Anhang C Photographien

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Martina Weiss
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1 142 Anhang C Photographien gramnegative Stäbchen E. sakazakii im Elektronenmikroskop 26 Pigmentbildung: TSA-Agar h/rt TSA-α-MUG-Agar Fluoreszenzbildung (++) unter UV-Licht auf TSA-α-MUG-Agar nach 18-24h/37 C Escherichia coli auf VRBD-Agar nach API 20 E-Teststreifen nach Profil: E. sakazakii auf Blutagar nach Abbildung C.1 Photographien allgemeiner Art 26

2 Photographien 143 Tabelle C.1 Morphologie von E. sakazakii-isolaten auf Blutagar nach Blutagar Koloniemorphologie Photographie Typ I: 1-3 mm große, runde, glatte, glänzende Kolonien mit gelbem leicht erhabenem Zentrum und hell-graugelbem bis durchscheinendem Rand Typ II: 1 mm große, hell-graugelbe, leicht erhabene, runde Kolonien mit glatt-glänzender Oberfläche Typ III: 1-1,5 mm große, leicht erhabene, runde, gelbe Kolonien mit dünnem, durchscheinendem bis hell-graugelbem Rand. Die Oberfläche ist glatt und glänzend. Typ IV: 2 mm große, unregelmäßig runde, erhabene Kolonien mit rauer und matter Oberfläche (Radspeichen, Blumenmuster) Typ V: siehe Typ I (matt)

3 144 Anhang C Tabelle C.2 Morphologie von E. sakazakii-isolaten auf TSA-Agar nach h/rt TSA-Agar Koloniemorphologie Photographie Typ I: 1-1,5 mm große, runde, erhabene, gelb-orange, grießkornartige Kolonien mit matter und rauer Oberfläche Typ II: bis 2 mm große, runde, flache, gelb-orange Kolonien mit glatter und glänzender Oberfläche Typ III: bis 2 mm große, erhabene, runde, gelb-orange Kolonien mit rauer und matter Oberflächenstruktur (Radspeichen-, Blumenmuster)

4 Photographien 145 Tabelle C.3 Morphologie von E. sakazakii-isolaten auf TSA-α-MUG-Agar TSA-α-MUG-Agar Koloniemorphologie Photographie Typ I: 1-3 mm große, runde Kolonien mit hellgelbem, leicht erhabenem Zentrum und heller werdendem bis durchscheinendem Rand. Die Oberfläche ist glatt und glänzend. Unter der UV- Lampe zeigt sich eine deutliche Fluoreszenz (++). Typ II: 1-2 mm große, runde, leicht erhabene Kolonien mit einer Zipfelbildung im Zentrum. Die Oberfläche ist rau und matt. Unter der UV-Lampe zeigt sich eine deutliche Fluoreszenz (++).

5 146 Anhang C Tabelle C.4 Morphologie von E. sakazakii-isolaten auf VRBD-Agar VRBD Koloniemorphologie Photographie Typ I: bis 7 mm große, unregelmäßig runde, leicht erhabene, ineinanderfließende, schleimige Kolonien mit gelb-violettem Zentrum und gelb-violettem bis durchsichtig werdendem Rand. Die Oberfläche ist glatt und glänzend. Typ II: Typ III: 3-4 mm große, unregelmäßig runde, ineinanderfließende Kolonien mit gelbviolettem Zentrum und violettem bis durchsichtig werdendem Rand. Die Oberfläche ist glatt und glänzend. Es werden Kolonien mit und ohne Präzipitationshof ausgebildet. bis 3 mm große, unregelmäßig runde, erhabene Kolonien mit violettem Boden und gelb-rosafarbener, glatter, matter Oberfläche. Die Kolonien bilden eine deutliche Präzipitation aus. Typ IV: 5-6 mm große, erhabene, runde matte Kolonien mit gelbem Zentrum und violettem Rand. An der Oberfläche bilden sich blumenartige Falten aus. Typ V: 2-3 mm große, unregelmäßig runde, flache, raue, matte Kolonien mit violettem Boden und gelb bis rosafarbener Oberfläche. Die Kolonien bilden eine deutliche Präzipitation aus. Typ VI: 3-4 mm große, unregelmäßig runde, flache Kolonien mit gelbem Zentrum und violettem Rand. Die Oberfläche ist rau und matt. Es kommt teilweise zur Ausbildung einer Präzipitation.

6 Photographien 147 Tabelle C.5 Morphologie von E. sakazakii-isolaten auf VRBD-Agar h/30 C VRBD Koloniemorphologie Photographie Typ I: 3-6 mm große, eher flache, runde Kolonien mit gelbem, flachem bis leicht erhabenem Zentrum und gelb-violettem bis durchsichtig werdendem Rand. Die Oberfläche ist glatt und glänzend bzw. matt. Typ II: 7-10 mm große, ineinanderfließende, schleimige Kolonien mit gelbem, erhabenem Zentrum und gelb-violettem bis durchsichtig werdendem Rand. Die Oberfläche ist glatt und glänzend. Typ III: 5-10 mm große, unregelmäßig runde, erhabene Kolonien mit gelbem Zentrum und violettem Rand. Das raue, glänzende Erscheinungsbild der Oberfläche entsteht durch blumenartige Faltenbildung. Typ IV: bis 5 mm große, runde, flache Kolonien mit gelb-violettem Zentrum und violettem Rand. Die raue, matte Oberfläche weist ein deutliches Blumenmuster auf. Um die Kolonien bildet sich ein Präzipitationshof aus. Typ V: 5 mm große, erhabene, flache, unregelmäßig runde, ineinanderfließende, gelb-violette Kolonien mit glatt-glänzender Oberfläche.

