INHALT Vorwort Institutsleitung, Kuratorium & Wissenschaftlicher Beirat Forschung Von Mücken und Viren Virale hämorrhagische Fieber

Transkript

1

2

3 INHALT Vorwort 03 Institutsleitung, Kuratorium & Wissenschaftlicher Beirat 15 Forschung 19 Von Mücken und Viren 21 Virale hämorrhagische Fieber 25 Vernachlässigte Tropenkrankheiten 43 Das Versteck der Malariaparasiten 55 Immunologie 63 Methoden 71 Schnappschuss 79 Bericht des KCCR 80 Tropenmedizin bei der Bundeswehr 84 Kurse 87 Daten und Fakten 97 Personal 101 Anhang 111 Publikationen 112 Lehrveranstaltungen 120 Seminarprogramm 122 Aktivitäten der Mitarbeiter*innen 122 BNITM in den Medien 127 Chronik 128 Impressum 132

4 Vorwort 03

5 Rolf Horstmann Foto: Klaus Juerries Chinesen hätten 2016 und 2017 Jahr des erneuerbaren Vorstands, Jahr der opulenten Prüfung oder Jahr des ehrbaren Besuchers genannt. In der Tat wurde nahezu der gesamte Institutsvorstand ausgetauscht. Den Anfang machte 2016 die kaufmännische Geschäftsführung. Udo Gawenda ging nach zehn Jahren zurück in die Hamburger Finanzbehörde. Als Nachfolgerin konnten wir Birgit Müller aus der Verwaltung der Medizinischen Fakultät am Universitätsklinikums Hamburg-Eppendorf (UKE) engagieren, endlich eine Frau im Vorstand. Sie kam Mitte Februar zu uns, mitten in der aufwendigen Rechnungsprüfung eines großen Drittmittelprojekts. Vom ersten Tag an stellte sie sich den Herausforderungen, arbeitete sich buchstäblich über Nacht in die Thematik ein, übernahm Verantwortung und leistete Unterstützung von unschätzbarem Wert. Der nächste Wechsel folgte Ende 2016, als Bernhard Fleischer emeritierte. Von 1998 bis 2007 hatte er, damals noch alleiniger Direktor, das Institut nach der zuweilen turbulenten Phase der Umstrukturierung unter Hans Müller-Eberhard besonnen und mit ruhiger Hand konsolidiert. In seiner Amtszeit feierte das Institut mit der Identifizierung des SARS-Coronavirus und der Entdeckung eines zuvor unbekannten Blutstadiums von Malariaparasiten weltweit beachtete wissenschaftliche Erfolge und stärkte seinen internationalen Ruf. Nicht zuletzt brachte er den Erweiterungsbau auf den Weg, der heute mit neuem Hochsicherheitslabor, einem Sicherheitsinsektarium und einer zeitgemäßen Versuchstierhaltung dem Institut eine hervorragende Infrastruktur bietet. Als die Medizinische Fakultät Bernhard Fleischers Professur auf unseren Antrag und getreu den Empfehlungen der Leibniz-Evaluierung 2009 nun von Immunologie in Epidemiologie umwidmete, waren Befürchtungen vernehmbar, die immunologische Forschung würde am Institut entscheidend geschwächt. Das Gegenteil trat ein. Die etablierten immunologischen Arbeitsgruppen von Minka Breloer (Helminthen-Immunologie) und Thomas Jacobs (Protozoen-Immunologie) erhielten gewichtige Verstärkung. Zum einen durch César Muñoz-Fontela, der mit Unterstützung des Deutschen Zentrums für Infektionsforschung (DZIF) aus dem Heinrich-Pette-Institut (HPI) zu uns wechselte. Seine Gruppe widmet sich der Immunreaktion auf hämorrhagische Fieberviren und ergänzt sinnvoll nicht nur unsere Immunologie, sondern auch die Virologie. Zum anderen durch Hanna Lotter, die in der molekularen Parasitologie zunehmend immunologisch arbeitete und ab 2018 mit einer eigenen Arbeitsgruppe ausgestattet wird. Eine Ergänzung der besonderen Art ist Marylyn Addo, die mit einer Arbeitsgruppe des UKE eine primär klinisch orientierte immunologische Forschung bei uns etablierte und nebenbei eine neue Dimension der Zusammenarbeit zwischen UKE und BNITM eröffnete. Gleichsam im Gegenzug zog Tim Gilberger mit fast seiner gesamten Abteilung in das Zentrum für strukturelle Systembiologie (CSSB), das seine Arbeit vor wenigen Monaten auf dem Gelände des Deutschen Elektronensynchrotrons (DESY) in Bahrenfeld aufgenommen hatte. Die Abteilung wird gemeinsam von der Universität Hamburg (UHH) und dem BNITM finanziert, und ihr Umzug nach Bahrenfeld sollte unsere Zusammenarbeit mit der naturwissenschaftlichen Fakultät (MIN) der UHH nachhaltig stärken

