine polyklonale Antikörperreaktion läßt sich bei diesen Seren durch eine Western-Blot-Analyse mit einem Vollantigen (Borrelien-Ultrasonikat) ausschließen. Grenzwertige IgG-Werte sollten durch eine Verlaufskontrolle nach 14 Tagen nochmals im ELISA abgeklärt werden. Bei einer akuten Borreliose verändert sich der IgG-Wert in dieser kurzen Zeit nicht, während er bei einer polyklonalen Immunantwort meist absinkt. IgG-positive Werte sprechen zusammen mit positiven und grenzwertigen IgM-Werten im Borrelia 14 kda + OspC IgM ELISA für eine schon länger persistierende akute behandlungsbedürftige Borreliose. IgG-positive Ergebnisse, insbesondere bei sehr hohen Einheiten, sprechen bei einer gleichzeitig negativen IgM- Immunantwort sehr häufig für eine unspezifische Reaktion aufgrund einer polyklonalen Antikörperstimulation durch einen anderen Infekt. Diese unspezifischen Werte fallen innerhalb 2-3 Wochen sehr stark ab, während eine alleinige Borrelien-spezifische IgG-Immunreaktion in diesem Zeitraum unverändert bleibt. Eine polyklonale Antikörperstimulation bei positiven IgG-Ergebnissen läßt sich ebenfalls durch eine Western-Blot-Analyse abklären. Der Vorteil des Borrelia IgG ELISA-Tests liegt in seiner hohen Sensitivität bei hoher Spezifität durch den Einsatz von rekombinantem Borrelia burgdorferi VlsE Antigen in Kombination mit einer hochspezifischen Vollantigen-Mischung aus Borrelia burgdorferi sensu stricto, afzelii und garinii als Antigen. Dadurch können sowohl frühe Stadien einer Borrelien-Infektion als auch lange persistierende bzw. chronisch verlaufende Borrelien-Infektionen mit hoher Sensitivität und Spezifität nachgewiesen werden. Der Borrelia IgG ELISA läßt sich ebenfalls zur Therapie-Erfolgskontrolle einsetzen, jedoch sinken bei einer ausheilenden Borrelien-Infektion generell die Antikörperkonzentrationen erst nach 2-4 Monaten deutlich ab. 15. GRENZEN DES VERFAHRENS Die korrekte Durchführung der Probengewinnung und Aufbewahrung ist entscheidend für die Testergebnisse. Näheres siehe PROBENGEWINNUNG UND -AUFBEWAHRUNG. Angaben zu Kreuzreaktivitäten sind im Kapitel TESTCHARAKTERISTIKA zu finden. Azid und Thimerosal in Konzentrationen > 0.1 % stören im Assay und führen evtl. zu falschen Ergebnissen. Die folgenden Blutbestandteile haben bis zu der angegebenen Konzentration keinen signifikanten Einfluss auf die Testergebnisse (+/- 20%): Hämoglobin Bilirubin Triglyceride 2.0 mg/ml 0.3 mg/ml 2.5 mg/ml Version / 8

8 16. TESTCHARAKTERISTIKA Analytische Spezifität (Kreuzreaktivität) Patientengruppe Negative Ergebnisse / bestimmte Proben Lues (Treponema pallidum) 16/16 Rheumafaktor positiv 6/7 CRP erhöht 9/9 CCP IgG positiv 13/14 Uric acid erhöht 10/12 ANA positiv 5/6 Präzision Bereich COI / U/mL VK (%) Intra-Assay < 1 / < 10 7 n = 24 > 1 / > / Inter-Assay 1.7 / n = / / Linearität Rel. Spezifität: Methodenvergleich versus Immuno Blot Rel. Sensitivität: Methodenvergleich versus Immuno Blot Assayvergleich Bereich (OD) Serielle Verdünnung Bereich Bereich (%) :4 1: Borrelia afzelii IgG Blot IBL-Assay positiv negativ total positiv negativ total Borrelia recombinant IgG Blot + Borrelia afzelii IgG Blot IBL-Assay positiv negativ total positiv Rel. Spezifität 98.3 % negativ Rel. Sensitivität 94.1 % total * Proben n IBL-Assay Vergleichstest 1 Vergleichstest 2 ECM positiv 49 % 30 % 33 % 116 grenzwertig 0 3 % 2 % Neuroborreliose positiv 74 % 68 % 58 % 38 grenzwertig 0 3 % 0 Automatisierung Dieser Test wurde validiert mit, z.b., BEPIII (Dade Behring), TRITURUS (Grifols) Der Borrelia IgG ELISA wurde mit Serum und Liquor Proben in 5 geeigneten Verdünnungen