Diphtherie ELISA IgG Testkit

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1 Diphtherie ELISA IgG Testkit Bestell-Nr.: EC Farbcodierung: weiß NUR ZUR IN VITRO DIAGNOSTIK Virotech Diagnostics GmbH Löwenplatz 5 D Rüsselsheim Tel.: Fax: Druckdatum REV 20 / Diphtherie ELISA IgG DE

2 Inhalt 1. Verwendungszweck Diagnostische Bedeutung Testprinzip Packungsinhalt (IgG Testkit) Lagerung und Haltbarkeit des Testkits und der gebrauchsfertigen Reagenzien Vorsichtsmaßnahmen und Warnhinweise Zusätzlich benötigtes Material (wird nicht mitgeliefert) Testdurchführung Untersuchungsmaterial Vorbereitung der Reagenzien Virotech ELISA Testdurchführung Einsatz von ELISA-Prozessoren Testauswertung Testfunktionskontrolle Auswertung mit 6 Standards Auswertung mit der 4-Parameter Methode Interpretation Auswertehilfen Grenzen des Tests Leistungsdaten Diagnostische Sensitivität und Spezifität Messbereich des Tests Kreuzreaktivität Methodenvergleich Prävalenz Genauigkeit Wiederholpräzision (Intra-Assay-Variationskoeffizient) Vergleichspräzision (Inter-Assay-Variationskoeffizient) Metrologische Rückverfolgbarkeit Literatur Testablaufschema Seite 2 von 11 REV 20

3 1. Verwendungszweck Der Diphtherie ELISA dient dem quantitativen Nachweis von IgG Antikörpern gegen das Diphtherie-Toxin zur Überwachung des Impferfolges und der Ermittlung des Impfstatus. 2. Diagnostische Bedeutung Diphtherie wird durch den Erreger Corynebacterium (C.) diphtheriae verursacht, ein aerobes, nicht sporulierendes Stäbchenbakterium. Die Virulenz von C. diphtheriae entsteht durch das Diphtherie-Toxin. Einziges Reservoir für das Bakterium ist der Mensch. Die Übertragung erfolgt durch Tröpfcheninfektion. Innerhalb weniger Tage kommt es zu einem allgemeinen Krankheitsgefühl wie Fieber, Hals-, Bauch- und Gliederschmerzen. Die Infektionskrankheit ist weltweit verbreitet, konnte allerdings durch aktive Impfungen stark zurückgedrängt werden. Sie tritt aufgrund von Impflücken immer wieder lokal begrenzt auf und ist mit einer hohen Sterblichkeit verbunden. Im Jahr 2015 wurden insgesamt 14 Diphtherieerkrankungen erfasst, von denen fünf nachweislich auf C. diphtheriae zurückgeführt werden konnten (1,4,13). Zur Prophylaxe der Diphtherie ist die aktive Immunisierung die Methode der Wahl. Die erzeugte antitoxische Immunität verhindert weitgehend die Erkrankung, nicht aber die Infektion, so dass also auch unter den Geimpften Keimträger vorkommen können (1). Der Diphtherie-Impfschutz ist bei den Klein- und Vorschulkindern in Mitteleuropa ähnlich gut wie der gegen Tetanus. Nach Untersuchungen des Robert-Koch-Institutes (RKI) weisen 95,8 % aller Schulanfänger einen Impfschutz gegen Diphtherie auf (14). Allerdings werden die empfohlenen Auffrischungen häufig nicht mehr gegeben, so dass bei Jugendlichen und jüngeren Erwachsenen Defizite in der Impfimmunität auftreten (1, 3, 4). Schätzungsweise etwa die Hälfte von ihnen sind nach den Impfempfehlungen nicht altersentsprechend geimpft (4). Bei den Erwachsenen verfügt gegenwärtig in Deutschland nur etwa ein Drittel über sicher schützende Antikörper (1, 4, 6). Ähnliche Zahlen findet man auch für andere Teile Europas und der USA (5, 7). Für den Nachweis spezifischer Antikörper gegen das Toxin gilt der Neutralisationstest als Methode der Wahl. Dieser ist jedoch sehr zeit- und kostenintensiv. Mit Hilfe des vorliegenden Elisas lässt sich die IgG-Antikörperkonzentration bestimmen und somit Rückschlüsse auf den Impfstatus ziehen. Des weiteren kann er zur Prüfung der Impfnotwendigkeit sowie zur Impfkontrolle nach einer erfolgten Impfung herangezogen werden. 