6 Auf die neu eingerichtete W3-Professur für Epidemiologie wurde Jürgen May berufen. Nach internationaler Ausschreibung wurde er mit großer Unterstützung der externen Kommissionsmitglieder als einziger Kandidat ausgewählt, obwohl er als Mitarbeiter des BNITM als Hausberufung zählte eine bemerkenswerte Auszeichnung seiner wissenschaftlichen Arbeit und seiner Persönlichkeit. Die Ausstattung seiner Abteilung wird wesentlich durch das DZIF unterstützt. Als Vertreter der Tropenepidemiologie, eines wesentlichen Teils der Forschung zu globaler Gesundheit, trägt er forthin besonders große Verantwortung für das Institut. Zudem tragen zwei neue W2-Professuren erheblich zur epidemiologischen Forschung des Instituts bei. Sie wurden an der MIN-Fakultät der UHH eingerichtet und vom Institut mit Arbeitsgruppen ausgestattet. Esther Schnettler und ihre Gruppe widmen sich der molekularen Immunologie von Insekten und - mit Unterstützung durch das DZIF - der Vektorkompetenz von Mücken. Damit ergänzen sie vorzüglich die Arbeit von Jonas Schmidt- Chanasit, der einige Monate zuvor auf eine W2- Professur für Arbovirologie berufen worden war und mit seiner Gruppe die Ökologie und Diagnostik von Infektionen untersucht, die von Mücken übertragen werden. Mitte 2017 wurde Michael Ramharter aus Wien als mein Nachfolger auf die Professur für klinische Tropenmedizin berufen. Er ist ein erfahrener Infektionskliniker und hat sich wissenschaftlich vor allem durch klinische Studien zu Malaria in den Endemiegebieten hervorgetan, insbesondere auch in großen Konsortien und in enger Zusammenarbeit mit unseren Tübinger Kollegen. Vor kurzem hat er die Berufungsverhandlungen mit dem UKE und uns erfolgreich abgeschlossen. Am UKE übernimmt er die ärztliche Verantwortung für ambulante und stationäre tropenmedizinische Patienten, und das BNITM stattet ihn mit einer wissenschaftlichen Abteilung aus. Wir freuen uns, wieder einen kompetenten Kliniker und ambitionierten klinischen Forscher im Haus zu haben, und hoffen, dass er das Institut erfolgreich in den internationalen Netzwerken multizentrischer klinischer Studien vertritt, ebenfalls ein wesentliches Element der globalen Gesundheitsforschung. 2016, das Jahr der opulenten Prüfung. Den Auftakt bildete eine Rechnungsprüfung unseres groß angelegten Projekts Tropendiagnostik zur Entwicklung marktfähiger diagnostischer Tests. Das Projekt war als Public-Private Partnership mit der Fa. altona Diagnostics durch den Europäischen Fonds für regionale Entwicklung (EFRE) gefördert worden. Prüfinstanz war die Hamburger Wissenschaftsbehörde, also unsere Dienstaufsicht führende Behörde, die durch ihr Referat Betriebswirtschaft sicherstellen wollte, dass eine mögliche Prüfung durch die EU keine Beanstandungen ergäbe. Die Prüfung war in der Tat luxuriös - sehr detailliert und äußerst zeitintensiv. Im Ergebnis wurde eine erhebliche Zahl an Fehlern aufgedeckt, insbesondere bezüglich der Stundennachweise der Mitarbeiter und Mitarbeiterinnen, die nur zeitweise für das Projekt gearbeitet hatten. Alle Fehler konnten vor Einreichen des Abschlussberichts und des abschließenden Budgets korrigiert werden. Und wir absolvierten einen Intensivkurs in Stellenplatzbeschreibung, Vertragsrecht und Besserstellungsverbot. Nur Lob dann vom Landesrechnungshof, der eingehend die Gebühren beleuchtete, die wir für unsere Fort- und Weiterbildungsveranstaltungen erheben. Alle Gebühren wurden für angemessen befunden - kein weiterer Kommentar, eine Auszeichnung in diesen Kreisen. Im Herbst 2016 schließlich die große Evaluierung durch die Leibniz-Gemeinschaft. Wie alle sieben Jahre waren mehrere Mitarbeiterinnen und Mitarbeiter des Instituts einige Monate beschäftigt, die geforderten Statistiken zu ermitteln, Texte zu verfassen und Dokumente zusammenzustellen. Die Gutachtergruppe bewertete die Leistungen der fünfzehn Abteilungen und Arbeitsgruppen im Mittel mit sehr gut. Entscheidend war, dass den öffentlichen Trägern eine uneingeschränkte Fortsetzung der Förderung des Instituts empfohlen wurde. Enttäuschend allerdings, dass der beantragte Sondertatbestand zunächst nicht unterstützt wurde. Der Antrag gründete sich auf das Entwicklungskonzept des Instituts, das eine Stärkung von Epidemiologie und Interventionsforschung vorsieht und bei der vorigen Evaluierung 2009 sehr positiv bewertet worden war, sich bislang aber nicht in einer Erhöhung unserer Grundausstattung widerspiegelte. Die Epidemiologie wurde seither durch Förderung im Rahmen des DZIF zu 06 07

7 signifikanter Größe entwickelt und durch Jürgen Mays W3-Professur aufgewertet. Dagegen konnte die Interventionsforschung mangels zusätzlicher Finanzierung nicht etabliert werden. Denn während der Senat der Leibniz-Gemeinschaft 2009 durchaus eine gewisse Umschichtung innerhalb des Institutsbudgets empfohlen hatte, sprachen sich der Wissenschaftliche Beirat des Instituts und die jetzige Gutachtergruppe konsequent dagegen aus, unsere erfolgreiche Laborforschung zu Gunsten der Interventionsforschung einzuschränken. Die Folge ist, dass das Institut zwar weiterhin durch angewandte Laborforschung und Epidemiologie erfolgreich an den Voraussetzungen für eine verbesserte Gesundheitsversorgung in den betroffenen Ländern arbeitet, den letzten und entscheidenden Schritt aber, die Umsetzung der Arbeitsergebnisse in die Verbesserung von Behandlungs- oder Präventivmaßnahmen, nicht vollziehen kann. Leider folgte der Leibniz-Senat dem Gutachten und empfahl letztlich, den Antrag entsprechend den Plänen des zukünftigen Vorstands zu überarbeiten und erneut einzureichen. So muss diese Ergänzung der Institutsarbeit, die von allen Seiten prinzipiell als zeitgemäß und sinnvoll bewertet wurde, erneut mehrere Jahre warten. Ein idealer Standort auch für die Interventionsforschung wäre das Kumasi Centre for Collaborative Research (KCCR) in Ghana. Ende Oktober 2017 endete die Laufzeit des Staatsvertrags, der vor zwanzig Jahren zwischen dem Hamburger Senat und der ghanaischen Regierung zu Aufbau und Betrieb des KCCR geschlossen worden war. Bereits 2014 hatten wir einen Entwurf zur Erneuerung des Vertrags vorgelegt, dem das ghanaische Gesundheitsministerium noch im selben Jahr zugestimmt hatte. Bis zum Sommer 2017 wurde der Entwurf dann in den Gremien der Universität Kumasi diskutiert, bis er letztlich nach mehrmaligen Nachverhandlungen mit uns mit minimalen Änderungen angenommen wurde. Derzeit wird er im Büro des ghanaischen Parlaments geprüft, die Prüfung durch unsere Behörde und das Auswärtige Amt ist inzwischen abgeschlossen. Gut, dass der alte Vertrag weiterhin gilt und dass keine der Parteien Interesse zeigt, eine nun mögliche Kündigung auszusprechen. Unser jahrelanges Bemühen, Infektionsforschung fachgebietsübergreifend in der UHH zu stärken, scheint nun doch von Erfolg gekrönt, zumindest einstweilen. Gemeinsam wollen BWFG und UHH die universitäre Infektionsforschung in Hamburg ausbauen, um die Kapazitäten der Leibniz-Institute BNITM, HPI und des Forschungszentrums Borstel für die Entwicklung eines Schwerpunkts der Infektionsforschung in Hamburg zu nutzen. Es scheint, als habe ein Besuch unseres Instituts durch Bürgermeister Scholz im Oktober 2016 diesem Vorhaben neuen Auftrieb gegeben. Der Bürgermeister hatte sich kenntnisreich und interessiert gezeigt und dem Besuch eine freundschaftliche und zeitweise humorige Atmosphäre verliehen. Auf Anregung der Senatskanzlei und der BWFG haben wir dann gemeinsam mit Kollegen von MIN-Fakultät, UKE und HPI ein Konzept erarbeitet, das anschließend von den Prodekanen für Forschung der MIN-Fakultät und der Medizinischen Fakultät angepasst wurde. Schließlich hat sich der UHH-Präsident selbst der Sache angenommen und durchgesetzt, das Konzept breit interdisziplinär zu entwerfen und die Geistes- und Sozialwissenschaften von Vornherein mit einzubeziehen - ganz in unserem Sinne. Man darf gespannt sein, wie sich das Vorhaben nun entwickelt. Unsere Beziehung zur Hamburger Wirtschaftsbehörde (BWVI) begann im November 2016 auf einer Reise mit Staatsrat Dr. Bösinger nach Brasilien, vermittelt durch unsere ehemaligen Kollegen bei der altona Diagnostics GmbH. Die Reise lohnte sich. Zum einen konnten wir inzwischen mit Referenzproben im FIOCRUZ- Institut von Rio de Janeiro zeigen, dass unsere neuen Zika-Tests den kommerziell verfügbaren Kits überlegen sind. Und die Behörde lernte das wirtschaftliche Potenzial unserer Forschung kennen und begann, sich für uns zu interessieren. Im Sinne einer zukunftsgerechten Ausrichtung des Instituts halten wir eine enge Verbindung zur Wirtschaft für unerlässlich. Denn öffentliche Träger werden u. E. zukünftig immer stärker drängen, dass wissenschaftliche Einrichtungen ihre Expertise professionell verwerten, um mit eigenen Einnahmen die öffentlichen Haushalte bestmöglich zu entlasten. Diese Anschauung wird von Wirtschaftssenator Horch geteilt, der seine Wertschätzung des Instituts zeigte, als er 2017 seinen alljährlichen Empfang des Hamburger konsularischen Korps bei uns abhielt. Am gleichen Tag durfte das Institut eine besonders illustre Besuchergruppe empfangen. Der Ständige 08 09