7 148 Anhang C Tabelle C.6 Koloniemorphologie von MTA-Isolat 2/696 MRI Nr. Werk Probenahme Probenart Entnahmeort API-Profil PCR 2/ MTA Walzentrocknung/ neg. Nährmedium Koloniemorphologie Photographie Blutagar: bis 3 mm große, runde, glatte, weiße, glänzende Kolonien mit heller werdendem Rand TSA-Agar: h/rt 2 mm große, runde, flache Kolonien mit glatter und glänzender Oberfläche TSA-α-MUG- Agar: 2-4 mm große, weiß-gelbliche Kolonien mit leicht erhabenem Zentrum und heller werdendem bis durchsichtig werdendem Rand. Die Oberfläche ist glatt und glänzend. Fluoreszenz (+) VRBD-Agar: bis 3 mm große, unregelmäßig runde, erhabene, schleimige Kolonien mit violettem Boden und gelb-rosafarbener, glatter, matter Oberfläche. Die Kolonien bilden eine deutliche Präzipitation aus. VRBD-Agar: h/30 C 3-6 mm große, eher flache, leicht schleimige, runde Kolonien mit gelbem, flachem bis leicht erhabenem Zentrum und gelbviolettem bis durchsichtig werdendem Rand. Die Oberfläche ist glatt und glänzend bzw. matt.

8 Photographien 149 Tabelle C.7 Koloniemorphologie vom Umfeld-Isolat Q 41/376 MRI Nr. Werk Probenahme Probenart Entnahmeort API-Profil PCR 41/ Fläche vor Tür T2, 3. Bühne neg. Nährmedium Koloniemorphologie Photographie Blutagar: 3-4 mm große, ovale, gelborange, flache, teilweise ineinanderfließende Kolonien mit durchsichtigem Rand TSA-Agar: h/rt bis 2 mm große, runde, flache, gelb-orange Kolonien mit glattglänzender Oberfläche TSA-α-MUG- Agar: 2-3 mm große, hellgelb-orange, unregelmäßig runde Kolonien mit eingedelltem Zentrum. Die Kolonien zeigen eine deutliche Fluoreszenz (++). VRBD-Agar: bis 7 mm große, violette, erhabene, runde, schleimige Kolonien mit Präzipitationshof. Die Oberfläche ist glatt und glänzend. VRBD-Agar: h/30 C 7-10 mm große, ineinanderfließende, schleimige Kolonien mit gelbem, erhabenem Zentrum und gelb-violettem bis durchsichtig werdendem Rand. Die Oberfläche ist glatt und glänzend.

9 150 Anhang C Nasse Seite: Konzentratsumpf mit Auftragwalzen Trockene Seite: Trocknungswalze mit Schabemesser und Walzenvollmilchpulver Nasse Seite: Unmittelbares Produktionsumfeld Trockene Seite: Unmittelbares der Trocknungswalze Produktions-umfeld der Trocknungswalze Nasse Seite: Konzentratstandleitung, Auftragungswalzen Abbildung C.2 Produktionsumfeld: Direkter Zugang zur Außenwelt über Rolltor Photographien aus dem Bereich der Walzentrocknung

10 Photographien 151 Gewinnung ungefilterter Prozessluft über 15 m2 große Luftöffnung Ansauganlage der Trocknungsluft aus dem Produktionsraum Textilfilteranlage Probenahmestelle für MTA-Proben Zuführung des rückgewonnenen Milchpulvers Produktionsumfeld: Direkter Zugang zur aus der Trocknungsluft mittels Zyklon und Außenwelt über Rolltor Textilfilter zur Fließbetttrocknung Abbildung C.3 Photographien aus dem Bereich der Sprühtrocknung

11 152 DANKSAGUNG Ich bedanke mich bei Herrn Dr. Paul Teufel für die Vergabe des interessanten Themas und die guten Arbeitsmöglichkeiten am Institut für Sicherheit und Qualität bei Milch und Fisch des Max Rubner Instituts am Standort Kiel. Mein besonderer Dank gilt Herrn Dr. Philipp Hammer und Frau PD Dr. Peggy Braun für die fachliche Betreuung der Arbeit, für ihre Hilfsbereitschaft und aufschlussreiche Diskussionen sowie für viele gute Ratschläge und Anregungen. Ich danke allen Mitarbeitern des untersuchten Milchpulverwerks für die freundliche und kooperative Zusammenarbeit bei der Bereitstellung und Einsendung der Proben, den interessanten Werksführungen, den kompetenten Erläuterungen und zahlreichen telefonischen Auskünften. Aus naheliegenden Gründen werden keine Personen namentlich genannt. Für die liebevolle und kompetente Einarbeitung in die mikrobiologische und molekularbiologische Diagnostik bedanke ich mich sehr herzlich bei Frau Kirstin Franzen und Frau Beate Bonniksen. Ferner danke ich allen Mitarbeitern des Instituts und ganz besonders Frau Susanne Cochoy, Ilona Huldberg, Maren Schmidt sowie Dr. Ramona Wittmann für die angenehme Arbeitsatmosphäre, die erheblich zum Gelingen der Arbeit beigetragen hat. Den Mitarbeitern des Daten-Informationszentrums und vor allem Frau Renate Bluhm möchte ich für ihre Bemühungen bei der Literaturrecherche danken. Frau Waltraut Jessen und Frau Inge Spreckels danke ich für die zahlreichen Anregungen und Vorschläge bei der Gestaltung der Arbeit. Ich danke Frau Anne-Marie Molitor für ihre Hilfe bei der englischen Übersetzung der Zusammenfassung. Herrn Andreas Gauder danke ich für seine Unterstützung bei Hard- und Softwareproblemen. Last but not least danke ich meinen Eltern und meinen Schwestern für die jahrelange großzügige seelische und finanzielle Unterstützung.

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