Elektrophorese. Sommersemester 2012

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1 Elektrophorese Sommersemester 2012

2 Gliederung 1. Was ist Elektrophorese? Allgemeine Informationen 1. Anwendung 2. Physikalische Grundlagen 3. Arten der Elektrophorese 1. Trägerelektrophorese 1. Grundlagen 2. Probleme Trägerelektrophorese 3. Weiterentwicklungen und Beispiele 2. Trägerfreie Elektrophorese Kapillarelektrophorese 1. Physikalische Grundlagen 2. Bestandteile und Durchführung 3. Weiterentwicklungen und Beispiele 4. Übungsaufgabe 5. Literatur

3 1. Was ist eigentlich Elektrophorese? Definition: Wanderung von Ionen und kolloidalen Teilchen wie Makromolekülen, Viren und Zellen im elektrischen Feld unter Erzielung einer Auftrennung nach Größe und Ladungsdichte Analsyenmethode zur Trennung und Bestimmung (und Quantifizierung) von Molekülen Einteilung der Elektrophorese Arten: Trägerelektrophorese = Zonenelektrophorese z.b. Gelelektrophorese Trägerfreie Elektrophorese = Grenzflächenelektrophorese z.b. Kapillarelektrophorese

4 1.1 Anwendung Molekularbiologie und Biologie: Isolierung und Aufreinung von Makromolekülen - DNA, RNA, Proteine (z.b. Immunglobuline) ( Genetischer Fingerabdruck ) (Pharmazeutische/LMC) Analytik: Überprüfung Reinheit und Gehalt von: - Immunseren für den Menschen - Kontrolle von Insulin/Heparin - Nachweis von Kuhmilch in Ziegenkäse - Ist der Döner wirklich aus Lammfleisch? Kapillarelektrophorese häufig zur Kontrolle Gehalt und Reinheit von Arzneistoffen und Pflanzenextrakten

5 2. Physikalische Grundlagen der Elektrophorese Gesetz von Kohlrausch: Geladene Teilchen wandern in Lösung unter dem Einfluss eines elektrischen Feldes mit unterschiedlicher Geschwindigkeit Gründe für diese Verhalten: Ladungsdichte der Moleküle: Beschleunigung v Größe der Teilchen : Reibungswiderstand v

6 2. Physikalische Grundlagen der Elektrophorese Einfluss von Beschleunigungsund Reibungskraft auf geladene Teilchen Wenn F ep = F R Keine Beschleunigung mehr Geschwindigkeit ist konstant. F ep = z i * e o * E und F R = 6π* r*η*v ep F ep : Beschleunigungskraft F R : Reibungskraft E: Feldstärke z i : Ladungszahl des Teilchen e o : Elektrische Elementarladung V ep : elektrophoretische Wanderungsgeschwindigkeit μ ep : Elektrophoretische Mobilität r i : Radius der Teilchen η: Viskosität des Mediums

7 2. Physikalische Grundlagen der Elektrophorese Die Wanderungsgeschwindigkeit ist demzufolge abhängig von: Der Ladung des Moleküls Der Größe des Moleküls Den Eigenschaften des Mediums Der Solvatisierung bzw. Bildung der Ionenhülle Der Viskosität des Mediums ph-wert der Umgebung und Isoelektrischer Punkt bei Proteinen

8 3.1 Trägerelektrophorese Prinzip: Die Analyse wird auf einen Träger (z.b. Gel, Papier ) aufgetragen. Dieses ist mit Pufferlösung getränkt. Beim Anlegen der Spannung trennen sich die Teilchen gemäß Ladung und Größe (siehe Punkt 2.) Zusätzliche Einflüsse: - Sogströme, Anionen - Kationen + -verdunsten Puffer - Elektroosmose Träger -Adsorption Analyten an Träger

9 3.1.1 Praktische Durchführung Trägerelektrophorese Träger vorbereiten (Gel gießen oder quellen lassen, Papier tränken ) - Celluloseacetat - Agarosegele - Stärkegele - Polyacrylamidgele - Papierstreifen Kammern mit Puffer füllen Puffer (richtet sich nach pka der Analyten) - TBE ( Tris-Borat-EDTA) Puffer - TAE ( Tris-Acetat-EDTA) Puffer - TTE (Tris-Taurin-EDTA) Puffer Analyt auftragen Definierte Spannung Anlegen und Gel über bestimmten Zeitraum laufen lassen (Dauer : 30min 2h) Anschließend Entwicklung des Trägers zur Detektion des Analyten (diese sind meist farblos!) DNA mit Ethidiumbromid Proteine mit Silbernitrat, Coomassie-Brilliant-Blue oder Antikörpern