8 Vertreter der Bundesrepublik bei den Vereinten Nationen (VN), Dr. Christoph Heusgen, hatte die VN-Botschafter von 18 afrikanischen Staaten zu einem Deutschlandbesuch eingeladen und das BNITM in das Programm aufgenommen. Wir hatten Dr. Heusgen 2014 anlässlich eines Gesprächs mit der Bundeskanzlerin im Rahmen der Ebola- Krise kennen gelernt. Der Besuch verlief äußerst positiv. Die afrikanischen Botschafter zeigten großes Interesse an der Arbeit des Instituts, insbesondere an unseren Afrika-Projekten, und ließen den Besuch nach einer lebhaften Diskussion in heiterer Stimmung ausklingen. In einem Dankesschreiben betonte Botschafter Dr. Heusgen an, der Deutschlandbesuch habe zu einem spürbaren Wohlwollen der afrikanischen Partner mit Blick auf die Kampagne der Bundesregierung für einen nichtständigen Sitz Deutschlands im Sicherheitsrat der Vereinten Nationen beigetragen. Last but not least besuchte uns im Dezember 2017 Christos Stylianides, EU-Kommissar für Humanitäre Hilfe und Krisenmanagement und seinerzeit Ebola-Koordinator der EU. Er wollte sich über die Arbeit in einem European Mobile Lab (EMLab) informieren, das, wie er meinte, einen großartigen Beitrag Europas im Kampf gegen die schreckliche Epidemie geleistet habe. Besonders wichtig sei ihm auch, dass so viele europäische Länder an dem Projekt beteiligt waren; es zeige die Stärke Europas, wenn es gelingt, die Gemeinschaft zu motivieren und zu mobilisieren. Für die Europäische Kommission sei das ebenfalls ein wesentliches Verdienst der Mitarbeiter und Mitarbeiterinnen des BNITM. Etwa zur gleichen Zeit unterzeichneten wir einen Vertrag mit der East African Community über eine intensive Zusammenarbeit bei Einrichtung und ersten Übungseinsätzen von 9 mobilen diagnostischen Laboratorien, die in Burundi, Kenia, Ruanda, Süd- Sudan, Tansania und Uganda länderübergreifend Ausbrüche von Infektionskrankheiten untersuchen sollen. Das dreijährige Projekt wird vom Bundesministerium für wirtschaftliche Zusammenarbeit und Entwicklung über die Kreditanstalt für Wiederaufbau (KfW) mit 10 Mio. finanziert. Eng verwandt mit dem Ebola-Virus ist das Marburg-Virus, das bereits 1967, neun Jahre vor dem Ebola-Virus entdeckt worden war. Den 50. Jahrestag seiner Erstbeschreibung feierten wir zusammen mit den Marburger Kollegen im Rahmen eines kleinen Symposiums. In den Vorträgen der beiden Entdecker im Ruhestand klang noch die alte Rivalität an, wer denn damals den entscheidenden Beitrag geleistet hatte. Die Marburger, die in einem Tierversuch den Erreger vermehrt und Antikörper hergestellt hatten, oder die Hamburger, die mit dem Elektronenmikroskop ein Virus sichtbar gemacht und die fadenförmige Struktur beschrieben hatten, die der Familie der Filoviren ihren Namen gab. Trotz aller Wertschätzung steht das Institut in naher Zukunft vor einer seiner größten Herausforderungen. Unsere Bausubstanz bröckelt. Das Hauptgebäude ist sanierungsbedürftig, und die Aufwendungen für eine Renovierung übersteigen voraussichtlich bei weitem die Kosten eines Neubaus. Unser Vorschlag, das Hauptgebäude als reinen Bürobau zu renovieren und die Laboratorien in einen Neubau auf dem Grund des jetzigen Klinikbaus zu verlagern, wird aktuell hinsichtlich Raumbedarf, Kosten sowie Denkmalschutz, Abrissund Baugenehmigungen geprüft. Eine möglicherweise noch größere Herausforderung ist allerdings das aktuell enorme Interesse an unserem Arbeitsgebiet. Im Laufe der vergangenen Jahre gewannen Tropenkrankheiten, heutzutage treffender als armutsbedingte oder armutsbegünstigte Krankheiten bezeichnet, weiter an politischer Bedeutung. Nachdem das Thema bereits auf dem G7-Gipfel in Schloss Elmau hoch auf der Tagesordnung stand, hielten sich in gewöhnlich gut unterrichteten Kreisen hartnäckig Gerüchte, die Bundesregierung plane, die Forschung zu globaler Gesundheit in der nächsten Legislaturperiode mit einer stattlichen Summe zu fördern. Das Bundesgesundheitsministerium setzte ein Internationales Beratergremium zur globalen Gesundheitspolitik ein, ähnlich das Bundesforschungsministerium, das darüber hinaus ein eigenes Referat Forschung für globale Gesundheit gründete. Schließlich bildeten sich Arbeitskreise und runde Tische, die Projektentwürfe für Hunderte Millionen Euro erarbeiteten. Das BNITM kommt nicht umhin, seine Gremienarbeit weiter zu intensivieren. Angesichts seiner dünnen Personaldecke schwierig, dieses Geschäft nicht zu Lasten der Wissenschaft zu betreiben

9 Erneut erhielten wir wertvolle Unterstützung durch die Mitglieder unseres Wissenschaftlichen Beirats, die besondere Anstrengungen auf sich nahmen, uns vor allem bei der strategischen Ausrichtung des Instituts sachkundig und engagiert zu beraten. Gleichermaßen dankt der Vorstand den Mitarbeiterinnen und Mitarbeitern der Dienstaufsicht führenden Behörden von Land und Bund. Dies gilt insbesondere für Frau Staatsrätin Dr. Eva Gümbel, die als Vorsitzende des Kuratoriums die Interessen des Instituts engagiert und umsichtig vertritt. Unser Dank gilt auch dem Vorstand und allen Mitgliedern der Vereinigung der Freunde des Tropeninstituts, die in den vergangenen Jahren erneut erfolgreich Spenden akquirierten, einige Angebote aufwendig prüfen mussten und die Selbstverwaltung des Vereins aktualisierten. Größter Dank gilt aber wiederum unseren Mitarbeiterinnen und Mitarbeitern für ihre beständige außergewöhnliche Arbeitsbereitschaft, Loyalität und insbesondere für die herausragend gute Arbeitsatmosphäre. Einmal mehr hervorzuheben sind die Kolleginnen und Kollegen, die sich durch ihre Mitarbeit in Gremien wie dem Personalrat und den zahlreichen Kommissionen zusätzlich engagierten. Nun, zum Ende 2017, beendet mein Ausscheiden den Generationswechsel im Vorstand. Ich möchte mich auch an dieser Stelle für das Vertrauen und die große Unterstützung, die ich bei meiner Arbeit von vielen Seiten erfahren habe, sehr herzlich bedanken. Rolf Horstmann 12 13