3. Testprinzip Der im Humanserum gesuchte Antikörper bildet mit dem auf der Mikrotiterplatte fixierten Antigen einen Immunkomplex. Nicht gebundene Immunglobuline werden durch Waschprozesse entfernt. Mit diesem Komplex verbindet sich das Enzym- Konjugat. Nicht gebundene Immunglobuline werden wiederum durch Waschprozesse entfernt. Nach Zugabe der Substratlösung (TMB) entsteht durch Enzymaktivität (Peroxidase) ein blauer Farbstoff, der nach Zugabe der Stopplösung nach Gelb umschlägt. 4. Packungsinhalt (IgG Testkit) 1. 1 Mikrotiterplatte bestehend aus 96 mit Antigen beschichteten, abbrechbaren Einzelkavitäten, lyophilisiert 2. PBS-Verdünnungspuffer (blau, gebrauchsfertig) 2x50ml, ph 7,2, mit Konservierungsmittel und Tween PBS-Waschlösung (20x konzentriert) 50ml, ph 7,2, mit Konservierungsmittel und Tween IgG-Ak-Standardseren für die Standardkurve, 6 Fläschchen à 2ml, gebrauchsfertig, Humanserum mit Konservierungsmittel; 0,001IU/ml, 0,002IU/ml, 0,005IU/ml, 0,01IU/ml, 0,02IU/ml, 0,05IU/ml (IU = international units, internationale Einheiten). 5. IgG hoch positive Kontrolle, 2ml, Humanserum mit Konservierungsmittel, gebrauchsfertig 6. IgG schwach positive Kontrolle, 2ml, Humanserum mit Konservierungsmittel, gebrauchsfertig 7. IgG-Konjugat (anti-human), 11ml, (Schaf oder Ziege)-Meerrettich-Peroxidase-Konjugat mit Proteinstabilisatoren und Konservierungsmittel in Tris-Puffer, gebrauchsfertig 8. Tetramethylbenzidin-Substratlösung (3,3,5,5 -TMB), 11ml, gebrauchsfertig 9. Citrat-Stopplösung, 6ml, enthält ein Säuregemisch Seite 3 von 11 REV 20

4 5. Lagerung und Haltbarkeit des Testkits und der gebrauchsfertigen Reagenzien Testkit bei 2-8 C aufbewahren. Die Haltbarkeit der einzelnen Komponenten ist auf dem jeweiligen Etikett vermerkt; Kit- Haltbarkeit siehe Qualitätskontrollzertifikat. 1. Nach Entnahme der benötigten Einzelkavitäten die restlichen Einzelkavitäten/Streifen in verschlossenem Beutel mit Trockenmittel bei 2-8 C lagern. Reagenzien sofort nach Gebrauch wieder bei 2-8 C lagern. 2. Das gebrauchsfertige Konjugat und die TMB Substratlösung sind lichtempfindlich und müssen im Dunkeln aufbewahrt werden. Kommt es durch Lichteinfall zu einer Farbentwicklung der Substratlösung, so ist diese zu verwerfen. 3. Nur die für den Testansatz benötigte Menge vom gebrauchsfertigen Konjugat bzw. TMB entnehmen. Zuviel entnommenes Konjugat bzw. TMB darf nicht zurückgeführt werden sondern ist zu verwerfen. Material Zustand Lagerung Haltbarkeit Untersuchungsproben verdünnt +2 bis +8 C max. 6h unverdünnt +2 bis +8 C 1Woche Kontrollen/Standards nach Öffnen +2 bis +8 C 3Monate Mikrotiterplatte nach Öffnen +2 bis +8 (Lagerung im mitgelieferten Beutel mit Trockenmittelbeutel) 3Monate Konjugat nach Öffnen +2 bis +8 C (lichtgeschützt) 3Monate TMB nach Öffnen +2 bis +8 C (lichtgeschützt) 3Monate VP blau nach Öffnen +2 bis +8 C 3Monate Stopplösung nach Öffnen +2 bis +8 C 3Monate Waschlösung nach Öffnen +2 bis +8 C 3Monate endverdünnt (gebrauchsfertig) +2 bis +25 C 4Wochen 6. Vorsichtsmaßnahmen und Warnhinweise 1. Als Standard- und Kontrollseren werden nur Seren verwendet, die getestet und als HIV1-AK, HIV2-AK, HCV-AK und Hepatitis-B-surface-Antigen negativ befundet wurden. Trotzdem sollten alle Proben, verdünnte Proben, Standardseren, Kontrollen, Konjugate und die Mikrotiterstreifen als potentiell infektiöses Material betrachtet und entsprechend sorgfältig gehandhabt werden. Es gelten die jeweiligen Richtlinien für Laborarbeiten. 