10 3.1.1 Praktische Durchführung Trägerelektrophorese Beispiel: DNA Trennung mit Agarosegelelektrophorese (DNA ist negativ geladen, Trennung ausschließlich nach Größe Richtung Anode) - 1% Agarose in TBE-Puffer lösen (kochen) - Gel gießen und gleich Ethidiumbromid zugeben - Gel aushärten lassen, in Kammer legen (gefüllt mit TBE Puffer) und Analyt auftragen + Standard - 45min bei 120 V Gel laufen lassen

11 3.1.1 Praktische Durchführung Trägerelektrophorese Beispiel: Serumelektrophorese (Cellulose-Acetat-Gel) Trennung und Analytik der Serum Immunglobuline (ohne Gerinnungsfaktoren und feste Bestandteile) Alpha-Fraktion erhöht Hinweis auf Entzündung, Nierenerkrankungen

12 3.1.2 Probleme der Trägerelektrophorese Häufig lange Analysendauer (>30min) Analyten meist farblos: Proteine anfärben mit Silber oder Coomassie Brilliant, Nachweis mit farbstoffmarkierten Antikörper (Westernblot) DNA und RNA anfärben mit Ethidiumbromid Quantitative Bestimmung ist stark fehlerbehaftet (schlechte Reproduzierbarkeit) Papier und Gel kann austrocken Viel Energie geht als Wärme verloren Konvektion der Analyten ( breite Banden) Proteine können bei hohen Temperaturen denaturieren Kühlung Was passiert wenn ein Analyt doppelt so schwer ist wie ein anderer, dafür aber die doppelte Ladung trägt??? Keine Trennung möglich

13 3.1.3 Weiterentwicklungen der Trägerelektrophorese - Isoelektrische Fokossierung Trennung von Proteinen anhand des IEP (isoelektrischer Punkt nach außen ungeledan) durch einen ph Gradienten (anschließend klassische Gelelektrophorese 2D System) - Isotachophorese Verschiedene Zonen mit unterschieldichen Feldstärken schärfere Banden der Analyten (z.b. für Wasseranalysen) - Disk-Elektrophorese Verwendung von diskontinuierlichen Puffer- und Gelsystemen (Sammelgel/Trenngel Stacking ) schärfere Banden der Analyten

14 3.1.3 Weiterentwicklungen der Trägerelektrophorese SDS-PAGE (Sodiumdecylsulfat-Polyacrylamidelektrophorese) DAS Trennverfahren für Proteine. SDS ist ein Tensid (z.b. auch in Shampoo) Trennung nur anhand von Molekülgröße, da die Moleküle alle von Tensid Molekülen umhüllt und somit alle negative geladen sind Wanderung Richtung Anode, je größer das Molekül desto langsamer ist es Protein wird von C oder D denaturiert, SDS wird absorbiert et voilà

15 3.1.3 Weiterentwicklungen der Trägerelektrophorese

16 3.1.3 Weiterentwicklungen der Trägerelektrophorese Entwicklung des Gels mit Coomassie Brilliant Blue, dann auswerten.

17 3.2 Trägerfreie Elektrophorese = Grenzflächenelektrophorese Kapillarelektrophorese (CE) Ähnliche Anwendungsgebiete wie die HPLC, jedoch unterschiedliches Trennprinzip: Transport der Analyten Trennung der Analyten HPLC Druck Pumpen pressen Fließmittel durch HPLC Säulen Unterschiedlich starke WW mit Säule und FM der zu trennenden Substanzen Adsorbtionschromatographie CE Elektrische Spannung Ionen (v.a. Leitelektrolyt) wandern im elektrischen Feld Unterschiedliche Wanderungsgeschwindigkeit der zu trennenden Substanzen im elektrischen Feld Elektrophorese