10 Institutsleitung, Kuratorium & Wissenschaftlicher Beirat 15

11 INSTITUTSLEITUNG Vorstand Prof. Dr. med. Rolf Horstmann (Vorsitz) Prof. Dr. med. Egbert Tannich (stellv. Vorsitz) Birgit Müller (Geschäftsführerin) Mitglieder des Stiftungsvorstands 2017 (von links): Egbert Tannich, Birgit Müller, Rolf Horstmann KURATORIUM Staatsrätin Dr. Eva Gümbel (Vorsitzende) Behörde für Wissenschaft, Forschung und Gleichstellung, Freie und Hansestadt Hamburg Dr. Antina Ziegelmann (stellv. Vorsitzende) Bundesministerium für Gesundheit, Berlin Dr. Katrin Adlkofer mei:do concepts GmbH, Hamburg Prof. Dr. Martin Aepfelbacher Universitätsklinikum Hamburg Eppendorf, Hamburg Prof. Dr. Iris Bruchhaus Bernhard-Nocht-Institut für Tropenmedizin, Hamburg Dr. Matthias Gruhl Behörde für Soziales, Familie, Gesundheit und Verbraucherschutz, Hamburg Jana Holland Bundesministerium für Gesundheit, Bonn Priv.-Doz. Dr. Thomas Jacobs Bernhard-Nocht-Institut für Tropenmedizin, Hamburg Dr. Joachim Klein Bundesministerium für Bildung und Forschung, Berlin Natalie Leroy Hamburg Wasser, Hamburg WISSENSCHAFTLICHER BEIRAT Prof. Dr. Emil Christian Reisinger (Vorsitzender) Universitätsmedizin Rostock, Rostock Prof. Dr. Gundel Harms-Zwingenberger (stellv. Vorsitzende) Charité Universitätsmedizin Berlin, Berlin Prof. Dr. Barbara Bröker Ernst-Moritz-Arndt-Universität, Greifswald Prof. Dr. Heinz Feldmann Rocky Mountain Laboratories, National Institute of Allergy and Infectious Diseases, Hamilton, MT, USA Prof. Dr. med. Gérard Krause Helmholtz-Zentrum für Infektionsforschung, Braunschweig Prof. Dr. Boris Striepen Center for Tropical & Emerging Global Diseases, Athens, GA, USA Prof. Dr. Jürg Utzinger Schweizerisches Tropen- und Public Health-Institut, Basel, Schweiz 16 17

12 Forschung 19

13 VON MÜCKEN UND VIREN Unlängst wurde die beängstigende Nachricht verbreitet, dass die Masse der Insekten in Deutschland um 75% zurückgegangen ist. Dennoch bleiben Insekten eine der gefährlichsten Quellen für die Übertragung von Infektionskrankheiten, insbesondere hierzulande, wo andere Übertragungswege durch aufwendigen Infektionsschutz unterbrochen wurden. Vor drei Jahren haben wir ein Sicherheitsinsektarium in Betrieb genommen. Abgeriegelt durch Schleuse und Luftdusche können wir u. a. Mücken mit Viren infizieren, ohne Gefahr zu laufen, dass die Tierchen wegfliegen und Ausbrüche verursachen. Die Investition hat sich gelohnt. Unsere Forscherinnen und Forscher konnten bereits drängende Fragen beantworten, die sich angesichts der jüngsten transkontinentalen Ausbreitung von Zika- und West-Nil-Viren hinsichtlich einer Einschleppung nach Deutschland stellen. Bild: Arbeit an einer Werkbank im Sicherheitsinsektarium des Instituts

14 Kälteschutz KAUM EINE CHANCE FÜR ZIKA-VIREN Das Zika-Virus löst weltweit Besorgnis aus, seit es sich 2015 epidemisch in Lateinamerika verbreitete und bei Schwangeren schwere fetale Fehlbildungen verursachte. In unserem Sicherheitsinsektarium haben wir einheimische Stechmückenarten (Culex spp.) sowie die Asiatische Tigermücke (Aedes albopictus), die sich allmählich von Süden her in Deutschland ausbreitet, auf ihre Fähigkeit untersucht, Zika-Viren zu übertragen. Keine der einheimischen Mücken war dazu in der Lage und Aedes albopictus nur bei einer Temperatur von 27 C, die bei uns nur in außergewöhnlich warmen Sommern über den erforderlichen Zeitraum von zwei bis drei Wochen erreicht wird. Um einen Ausbruch auszulösen, müsste zudem genau zu dieser Zeit auch noch eine Person einreisen, die Zika-Viren im Blut trägt ein äußerst geringes Risiko. Heitmann A. et al., Euro Surveill 2017, 22:pii=30437 Anna Heitmann, Stephanie Jansen, Renke Lühken, Mayke Leggewie, Marlis Badusche, Jonas Schmidt- Chanasit, Egbert Tannich und externe Kooperationspartner (s. Publikation) Bild: Stechmücken (Culex pipiens) saugen im Labor an Wattestäbchen, die mit virushaltigem Blut getränkt sind. Andere Mücken saugen auch Blut von Oberflächen (s. Titelbild), wieder andere (wie Anopheles-Mücken) nur, wenn sie durch eine Membran stechen

15 Noch nicht angekommen WEST-NIL-VIRUS KANN SICH IN DER GEMEINEN HAUSMÜCKE VERMEHREN 20 Anfang dieses Jahrhunderts breitete sich das West-Nil-Virus innerhalb weniger Jahre über ganz Nordamerika aus und hat dort seither geschätzt Erkrankungen und Todesfälle verursacht. Das Virus wird von Stechmücken übertragen, Vögel sind sein natürlicher Wirt, und man nimmt an, dass Zugvögel es über Länder und Kontinente verschleppen. Auch in Südosteuropa werden Ausbrüche registriert, in den letzten Jahren Einzelfälle auch in Österreich. Deutschland blieb bisher verschont. Durch Untersuchungen im Sicherheitsinsektarium haben wir gefunden, dass in Deutschland heimische Stechmücken (wie unsere gemeine Hausmücke Culex pipiens) und ihre Unterarten das Virus aufnehmen und vermehren können. Allerdings wurde bei einer Untersuchung von mehr als in Deutschland gefangenen Stechmücken nie das Virus nachgewiesen. Auch in untersuchten Hühnereiern aus Südwest Deutschland fanden sich keine Antikörper gegen das Virus, so dass die Hennen offenbar nicht infiziert waren. Bisher wurden zudem nur ganz vereinzelt infizierte Wildvögel gefunden. Offenbar tragen nur wenige unserer Zugvögel das Virus, und daher wurden in Deutschland noch keine Menschen infiziert. Leggewie M. et al., One Health 2016, 2:88-94 Börstler J. et al., Trop Med Int Health 2016, 21: Mayke Leggewie, Marlis Badusche, Martin Rudolf, Stephanie Jansen, Jessica Börstler, Ralf Krumkamp, Katrin Huber, Jonas Schmidt-Chanasit, Egbert Tannich, Stefanie Becker und externe Kooperationspartner (s. Publikationen) Bild: Mücken übertragen das West-Nil-Virus auf Vögel und Säugetiere. Aber nur in Vögeln kann sich das Virus so stark vermehren, dass es durch einen Mückenstich weiter übertragen werden kann. Menschen und insbesondere auch Pferde können zwar infiziert werden und werden auch krank, für die Ausbreitung des Virus bilden sie jedoch eine Sackgasse, weil die Zahl der Viren in ihrem Blut zu gering ist, um sich nach einem erneuten Stich in der Mücke ausreichend zu vermehren. 25