2. Die Komponenten, die Konservierungsmittel enthalten, Citrat-Stopp-Lösung und TMB wirken reizend auf die Haut, Augen und Schleimhäute. Bei Berührungen die betroffenen Körperstellen sofort unter fließendem Wasser abwaschen und eventuell den Arzt aufsuchen. 3. Die Entsorgung der verwendeten Materialien erfolgt nach länderspezifischen Richtlinien. 7. Zusätzlich benötigtes Material (wird nicht mitgeliefert) 1. Aqua dest./demin. 2. Mehrkanalpipette 50µl, 100µl 3. Mikropipetten: 10µl, 100µl, 1000µl 4. Reagenzgläser 5. Zellstofftücher 6. Abdeckung für ELISA-Platten 7. Abfallbehälter für infektiöses Material 8. ELISA Handwascher bzw. automatischer Wascher für Mikrotiterplatten 9. Spektralphotometer für Mikrotiterplatten mit 450/620nm Filter (Referenzwellenlänge nm) 10. Brutschrank 8. Testdurchführung Die exakte Einhaltung der Virotech Diagnostics Arbeitsvorschrift ist die Voraussetzung für das Erzielen korrekter Ergebnisse. Seite 4 von 11 REV 20

5 8.1 Untersuchungsmaterial Als Untersuchungsmaterial kann Serum und Plasma (hierbei ist die Art der Antikoagulanzien nicht von Relevanz) eingesetzt werden, auch wenn in dieser Gebrauchsanweisung nur Serum erwähnt ist. Patienten-Verdünnungen immer frisch ansetzen. Für eine längere Aufbewahrung müssen die Seren eingefroren werden. Mehrmaliges Auftauen sollte vermieden werden. 1. Nur frische, nicht inaktivierte Seren benutzen. 2. Hyperlipämische, hämolytische, mikrobiell kontaminierte Proben und trübe Seren nicht verwenden (falsch positive/negative Ergebnisse). 8.2 Vorbereitung der Reagenzien Die Virotech Diagnostics System Diagnostik bietet ein hohes Maß an Flexibilität durch die Möglichkeit, Verdünnungs- und Waschpuffer, TMB, Citrat-Stopplösung sowie Konjugat parameter- und chargenübergreifend einzusetzen. Die Standardseren sowie hoch und schwach positive Kontrolle sind ausschließlich für den verwendeten Testkit bestimmt. Daher nicht in anderen Chargen einsetzen. 1. Brutschrank auf 37 C einstellen und sich vor Inkubationsbeginn vom Erreichen der Temperatur überzeugen. 2. Alle Reagenzien auf Raumtemperatur bringen; erst dann die Verpackung mit den Teststreifen öffnen. 3. Alle Flüssigkomponenten vor Gebrauch gut schütteln. 4. Waschlösungs-Konzentrat auf 1Liter mit Aqua dest./demin. auffüllen (bei eventueller Kristallbildung des Konzentrates dieses bitte vor dem Verdünnen auf Raumtemperatur bringen und vor Gebrauch gut schütteln). 8.3 Virotech ELISA Testdurchführung 1. Pro Testansatz 100µl des gebrauchsfertigen Verdünnungspuffers (Leerwert), der gebrauchsfertigen Standard- und Kontrollseren sowie der verdünnten Patientenseren pipettieren. Wir empfehlen jeweils einen Doppelansatz (Leerwert, Standardseren, Kontrollen und Patientenseren). Wird, für die Auswertung des Tests mittels der 4-Parameter Methode, als Kalibrierungskontrolle der Standard 0,01 IU/ml verwendet, ist hiervon ein Doppelansatz zwingend erforderlich. Arbeitsverdünnung der Patientenseren: 1+100; z.b. 10µl Serum + 1ml Verdünnungspuffer. 