durchgeführt: Serum 1:100-1:1600 und Liquor 1:2-1:32. Die Serum/Liquor Paare wurden den Patienten am selben Tag entnommen und die Auswertung der Ergebnisse wurde basierend auf dem Schema zur Liquor Diagnostik nach Prof. Reiber CSF Bestimmung durchgeführt. Für die Validierung wurden Serum/Liquor Paare mit intrathekalen Borrelia spezifischen IgG mit und ohne Schrankenstörung des Blut-Liquorkompartments eingesetzt. Alle Ergebnisse, die mit dem IBL International ELISA ermittelt wurden, waren in Übereinstimmung mit den klinischen Symptomen und den Ergebnissen der Referenzteste. * Proben positiv im Vergleichstest Version / 8

9 17. LITERATUR ÜBER DAS PRODUKT 1. Aguero-Rosenfeld, M. E., Wang, G., Schwartz, I., Wormser, G. P., Diagnosis of Lyme Borreliosis, Clin. Microbiol. Reviews, 18(3), : (2005) 2. Bacon, R.M., Biggerstaff, B.J., Schriefer, M. E., Gilmore, R.D., Philipp, M.T., Steere, A.C., Wormser, G.P., Marques, A.R., Johnson B.J.B., Serodiagnosis of Lyme Disease by Kinetic Enzyme-Linked Immunosorbent Assay Using Recombinant VlsE1 or Peptide Antigens of Borrelia burgdorferi Compared with 2-Tiered Testing Using Whole-Cell Lysates, JID 187: : (2003) 3. Barbour, A. Laboratory Aspects of Lyme Borreliosis. Clin Micr. Rev. 1: , Brouqui, P., Bacellar, F., Baranton G, Birtles RJ, Bjoersdorff A, Blanco JR, Caruso G, Cinco M, Fournier PE, Francavilla E, Jensenius M, Kazar J, Laferl H, Lakos A, Lotric Furlan S, Maurin M, Oteo JA, Parola P, Perez-Eid C, Peter O, Postic D, Raoult D, Tellez A, Tselentis Y, Wilske B; ESCMID Study Group on Coxiella, Anaplasma, Rickettsia and Bartonella; European Network for Surveillance of Tick-Borne Diseases: Guidelines for the diagnosis of tick-borne bacterial diseases in Europe. Clin. Microbiol. Infect. 10(12): (2004) 5. Burgdorfer, W., Discovery of the Myme Disease Spirochete and Its Realation to Tick Vectors, Yale J. Biol. Med. 57: : Fingerle, V, Wilske, B, Stage-oriented treatment of Lyme borreliosis. MMW Fortschr. Med. 148(25): (2006) 7. Guidelines from the Canadian Public Health Laboratory network, The laboratory diagnosis of Lyme Borreliosis, Can. J. Infect. Dis. Med. Microbiol. 18(2), : Kaiser, R., Rauer, S., Advantage of recombinat borrelial proteins for serodiagnosis of neuroborreliosis, J. Med. Microbiol. 48, 5-10: Nau, R., Christen, H-J, Eiffert H., Lyme-Borreliose-aktueller kenntnisstand, Deutsches Ärzteblatt 106 (5): Rauer, S, Spohn, N., Rasiah, C., Neubert, U., Vogt, A., Enzyme-linked immunosorbent assay using recombinant OspC and the internal 14-kDa Flagellin fragment for serodiagnosis of early Lyme Disease. J. Clin. Microbiol. 36 (4): : (1998) 11. Rahn, D.W., Malawista, E., Lyme Disease, West J. Med. 154: : Robert-Koch-Institut, Ratgeber Infektionskrankheiten Lyme-Borreliose, Epid. Bulletin 17, : (2007) 13. Robert-Koch-Institut, Ratgeber Infektionskrankheiten Empfehlungen zur Diagnostik und Therapie der Lyme-Borreliose, Epid. Bulletin 22, : (1998) 14. Robert-Koch-Institut, Lyme-Borreliose: Analyse der gemeldeten Erkrankungsfälle der Jahre 2007 bis 2009 aus den sechs östlichen Bundesländern, Epid. Bulletin 12, : (2010) 15. Rupprecht, T. A., Koedel, U., Fingerle, V., Pfister, H-W., The Pathogenesis of Lyme neuroborreliosis: From Infection to Inflammation, Mol. Med. 14 (3-4): : Stanek, G., Strle, F., Lyme Borreliosis: a European perspective on diagnosis and clinical management, Curr Opin. Infect. Dis. 22(5): (2009) 17. Wilske, B., Fingerle, V., Schulte-Spechtel, U., Microbiological and serological diagnosis of Lyme Borreliosis, FEMS Immunol. Med. Microbiol. 49, 13-21: Wilske B, Zöller L, Brade V, Eiffert M, Göbel UB, Stanek G, et al. MIQ 12 Lyme-Borreliose. Qualitätsstandards in der mikrobiologisch-infektiologischen Diagnostik. München: Urban & Fischer, 2000 (in Englisch via Internet unter DGHM.org oder NRZ-Borrelien.LMU.de). Version / 8