16 Mit der Gen-Uhr gestoppt EINWANDERUNG DES USUTU-VIRUS Wie bei anderen Lebewesen auch sammeln sich im Genom von Viren Mutationen an - nur bei Viren schneller, weil sie sich so rasant vermehren und so kurze Generationszeiten haben. Meist haben die Mutationen keine funktionelle Bedeutung. Man kann sie aber nutzen, um die Viren in Stammbäume zu ordnen: Verwandte Virus- Stämme tragen dieselben Mutationen, in späteren Generationen kommen weitere hinzu. Durch Bestimmung ihrer mittleren zeitlichen Abstände kann man sogar den Zeitpunkt der Verästelungen des Stammbaums abschätzen. Mit dieser Methode hatten wir mit unseren Kooperationspartnern bereits die Ausbreitung des Ebola-Virus in Westafrika nachverfolgt (s. Jahresbericht 2014/2015, S. 21). Jetzt haben wir uns den Stammbaum der Usutu-Viren vorgenommen, die in den vergangenen Jahren fast 20% der Amseln in Südwestdeutschland getötet haben und inzwischen sporadisch auch Menschen in Deutschland infiziert haben. Ihr Stammbaum zeigt, dass sie vor mindestens 500 Jahren in Afrika auftauchten und in den letzten Jahrzehnten immer wieder mit Zugvögeln aus Afrika nach Europa eingeschleppt wurden. Engel D. et al., MBio 2016, 7:e Cadar D. et al., Euro Surveill 2017, 22:pii=30452 Dimitri Engel, Hanna Jöst, Jessica Börstler, Christina Czajka, Renke Lühken, Daniel Cadar, Egbert Tannich, Jonas Schmidt-Chanasit und externe Kooperationspartner (s. Publikationen) Bild: Rekonstruktion der ersten Einwanderungen von Usutu-Viren mit Zugvögeln nach Europa. Inset: Korridore der Wanderwege von Zugvögeln von Afrika nach Europa. 27

17 Australischer Knochenbrecher VERSCHLEPPTE GELENKENTZÜNDUNGEN NACH ROSS-RIVER-FIEBER Das in Australien und der Pazifikregion heimische Ross-River-Virus wird ebenfalls durch Stechmücken übertragen. Es verursacht grippeartige Symptome, häufig aber auch Entzündungen der großen Gelenke, die überraschend lange anhalten und über Jahre immer wiederkehren können. Wir haben bei betroffenen Patienten bestimmte Entzündungsproteine (sogenannte Zytokine) noch lange nach der akuten Infektion im Blut nachgewiesen. Sie sind Zeichen einer nicht ausgeheilten, weiterhin bestehenden Entzündungsreaktion, die sogar zum Verlust von Knochenmasse und zu Knochenbrüchen führen kann. Tappe D. et al., Emerg Infect Dis 2017, 23: Dennis Tappe, Stephan Günther, Jonas Schmidt- Chanasit und externe Kooperationspartner (s. Publikation) Bild: Warnhinweis in einem Endemiegebiet der Übertragung von Ross-River-Viren in Australien

18 VIRALE HÄMORRHAGISCHE FIEBER Am 20. November 2017 würdigten wir in einem kleinen Symposium die virologischen Veteranen Prof. Werner Slenczka, vormals Hygieneinstitut Marburg, und Dr. Günther Müller, vormals BNITM, die vor 50 Jahren das Marburg-Virus entdeckt hatten. Den Jahrestag nahm unser Mitarbeiter Prof. Dennis Tappe zum Anlass, die Rolle des BNITM bei der Entdeckung der Filoviren zu beleuchten. Er fand, dass sich der erste dokumentierte Ausbruch des Ebola-Virus entgegen gängiger Berichterstattung nicht im Hochsommer 1976 am Ebola- Fluss, sondern bereits im Frühsommer des Jahres im Süden des Sudan ereignet hatte und von Dr. Jürgen Knobloch vom BNITM beschrieben und hier virologisch untersucht worden war. Bild: Marburg-Virus im Elektronenmikroskop

19 Gefährliche Schwestern, Teil 1 ENTDECKUNG DES MARBURG-VIRUS Marburg, Deutschland - August 1967 Im Spätsommer 1967 erkrankten Pfleger von Menschenaffen (Grünen Meerkatzen) in den Behringwerken mit hohem Fieber, inneren Blutungen und Organversagen. Fünf der 25 Patienten starben. Wenig später trat die Infektion auch an Instituten in Frankfurt und Belgrad auf, in denen ebenfalls mit Grünen Meerkatzen gearbeitet wurde. In Marburg gelang es, den Erreger in Meerschweinchen zu vermehren, in deren Blut er am 20. November 1967 am BNITM elektronenmikroskopisch identifiziert und charakterisiert wurde. Als der Nachweis auch im Blut der Patienten gelang, wurde das Virus als Erreger der neuen Krankheit anerkannt. Bild: Pressemeldungen über den ersten bekannten Ausbruch von Filoviren 1967 in den Behringwerken in Marburg (Quelle: SFB 1021, RNA viruses: RNA metabolism, host response and pathogenesis)

20 Gefährliche Schwestern, Teil 2 ENTDECKUNG DES MARIDI-VIRUS (EBOLA-SUDAN-VIRUS) Nzara, Sudan (heute Süd Sudan) - Juni 1976 Ende Juni 1976 wurde aus Nzara im Süden des Sudan, nahe der Grenze zum damaligen Zaire, über einzelne Fälle einer tödlichen Erkrankung berichtet, die auch das Personal des regionalen Krankenhauses in Maridi erfasst hatte. Im August 1976 rief die Weltgesundheitsorganisation internationale Hilfe für das verwaiste Krankenhaus. Dr. Jürgen Knobloch vom BNITM trat allein die Reise an und berichtete später, er sei längere Zeit der einzige Arzt im Haus gewesen. Bis Ende November stieg die Zahl der Todesfälle auf 230, vier davon im 1500 km nördlich gelegenen Khartoum, nachdem Patienten dorthin verlegt worden waren. Jürgen Knobloch entnahm zahlreiche Autopsieproben. In einem kleinen Teil davon, der unter abenteuerlichen Umständen Hamburg erreichte, wurde elektronenmikroskopisch ein Virus mit großer Ähnlichkeit zum Marburg-Virus nachgewiesen. Die Hamburger nannten es Maridi-Virus. Bild: Verspätete Pressemeldung über den Ausbruch von hämorrhagischem Fieber im Süden des Sudan. Dr. Jürgen Knobloch vom BNITM war bereits im August nach Maridi gereist. Offenbar wurde sein Einsatz nicht allgemein bekannt gemacht oder zur Kenntnis genommen

21 Gefährliche Schwestern, Teil 3 ENTDECKUNG DES EBOLA-VIRUS Yambuku, Zaire (heute Demokratische Republik Kongo) August 1976 Ende August berichtete die WHO von Fällen von hämorrhagischem Fieber in Yambuku, nahe dem Ebola- Flüsschen im Norden von Zaire. Eine elektronenmikroskopische Untersuchung der Proben aus Zaire und dem Sudan in den Centers for Disease Control (CDC) (USA), an der Universität Antwerpen und im Microbiological Research Establishment (MRE) im englischen Porton Down zeigte die gleiche Morphologie wie das Marburg- Virus. Eine Untersuchung mit Antikörpern zeigte aber, dass es sich um ein anderes Virus handeln musste. Es wurde nach dem Flüsschen Ebola benannt. Bild: Die alte Karte zeigt, dass Nzara im Sudan (heute Südsudan) und Yambuku in Zaire (heute Demokratische Republik Kongo), die Orte der ersten dokumentierten Ebola-Ausbrüche, nicht sehr weit voneinander entfernt liegen. Inset: Namensgebung des Ebola-Virus durch das Gesundheitsministerium von Zaire