2. Nach Pipettierung erfolgt die Inkubation für 30 Min. bei 37 C (mit Abdeckung). 3. Beenden der Inkubationsperiode durch 4 maliges Waschen mit je µl Waschlösung pro Kavität. Waschlösung nicht in den Kavitäten stehen lassen, sondern letzte Flüssigkeitsreste durch Ausklopfen auf einer Zellstoffunterlage entfernen µl des gebrauchsfertigen Konjugats in alle Kavitäten pipettieren. 5. Inkubation des Konjugats: 30 Min. bei 37 C (mit Abdeckung). 6. Beenden der Konjugatinkubation durch 4 maliges Waschen (siehe Pkt. 3) µl der gebrauchsfertigen TMB-Substratlösung in jede Kavität pipettieren. 8. Inkubation der Substratlösung: 30 Min. bei 37 C (mit Abdeckung, dunkel stellen). 9. Abstoppen der Substratreaktion: in alle Kavitäten je 50µl Citrat-Stopplösung pipettieren. Die Platte vorsichtig und sorgfältig schütteln bis sich die Flüssigkeiten vollständig durchmischt haben und eine einheitliche gelbe Farbe sichtbar wird. 10. Extinktionen bei 450/620nm (Referenzwellenlänge nm) messen. Photometer so einstellen, dass der gemessene Leerwert von allen anderen Extinktionen abgezogen wird. Die photometrische Messung sollte innerhalb einer Stunde nach Zugabe der Stopplösung durchgeführt werden. Testablaufschema siehe letzte Seite 8.4 Einsatz von ELISA-Prozessoren Alle Virotech Diagnostics ELISAs können mit Hilfe von ELISA-Prozessoren abgearbeitet werden. Der Anwender ist verpflichtet eine regelmäßige Gerätevalidierung durchzuführen. Virotech Diagnostics empfiehlt die folgende Vorgehensweise: 1. Bei Gerätestellung bzw. größeren Reparaturen Ihres ELISA Prozessors empfiehlt Virotech Diagnostics, die Validierung des Gerätes gemäß den Vorgaben des Geräteherstellers vorzunehmen. 2. Es wird empfohlen, anschließend den ELISA Prozessor mit dem Validierungskit (EC250.00) zu überprüfen. Diese regelmäßige Überprüfung mit dem Validierungskit sollte mindestens einmal pro Quartal durchgeführt werden. Seite 5 von 11 REV 20

6 3. Bei jedem Testlauf müssen die Freigabekriterien des Qualitätskontrollzertifikates zum Produkt erfüllt werden. Diese Vorgehensweise gewährleistet die einwandfreie Funktion Ihres ELISA Prozessors und dient darüber hinaus der Qualitätssicherung des Labors. 9. Testauswertung 9.1 Testfunktionskontrolle a) OD-Werte Der OD-Wert des Leerwertes sollte <0,15 sein. Die OD Werte des niedrigsten Standards (0,001 IU/ml) sollten oberhalb des im Qualitätskontroll-Zertifikat angegebenen OD-Wertes liegen und die OD Werte des höchsten Standards (0,050 IU/ml) sollten unterhalb des im Qualitätskontroll-Zertifikat angegebenen OD-Wertes liegen. b) Die ermittelte Konzentration der schwach- und hoch positiven Kontrolle sollte innerhalb des im Qualitätskontrollzertifikat angegebenen Referenzbereiches (IU/ml) liegen. c) Werden die Anforderungen (OD / IU/ml) nicht erfüllt, so ist der Test zu wiederholen. 