18 3.2 Kapillarelektrophorese - Aufbau Injektion

19 3.2.1 Kapillarelektrophorese Physikalische Grundlagen Der Elektrosmotische Fluss (EOF) Elektroosmose ist die Bewegung einer Elektrolytlösung relative zu einer geladenen Oberfläche durch Anlegen eines elektrischen Feldes Fluss zur Kathode bei Silica-Säulen d= µm

20 3.2.1 Kapillarelektrophorese Physikalische Grundlagen μ eff = effektive Mobilität (eines Analyten) μ eff = μ eof +μ ep μ eof = elektroosmotische Mobilität (der Pufferlösung) μ ep = elektrophoretische Mobilität (eines Analyten) Der EOF überlagert die elektrophoretische Mobilität der Analyten wenn μ eof groß genug ist, können Ionen unabhängig von ihrer Ladung zu einem der Pole bewegt werden, im Fall von Quarzkapillaren zur Kathode. μ eof ~1/u μ eof ~ ω u : Ionenstärke ω: Ladungsdichte an der Wandoberfläche Höhere Pufferkonzentration (u ) : EOF Höherer ph- Wert : Mehr SiOH- Gruppen deprotoniert (ω ) : EOF

21 3.2.1 Kapillarelektrophorese Strömunsprofile HPLC Strömung wird durch Druckdifferenz verursacht. Es kommt zu Reibung an der Kapillarwand: parabolisches Strömungsprofil A: HPLC B: CE CE Strömung wird durch EOF verursacht: Die Antriebskraft entsteht an der Wand es kommt zu Einem Gleichgewicht mit der Reibung : Flaches Strömungsprofil Sehr schmale Peaks Hohe Empfindlichkeit

22 3.2.2 Bestandteile und Durchführung CE Kapillare : Kieselglas Länge cm Innendurchmesser μm Hochspannungsquelle: Spannung : bis zu 30 kv! Anforderungen an Puffer: Selektive für zu trennende Ionen (unterschiedliche Ladungen der Analyten) Hohe Pufferkapazität keine ph Änderungen während der Analyse Geringe Absorption bei Detektionswellenlänge (hohe Empfindlichkeit) Geringe Mobilität des Gegenions Konzentration : EOF groß genug für schnelle Analysenzeiten ohne Bandenverbreiterung durch thermische Effekte Injektionssysteme: (meist werden nur wenige nl injiziert!) Hydrodynamische Injektion (Druck, Sog) Elektrokinetische Injektion (Spannung, wichtig: IS!) Detektion (ähnlich HPLC) : UV-Vis Flouresenzdetektor Massenspektroskopie (wegen sehr kleinen Flussraten von nl/min zusätzlicher Flow notwendig)

23 3.2.3 Weiterentwicklungen der CE Kapillarzonenelektrophorese (CZE): Klassische Verfahren mizellarelektrokinetische Chromatographie (MEKC): Zur Trennung ungeladener Analyten. Es werden dem Puffer Tenside zugegeben, die Mizellen mit einem hydrophoben Kern bilden (quasistationäre Phase). Die Analyten gehen gemäß ihrer Polarität unterschiedlich starke WW mit mobiler Phase und Mizellen ein. Zusätzlich chromatographisches Trennprinzip Kapillargelelektrophorese (CGE): Kapillare mit Polyacrylamidgel gefüllt zusätzlichen Siebeffekt (vgl. SDS- PAGE) bei Trennung von sehr großen Molekülen.

24 3.2.3 Weiterentwicklungen der CE Beispiel: Vergleich CZE und und MEKC zur Trennung von apolaren Analyten mit sehr ähnlichem Ladungs/Masse Verhältnis.

25 4. Übungsaufgabe SDS PAGE Protokoll: -Beschreibung des Verfahrens (Gelelektrophorese SDS), Grundlagen Elektrophorese - Einkleben und beschriften der Elektropherograms - Gefundenes Protein (Molmasse)

26 5. Literatur Rücker, G, Neugebauer M, : Willems, G.G. : Instrumentelle Pharmazeutische Analytik, Wissenschaftl. Verlagsgesellschaft mbh, Stuttgart,2001 F. Lottspeich, H. Zorbas (Hrsg): Bioanalytik, Spektrum Akademischer Verlag, Vorlesungsskript 8. Semester Pharmazie Uni Würzburg 2007