10 Symbols / Symbole / Symbôles / Símbolos / Símbolos / Σύµβολα REF LOT Cat.-No.: / Kat.-Nr.: / No.- Cat.: / Cat.-No.: / N.º Cat.: / N. Cat.: / Αριθµός-Κατ.: Lot-No.: / Chargen-Bez.: / No. Lot: / Lot-No.: / Lote N.º: / Lotto n.: / Αριθµός -Παραγωγή: Use by: / Verwendbar bis: / Utiliser à: / Usado por: / Usar até: / Da utilizzare entro: / Χρησιµοποιείται από: No. of Tests: / Kitgröße: / Nb. de Tests: / No. de Determ.: / N.º de Testes: / Quantità dei tests: / Αριθµός εξετάσεων: CONC Concentrate / Konzentrat / Concentré / Concentrar / Concentrado / Concentrato / Συµπύκνωµα LYO IVD Lyophilized / Lyophilisat / Lyophilisé / Liofilizado / Liofilizado / Liofilizzato / Λυοφιλιασµένο In Vitro Diagnostic Medical Device. / In-vitro-Diagnostikum. / Appareil Médical pour Diagnostics In Vitro. / Dispositivo Médico para Diagnóstico In Vitro. / Equipamento Médico de Diagnóstico In Vitro. / Dispositivo Medico Diagnostico In vitro. / Ιατρική συσκευή για In-Vitro ιάγνωση. Evaluation kit. / Nur für Leistungsbewertungszwecke. / Kit pour évaluation. / Juego de Reactivos para Evaluació. / Kit de avaliação. / Kit di evaluazione. / Κιτ Αξιολόγησης. Read instructions before use. / Arbeitsanleitung lesen. / Lire la fiche technique avant emploi. / Lea las instrucciones antes de usar. / Ler as instruções antes de usar. / Leggere le istruzioni prima dell uso. / ιαβάστε τις οδηγίες πριν την χρήση. Keep away from heat or direct sun light. / Vor Hitze und direkter Sonneneinstrahlung schützen. / Garder à l abri de la chaleur et de toute exposition lumineuse. / Manténgase alejado del calor o la luz solar directa. / Manter longe do calor ou luz solar directa. / Non esporre ai raggi solari. / Να φυλάσσεται µακριά από θερµότητα και άµεση επαφή µε το φως του ηλίου. Store at: / Lagern bei: / Stocker à: / Almacene a: / Armazenar a: / Conservare a: / Αποθήκευση στους: Manufacturer: / Hersteller: / Fabricant: / Productor: / Fabricante: / Fabbricante: / Παραγωγός: Caution! / Vorsicht! / Attention! / Precaución! / Cuidado! / Attenzione! / Προσοχή! Symbols of the kit components see MATERIALS SUPPLIED. Die Symbole der Komponenten sind im Kapitel KOMPONENTEN DES KITS beschrieben. Voir MATERIEL FOURNI pour les symbôles des composants du kit. Símbolos de los componentes del juego de reactivos, vea MATERIALES SUMINISTRADOS. Para símbolos dos componentes do kit ver MATERIAIS FORNECIDOS. Per i simboli dei componenti del kit si veda COMPONENTI DEL KIT. Για τα σύµβολα των συστατικών του κιτ συµβουλευτείτε το ΠΑΡΕΧΟΜΕΝΑ ΥΛΙΚΑ. IBL AFFILIATES WORLDWIDE IBL International GmbH Flughafenstr. 52A, Hamburg, Germany IBL International Corp. 194 Wildcat Road, Toronto, Ontario M3J 2N5, Canada Tel.: + 49 (0) Fax: IBL@IBL-International.com WEB: Tel.: +1 (416) Fax: Sales@IBL-International.com WEB: LIABILITY: Complaints will be accepted in each mode written or vocal. Preferred is that the complaint is accompanied with the test performance and results. Any modification of the test procedure or exchange or mixing of components of different lots could negatively affect the results. These cases invalidate any claim for replacement. Regardless, in the event of any claim, the manufacturer s liability is not to exceed the value of the test kit. Any damage caused to the kit during transportation is not subject to the liability of the manufacturer Symbols Version 3.5 /