9.2 Auswertung mit 6 Standards Mit Hilfe der mitgeführten Standards wird eine Standardkurve zur Berechnung des Diphtherie-Antitoxin-IgG- Antikörpergehaltes im Serum erstellt. Hierzu trägt man die Mittelwerte der Extinktionen der doppelt mitgeführten Standardseren auf die Ordinate (y-achse) und die Konzentrationen (IU/ml der gebrauchsfertigen Standards) auf die Abszisse (x-achse) ein. Es ist zu beachten, dass die Patientenseren für die Testdurchführung verdünnt wurden. Daher muss das abgelesene Ergebnis aus dem Diagram mit 100 multipliziert werden. Der quantifizierbare Bereich liegt zwischen 0,1 IU/ml und 5 IU/ml. Bitte beachten: 1. Proben, deren ermittelte IU/ml-Konzentrationen unter 0,1IU/ml liegen, können in einem erneuten Testansatz mit einer 1:10 Verdünnung eingesetzt werden. Die abweichende Verdünnung muss bei der Auswertung berücksichtigt werden. 2. Proben, deren ermittelte IU/ml Konzentrationen oberhalb 5 IU/ml liegen, müssen in einer höheren Verdünnung im Test eingesetzt werden, z.b , usw. Die abweichende Verdünnung muss bei der Auswertung berücksichtigt werden. 3. Bei OD-Werten außerhalb des linearen Bereichs (s ) müssen die Verdünnungen entsprechend angepasst werden. Die abweichenden Verdünnungen müssen bei der Auswertung berücksichtigt werden. Alternativ zu 1-3 kann die 4-Parameter Methode angewendet werden. Seite 6 von 11 REV 20

7 Beispiel einer Diphtherie-Standardkurve Extinktion [OD:450/620nm] 2,5 2 1,5 1 0,5 0 0,001 0,002 0,005 0,010 0,020 Konzentration log [IU/ml] 0, Auswertung mit der 4-Parameter Methode Es besteht die Möglichkeit, mit dem Virotech Diphtherie IgG ELISA eine quantitative Bestimmung mit der 4-Parameter Methode durchzuführen. Als Kalibrierungskontrolle dient hier der Standard 0,01 IU/ml. Die Kalibrierungskontrolle gleicht die durch die Testdurchführung bedingten Schwankungen aus. Für die Berechnung werden die Mittelwerte der OD-Werte eingesetzt. Durch umfassende Testungen werden die 4 Parameter chargenspezifisch ermittelt und mithilfe der nachfolgenden Formel in IU/ml quantifiziert (12): IU/ml = e ( C - Ln ( (D - A) / (OD korr - A) - 1) / B) Hierbei ist A: erwartete OD bei einer anti-diphtherie IgG Konzentration von 0 B: Steigungsfaktor C: Wendepunkt D: erwartete OD bei einer unendlich hohen anti-diphtherie IgG Konzentration OD korr: korrigierte OD des Patientenserums Zur Berücksichtigung von Schwankungen innerhalb der Testabarbeitung wird der gemessene OD-Wert des Patientenserums anhand einer Kalibrierungskontrolle korrigiert: ODkorr OD Kalibrierungskontrolle Vorgabe OD Patientenserum * OD Kalibrierungskontrolle gemessen Die Werte der Parameter A, B, C und D, sowie die Vorgabe für die OD-Werte der Kalibrierungskontrolle sind dem chargenspezifischen Zertifikat zu entnehmen. 9.4 Interpretation Die Diphtherie Antitoxin-Konzentrationen werden in Anlehnung an den WHO Standard in Internationalen Einheiten (IU/ml) ausgedrückt. Literaturangaben zur Folge ist ein ausreichender Immunschutz ab 0,1IU/ml zu erwarten (2,8,9,11). Diese Angabe ist jedoch nur als Empfehlung zu betrachten! Nachfolgend möchten wir auf Impfempfehlungen in Anlehnung an die Publikation Pietsch, M. (10) hinweisen. Seite 7 von 11 REV 20