22 Vom einen zu viel, vom anderen zu wenig TÖDLICHE FEHLREGULATION Im Rahmen des Einsatzes der European Mobile Laboratories (EMLabs) während der Ebola-Epidemie wurden von 157 Ebola-Patienten Blutproben kurz nach der Krankenhausaufnahme entnommen. Unsere Untersuchungen konzentrierten sich auf einen Vergleich der Immunantwort von Patienten, die im Verlauf der Infektion starben, und solchen, die überlebten. Während die Zahl der aktivierten Helfer- T-Lymphozyten und zytotoxischen T-Lymphozyten in beiden Gruppen gleichermaßen erhöht war, fanden sich bei Patienten mit tödlichem Krankheitsverlauf zum einen deutlich höhere Serumkonzentrationen von Molekülen, die Entzündungsreaktionen auslösen (Zytokine), und zum anderen auf den Lymphozyten eine stark erhöhte Zahl von Molekülen, die die Lymphozyten- Aktivierung hemmen (CTLA-4, PD-1). Offenbar geht bei der Ebola-Infektion eine Kombination von starker Entzündungsreaktion und fehlgesteuerter Aktivität von T-Lymphozyten mit schweren und tödlichen Verlaufsformen einher. Ruibal P. et al., Nature 2016, 533:100-4 Paula Ruibal, Lisa Oestereich, Anja Lüdtke, Beate Becker-Ziaja, David M. Wozniak, Romy Kerber, Mar Cabeza-Cabrerizo, Sophie Duraffour, Elisa Pallasch, Tobias Holm, Thomas Jacobs, Benno Kreuels, Martin Gabriel, Stephan Günther, César Muñoz-Fontela und externe Kooperationspartner (s. Publikation) Bild: Eine starke, vermutlich außer Kontrolle geratene Entzündungsreaktion trägt wesentlich zu tödlichen Verläufen von bakteriellen Blutinfektionen und offenbar auch von Ebola-Infektionen bei. Da sie durch scheinbar ungebremste Ausschüttung bestimmter Botenstoffe, so genannter Zytokine, vermittelt wird, spricht man von einem Zytokin- Sturm (modifiziert nach Microbiol Mol Biol Rev 2012, 76:16-32)

23 Kappenklau ATOMARE STRUKTUR EINES DIEBISCHEN ENZYMS VON ARENA- UND HANTAVIREN RNA besteht aus Ketten von Bausteinen sehr ähnlich der Erbsubstanz DNA, ist jedoch strukturell flexibler und funktionell vielfältiger, andererseits aber auch weniger stabil. Um sie vor vorzeitigem Abbau zu schützen, enthält der erste Baustein bestimmter RNA-Moleküle, der Boten-RNA, eine chemische Modifizierung, die als Kappe bezeichnet wird. Viren können sich im Körper nur vermehren, wenn auch ihre Boten-RNA mit einer Kappe versehen ist. Einige Viren wie z.b. Influenza-, Arenaund Hanta-Viren, die diese Kappen nicht herstellen können, lassen infizierte Zellen ein Protein herstellen, das solche Kappen von der RNA der Zelle abschneidet und auf die eigene RNA überträgt. Wir haben dieses Enzym bei einem Lassa-ähnlichen Arena-Virus und einem Hanta-Virus durch Röntgenstrukturanalyse in atomarer Auflösung charakterisiert, um zu versuchen, gezielt Hemmstoffe zu entwerfen. Die Hemmung solcher Kappen-Diebe gilt als vielversprechender Ansatz zur Entwicklung neuer Wirkstoffe gegen zahlreiche Virus- Infektionen. Fernández-García Y. et al., PLoS Pathog 2016, 12:e Rosenthal M. et al., PLoS Pathog 2017, 13:e Maria Rosenthal, Yaiza Fernández-García, Nadja Gogrefe, Dominik Vogel, Carola Busch, Stephan Günther, Sophia Reindl und externe Kooperationspartner (s. Publikationen) Bild: Atomare Struktur der beiden entscheidenden Teile eines Kappen-Diebs von Arena- und Hanta- Viren (dargestellt als Bändermodell): Links der Teil, von dem man annimmt, dass er die Kappe der Wirtszellen-RNA bindet, und rechts der Teil, der die Kappe von der RNA abschneidet. Ein RNA- Molekül wurde in die Struktur hineinmodelliert (dargestellt als Stäbchen). 41

24 VERNACHLÄSSIGTE TROPENKRANKHEITEN keine NTDs 1 Murray C.J.L. et al., Lancet 2012, 380: Die NTDs sind nicht einheitlich definiert. Die Weltgesundheitsorganisation (WHO) fasst derzeit 20 Krankheiten unter dem Begriff zusammen: Buruli-Ulkus, Chagas-Krankheit, Dengue-Fieber und Chikungunya, Drakunkulose (Medina-Wurm), Echinokokkose, Endemische Treponematosen, Nahrungsmittel-übertragene Trematoden-Infektionen, Humane Afrikanische Trypanosomiasis (Schlafkrankheit), Leishmaniasen, Lepra, Lymphatische Filariosen, Onchozerkose (Flussblindheit), Tollwut, Schistosomiasen, Geohelminthen (Boden-übertragene Wurminfektionen), Taeniasis und (Neuro-) Zystizerkose, Trachom, Chromoblastomycosis und andere tiefe Mykosen, Schlangenbisse sowie Krätze. Andere Organisationen reihen Durchfallerkrankungen, bakterielle Pneumonien und Meningitis, chronische eitrige Mittelohrentzündung (CSOM), Salmonellosen, bestimmte Formen der Hepatitis, Myzetom, rheumatisches Fieber, Leptospirose, Nodding-Syndrom (NS) und Podokoniose in die Definition der NTDs ein In den 1990er Jahren wurde das Maß der Disability-Adjusted Life Years (DALY) entwickelt, das die globale gesellschaftliche Bedeutung einer Krankheit quantitativ zu beschreiben versucht. Es berechnet die verlorenen oder eingeschränkten Lebensjahre durch Tod bzw. Behinderung, wobei der Schweregrad der Behinderung in die Berechnung eingeht. Somit beschreiben DALYs die Differenz zwischen der Wirklichkeit und dem Ideal, dass alle Menschen bei voller Gesundheit bis zu dem Alter ihrer mittleren Lebenserwartung leben. Mit der Einführung von DALYs wurde dokumentiert, dass einer solchen Berechnung zu Folge Malaria (82,7 Mio DALY) 1, HIV/Aids (81,6 Mio DALY) und Tuberkulose (49,4 Mio DALY) die mit Abstand bedeutendsten Armutskrankheiten sind. Daraufhin beschlossen große internationale Förderorganisationen, sich bei der Bekämpfung von Armutskrankheiten zunächst auf diese großen Drei zu konzentrieren. Als Reaktion wurde von der Organisation Ärzte ohne Grenzen der Begriff der vernachlässigten Tropenkrankheiten (Neglected Tropical Diseases, NTDs) für solche Erkrankungen geprägt, die nicht berücksichtigt wurden, in ihrer Summe aber gleichfalls großes menschliches Leid und weitreichende ökonomische Schäden verursachen (21,0 Mio DALY) 2. Bild: Vorkommen Vernachlässigter Tropenkrankheiten (Neglected Tropical Diseases, NTDs) (Quelle: Integrierte Umsetzung der Bekämpfung von NTDs Potential Deutschlands, Deutsches Netzwerk gegen vernachlässigte Tropenkrankheiten, 2017) 43