8 IU/ml empfohlene Impfung < 0,1 Grundimmunisierung sofort 0,1-1,0 Auffrischimpfung sofort 1,0 1,4 Auffrischimpfung nach 5 Jahren 1,4 2,0 Auffrischimpfung nach 7 Jahren > 2,0 Auffrischimpfung nach 10 Jahren Die Empfehlungen decken sich mit den Angaben der WHO für einen Langzeitimpfschutz (Antikörperkonzentration > 1 IU/ml) (15). Die Bestimmung des Diphtherie-Antitoxin-IgG-Antikörpergehaltes kann Entscheidungshilfen bei der Ermittlung einer Impfnotwendigkeit geben wie auch zur serologischen Impfüberprüfung herangezogen werden. Darüber hinaus können Informationen über die unterschiedliche Ansprechbarkeit des individuellen Immunsystems erhalten werden. 9.5 Auswertehilfen Die Bestimmung der IU/ml kann durch eine Software erfolgen, die von Virotech bezogen werden kann. Alternativ kann eine Auswertevorlage für gängige Tabellenkalkulation zur Verfügung gestellt werden. 9.6 Grenzen des Tests 1. Der Virotech Diphtherie ELISA ist nicht für die Labordiagnose einer Infektion geeignet. 2. Die Interpretation serologischer Ergebnisse sollte immer das klinische Bild, epidemiologische Daten und eventuell weitere zur Verfügung stehende Laborbefunde mit einbeziehen. 3. Zur Interpretation des Antitoxintiters sollte auch der Impfausweis bzw. Hinweis zur letzten Diphtherie-Schutzimpfung herangezogen werden. 4. Eine Interpretation von Antitoxintitern unter 0,1 IU/ml ist nicht zu empfehlen, da sie unterhalb der technisch reproduzierbaren Sensitivitätsgrenze bei Verwendung des ELISA Testsystems liegt. Im individuellen Fall sollte die Impfanamnese herangezogen werden, um zu entscheiden, ob eine Grundimmunisierung oder eine Auffrischimpfung durchgeführt werden soll. 10. Leistungsdaten 10.1 Diagnostische Sensitivität und Spezifität Da es sich um einen quantitativen Test handelt, der nicht zur Differenzierung von positiven und negativen Ergebnissen dient, kann keine diagnostische Sensitivität und Spezifität berechnet werden Messbereich des Tests Limit of Blank (LoB) Für die Berechnung des LoB gemäß der CLSI Guideline EP17-A2 wurden insgesamt vier negative Seren auf zwei Chargen in Dreifachbestimmung getestet. Der ermittelte LoB liegt bei einem OD-Wert von 0, Limit of Detection (LoD) Für die Berechnung des LoD gemäß der CLSI Guideline EP17-A2 wurden sieben schwach positive Proben auf zwei Chargen in Vierfachbestimmung getestet. Seite 8 von 11 REV 20

9 Der ermittelte LoD liegt bei einem OD-Wert von 0, Limit of Quantification (LoQ) Für die Berechnung des LoQ gemäß der CLSI Guideline EP17-A2 wurden vier Proben mit bekannten IU/ml Werten auf zwei Chargen in Dreifachbestimmung getestet. Die Berechnung des Total Errors (TE) erfolgte nach dem Westgard Model. Die untere Quantifizierungsgrenze entspricht dem kleinsten Standard = 0,1 IU/ml Linearität Der lineare Bereich für die Seren liegt bei OD-Werten zwischen 0,006 bis 1, Kreuzreaktivität Bei dem Diphtherietoxin handelt es sich um ein hochspezifisches Toxin. Kreuzreaktionen sind nicht bekannt Methodenvergleich Der Virotech Diagnostics Diphtherie IgG ELISA zeigt im Rahmen einer Vergleichbarkeitsstudie eine Korrelation von 0,96 zu einem Referenztest Prävalenz Es wurden 80 Blutbankseren getestet und die Konzentration in IU/ml bestimmt. Konzentration Anzahl der gefundenen Seren < 0,1 IU/ml 62,5 % 0,1 1,0 IU/ml 30,0 % 1,0 1,4 IU/ml 2,5 % 1,4 2 IU/ml 2,5 % > 2 IU/ml 2,5 % Die ermittelten Durchseuchungsraten decken sich mit dem in der Literatur beschriebenen rückläufigen Impfschutz im Erwachsenenalter (1,2,3,4,6,16). Die Vergleichbarkeit der Daten wird durch alters- und geographische Unterschiede erschwert Genauigkeit Für die Überprüfung der Genauigkeit werden 32 Ringversuchssseren mit bekannten Konzentrationen aus dem Zeitraum November 