25 An zwei Fronten ANALYSE DER MEDIKAMENTENRESISTENZ VON LEISHMANIEN UND WIRKSTOFFSUCHE Mit geschätzt 12 Mio. Erkrankten gehören Leishmaniosen zu den wichtigsten Vernachlässigten Tropenkrankheiten. Einige Leishmanien-Arten befallen nur die Haut, andere die Haut-Schleimhaut-Übergänge und bewirken entstellende Defekte im Gesicht. Wieder andere infizieren innere Organe und verursachen lebensbedrohliche Allgemeinerkrankungen. Die uralte, aber immer noch weit verbreitete Standardbehandlung mit Antimon, einem Arsen-ähnlichen Gift, wird derzeit durch zunehmende Resistenz der Leishmanien in ihrer Wirksamkeit gefährdet. Auf der Suche nach den Ursachen und nach neuen Medikamenten haben wir zum Fortschritt an beiden Fronten beigetragen. So haben wir eine kleine Gruppe von Leishmanien- Genen gefunden, die eine Familie um ein bekanntes Gen bildet, das zur Antimon- Resistenz beiträgt. Um die Resistenz zu umgehen, entwickeln und untersuchen wir in einem Forschungsverbund neue Substanzen, die gegen die Parasiten wirken könnten. Dabei fanden wir, dass sogenannte Flavonole, die sich von Pflanzenstoffen ableiten, wirksam sind - möglicherweise ein Ansatz für neue Medikamente. Tejera Nevado P. et al., Antimicrob Agents Chemother 2016, 60: Borsari C. et al., J Med Chem 2016, 59: Paloma Tejera Nevado, Eugenia Bifeld, Katharina Höhn, Julia Eick, Joachim Clos und externe Kooperationspartner (s. Publikationen) Bild: Massive Infektion von Abwehrzellen (Makrophagen) mit Leishmanien. Zellen stellen sich als graue Flächen dar, Zellkerne als große violette Kreise, Leishmanien als kleine violette Punkte mit grauem Hof. 45

26 Parasitenstoff gegen Parasiten AMÖBENSUBSTANZ ZUR BEHANDLUNG DER HAUTLEISHMANIOSE Die häufigste Form der Leishmaniosen ist die Hautleishmaniose, die zunächst eine Schwellung ( Aleppo-Beule ) und in der Folge chronische Geschwüre verursacht. Leishmanien lassen sich offenbar von Abwehrzellen, sog. Makrophagen, fressen, bei vielen Menschen aber in den Fresszellen nicht abtöten. Ein logischer Ansatz für eine Behandlung ist es daher, die Zellen so zu aktivieren, dass sie die gefressenen Leishmanien verdauen. Wir haben aus der Zellmembran von Amöben (Entamoeba histolytica) eine Substanz gereinigt, die wie keine andere bekannte Substanz Makrophagen aktiviert. Sowohl mit infizierten Makrophagen im Reagenzglas, als auch in einem Mausmodell für Hautleishmaniose fanden wir, dass die Amöbensubstanz die Zahl der Leishmanien drastisch reduzierte. Die gleiche Wirkung zeigten einige synthetisch hergestellte Fragmente dieser Substanz. Weitere Studien müssen zeigen, ob solche Fragmente auch gegen weitere Leishmanien-Arten und andere Infektionserreger wirken, die sich in Makrophagen einnisten, wie z.b. Tuberkulose-Bakterien. Choy S.L., Bernin H. et al., Sci Rep 2017, 7:9472 Siew Ling Choy, Hannah Bernin, Eugenia Bifeld, Sarah Corinna Lender, Melina Mühlenpfordt, Jill Noll, Julia Eick, Claudia Marggraff, Hanno Niss, Joachim Clos, Egbert Tannich, Hanna Lotter und externe Kooperationspartner (s. Publikation) Bild: Patient mit charakteristischem trockenem Hautgeschwür bei Hautleishmaniose. In Kratzpräparaten vom Rand des Geschwürs können Experten die Parasiten in den Makrophagen mikroskopisch nachweisen. 47

27 Einheizer PROTEIN MIT UNBEKANNER FUNKTION MACHT AMÖBEN AGGRESSIV Der Parasit Entamoeba histolytica kann jahrelang im Darm von Menschen leben, ohne Beschwerden zu bereiten. Aus bisher unbekannten Gründen können die Amöben dann allerdings in die Darmwand und ins Blut eindringen und blutende Darmgeschwüre bzw. Organabszesse verursachen. Um diesen Vorgang besser zu verstehen, nutzen wir verschiedene Tiermodelle und vergleichen Amöben, die große Abszesse verursachen, mit harmlosen Artgenossen. Wir fanden viele Gene, die bei den aggressiven und harmlosen Amöben in unterschiedlichem Maß von den Chromosomen abgelesen ( exprimiert ) werden. Eines der Gene, das bei aggressiven Amöben deutlich verstärkt abgelesen wird, kodiert für ein bisher unbekanntes Protein. Vermutlich trägt es dazu bei, dass die Amöben Abszesse bilden. Damit böte sich ein Angriffspunkt für eine neue Form der Behandlung. Meyer M. et al., PloS Pathog 2016, 12:e Martin Meyer, Helena Fehling, Jenny Matthiesen, Stephan Lorenzen, Kathrin Schuldt, Hannah Bernin, Mareen Zaruba, Corinna Lender, Egbert Tannich, Hanna Lotter, Iris Bruchhaus und Kooperationspartner (s. Publikation) Bild: Vergleich der Gene, die bei aggressiven und harmlosen Formen von Amöben (Entamoeba histolytica) abgelesen ( exprimiert ) wurden. Die offenen grauen Punkte auf der Diagonale zeigen Gene an, deren Expression sich in den beiden Formen der Amöben nicht signifikant unterschied. Demgegenüber markieren rote und blaue Punkte Gene, für die sich mehr oder weniger starke Unterschiede fanden. Eingekreist ist das unbekannte Gen. 49