2008 bis Mai 2016 im Virotech ELISA gemessen. Alle 32 deklarierten Seren wurden richtig erkannt Wiederholpräzision (Intra-Assay-Variationskoeffizient) In einem Intra-Assay wurden Streifen verschiedener Platten einer Charge mit zwei Seren schachbrettartig getestet. Die so ermittelten Variationskoeffizienten sind < 12% Vergleichspräzision (Inter-Assay-Variationskoeffizient) In zehn unabhängigen Testansätzen wurden in verschiedenen Laboren und von verschiedenen Testpersonen sieben Seren getestet. Die so ermittelten Variationskoeffizienten sind < 15%. Seite 9 von 11 REV 20

10 10.9 Metrologische Rückverfolgbarkeit Die Rückverfolgbarkeit der RTU Standards zum WHO-Standards 10/262 (International Standard for Diphtheria Antitoxin Human) ist gewährleistet. 11. Literatur 1. Epidemiologisches Bulletin, 6/ Stark K, Schonfeld C, Barg J, Molz B, Vornwald A, Bienzle U, Seroprevalence and determinants of diphtheria, tetanus and poliomyelitis antibodies among adults in Berlin, Germany, Vaccine 17(7-8): ( 1999) 3. Pietsch M et.al., Influence of information campaigns on the vaccination immunity among the population of a small town area seroepidemiological results of the Wittlich Vaccination Study ; Gesundheitswesen 64 (1): 60-4 (2002) 4. Epidemiologisches Bulletin, 19/ Pachon I, Amela C, De Ory F: Age-specific seroprevalence of poliomyelitis, diphtheria and tetanus antibodies in Spain, Epidemiol Infect 2002, 129 (3): Ärztezeitung, ; Norddeutsche sind Impfmuffel in Deutschland 7. Gupta RK, Griffin P Jr, Xu J, Rivera R, Thompson C, Siber GR, Diphtheria antitoxin levels in US blood and plasma donors. J Infect Dis 1996, 173 (6) Naumann, P., Hagedorn, H.-J. Paatz, R. (1983), Diphtherie-Immunität und ihre epidemiologische Bedeutung, Dtsch. med. Wschr. 108, S Naumann, P., Paatz, R, und Thomas, L, Diphtherie-Adsorbat-Impfstoff für Erwachsene: Immunologische Wirksamkeit. Die gelben Hefte XXIV (1984), S Pietsch, M., Impfserologie zur Ergänzung von Impfungen. Der Allgemeinarzt, 18, Galazka, A.M., Diphtheria: The Immunological Basis for Immunization Series; WHO/EPI/GEN/93,12; Geneva, pp3 12. Plikaytis et al., Comparisons of Standard Curve-Fitting Methods To Quantitate Neisseria meningitidis Group A Polysaccharide Antibody Levels by Enzyme-Linked Immunosorbent Assay, 1991, J Clin Microbiol, 29, p Infektionsepidemiologisches Jahrbuch meldepflichtiger Krankheiten für 2015, RKI 14. Epidemiologisches Bulletin 16/ Weekly epidemiological record, 2006, 81, 21-32, WHO 16. C. Proethko-Müller, R. Schmitz Bundesgesundheitsbl Seite 10 von 11 REV 20

11 12. Testablaufschema Vorbereitung der Patientenproben und Waschlösung Waschlösung: Konzentrat auf 1 Liter mit aqua dest./demin. auffüllen IgG-Proben Verdünnung 1:101 z.b.: 10 µl Serum/Plasma µl Verdünnungspuffer (Serumverdünnungspuffer ist gebrauchsfertig) Testdurchführung Probeninkubation 30 Minuten bei 37 C 100 µl Patientenproben Leerwert (Verdünnungspuffer), Standards und Kontrollen 4 x Waschen 400 µl Waschlösung gut ausklopfen Konjugatinkubation 30 Minuten bei 37 C 100 µl Konjugat IgG 4 x Waschen 400 µl Waschlösung gut ausklopfen Substratinkubation 30 Minuten bei 37 C 100 µl Substrat Abstoppen Extinktion messen 50 µl Stopplösung vorsichtig schütteln Photometer bei 450/620nm (Referenzwellenlänge nm) Seite 11 von 11 REV 20