28 With a little help from my friends IMMUNABWEHR VON RICKETTSIEN Rickettsien sind kleine Bakterien, die sich in lebenden Zellen vermehren. Es gibt mehrere Arten, die von Flöhen, Zecken, Läusen bzw. Milben übertragen werden und unterschiedliche Krankheiten verursachen. Rickettsia typhi verursacht das sog. Endemische Fleckfieber, das schwerwiegende Komplikationen auslösen kann. Es ist nahezu weltweit verbreitet. Wir untersuchen an verschiedenen Mausmodellen, wie das Immunsystem die Infektion überwinden kann. Obwohl die Rickettsien innerhalb von Zellen leben, scheint die zellschädigende Aktivität sog. zytotoxischer T-Zellen (CD8-positive Lymphozyten) keine übergeordnete Rolle bei der Abwehr zu spielen, obwohl sie darauf spezialisiert sind, infizierte Körperzellen abzutöten. Interessanterweise waren Helfer-T-Zellen (CD4-positive Lymphozyten) von großer Bedeutung: Offenbar dringt R. typhi in Fresszellen des Immunsystems ein (neutrophile Granulozyten und Makrophagen), ohne von diesen Zellen erkannt zu werden. Erst wenn die Fresszellen von Helfer-T-Zellen aktiviert werden, mobilisieren sie ihre Waffen und töten die eingedrungenen Rickettsien ab. Papp S. et al., PLoS Negl Trop Dis 2016, 10:e Moderzynski K. et al., PLoS Negl Trop Dis 2016, 10:e Moderzynski K. et al., PLoS Negl Trop Dis 2017, 11:e Kristin Moderzynski, Stefanie Papp, Liza Heine, Jessica Rauch, Svenja Kühl, Ulricke Richardt, Heidelinde Müller, Bernhard Fleischer und Anke Osterloh Bild: Zelle, die mit Rickettsien infiziert ist. Die elektronenmikroskopische Darstellung zeigt nahezu die gesamte Zelle, Rickettsien sind als dunkelgraue Areale sichtbar

29 Es wird eng BEDROHLICHE ANTIBIOTIKARESISTENZ IN AFRIKA Salmonellen sind eine Hauptursache für Blutbahninfektionen in Afrika südlich der Sahara. Wenn die Bakterien in die Blutbahn gelangen, verursachen sie Erkrankungen mit hoher Sterblichkeit. Eigentlich können diese Infektionen gut mit Antibiotika behandelt werden. Ähnlich wie in Europa steigt jedoch die Zahl der antibiotikaresistenten Bakterien auch in Afrika bedrohlich an. Zusammen mit unseren Kooperationspartnern haben wir entdeckt, dass bestimmte Salmonellen (hauptsächlich Salmonella enterica Serovar Enteritidis), die Blutbahninfektionen verursachen, in Ghana eine verminderte Empfindlichkeit gegenüber einem breit eingesetzten Antibiotikum (Ciprofloxacin) entwickelt haben. Sollte diese Entwicklung anhalten, sind dort kaum noch gut wirksame Antibiotika gegen diese Salmonellen verfügbar. Eibach D. et al., Clin Infect Dis 2016, 62 Suppl 1:S32-6 Daniel Eibach, Hassan Al-Emran, Denise Dekker, Ralf Krumkamp, Christa Ehmen, Anna Jaeger, Jürgen May und externe Kooperationspartner (s. Publikation) Bild: Standardverfahren zur Antibiotika-Testung: Während Bakterien (ein homogenes Isolat) in einer Petrischale zu einem zusammenhängenden Rasen wachsen, werden Plättchen dazu gelegt, die mit verschiedenen Antibiotika getränkt sind. Ist das Antibiotikum wirksam, bildet sich um das Plättchen ein bakterienfreier Kreis, ein sog. Hemmhof. Generell gilt, je kleiner der Hemmhof, desto geringer die Wirkung. Bildet sich gar kein Hemmhof (im Bild bei 4 und 7 Uhr), sind die Bakterien vollständig resistent. 53

30 DAS VERSTECK DER MALARIAPARASITEN Malariaparasiten verursachen Krankheitserscheinungen nur in ihrem Blutstadium, d.h., wenn sie sich in roten Blutkörperchen einnisten und vermehren. Dabei entwickeln sich tödliche Komplikationen fast ausschließlich bei Infektionen mit Plasmodium falciparum. Ein wesentlicher Grund dafür ist, dass P. falciparum in einem aufwendigen Prozess eigene Eiweißmoleküle auf die Oberfläche des befallenen roten Blutkörperchens transportiert und mit ihnen das Blutkörperchen an den Wänden kleiner Blutgefäße anheftet. Dadurch stören sie die Mikrozirkulation und können tödliche Organschäden verursachen, insbesondere bei Anheftung in den Blutgefäßen des Gehirns. Der Vorteil für die Parasiten ist, dass sie sich durch das Anheften in kleinen Blutgefäßen dem Kreislauf entziehen und so die Passage durch die Milz vermeiden, die rote Blutkörperchen mit Malariaparasiten oder anderen klobigen Bestandteilen aus dem Blut herausfiltert. Weil sich P. falciparum in kleine Blutgefäße verkriecht, kann es sich besonders rasch und zahlreich vermehren. Bild: Durch Reiben am Brustbein wird ein Kind mit Beteiligung des Gehirns bei Malaria ( zerebraler Malaria ) auf seine Reaktion auf Schmerzreize untersucht. Mit einer Sterblichkeitsrate von ca. 20% ist zerebrale Malaria die gefährlichste Form der Erkrankung

31 Gefährliche Bindung PROTEINE VON PLASMODIUM FALCIPARUM, DIE AN WÄNDE VON BLUTGEFÄSSEN BINDEN Nicht selten kommen die Oberflächenmoleküle, die Plasmodium falciparum auf Blutgefäßwänden nutzt, um von ihm befallene rote Blutkörperchen anzuheften, nur in den Blutgefäßen bestimmter Organe vor, so dass speziell diese Organe durch die Malaria geschädigt werden. Wir haben einige dieser Oberflächenmoleküle gentechnisch auf Hamsterzellen gebracht. Durch wiederholte Bindungszyklen haben wir diejenigen Proteine von P. falciparum angereichert und charakterisiert, die spezifisch an die ausgesuchten menschlichen Oberflächenmoleküle auf den Hamsterzellen binden. Wir hoffen, dass man zukünftig einen Cocktail solcher Bindungsmoleküle von P. falciparum als Impfstoff einsetzen kann, so dass Menschen Antikörper bilden, die das Anheften der infizierten roten Blutkörperchen blockieren und so den Organbefall verhindern. Metwally N.G. et al., Sci Rep 2017, 7:4069 Nahla Metwally, Ann-Kathrin Tilly, Pedro Lubiana, Lisa Roth, Michael Dörpinghaus, Stephan Lorenzen, Kathrin Schuldt, Susanne Witt, Anna Bachmann, Egbert Tannich, Iris Bruchhaus und externe Kooperationspartner (s. Publikation) Bild: Schnitt durch Hirngewebe eines Patienten, der an einer Gehirnbeteiligung der Malaria, der sog. zerebralen Malaria, gestorben ist. Nervenfasern stellen sich weiß dar, rote Blutkörperchen rot, braun das Abbauprodukt des roten Blutfarbstoffs nach Aufnahme und Verdauung in Malariaparasiten ( Malariapigment ). 57

32 Gehe zurück auf Start NACH DEM MÜCKENSTADIUM STARTET PLASMODIUM FALCIPARUM DIE SERIE DER VAR-GENE VON VORN Die Proteine, die P. falciparum nach außen auf die Oberfläche der von ihm befallenen roten Blutkörperchens transportiert, um die Zellen an der Wand kleiner Blutgefäße anzuheften (s. S. 57), werden durch unsere Abwehrzellen erkannt. Diese bilden dann Antikörper, die die Anheftung blockieren. Um dieser Blockade auszuweichen, trägt jedes P. falciparum etwa 60 verschiedene Gene genannt var-gene, die jeweils für ein anderes Oberflächenmolekül kodieren und die P. falciparum während seines Blutstadiums nacheinander aktiviert, so dass es schrittweise unterschiedliche Proteine für das Anheften seines roten Blutkörperchens nutzt und den Antikörpern immer einen Schritt voraus ist. Reihenfolge und Regulation dieses schrittweisen Wechsels sind derzeit weitgehend unbekannt, aber für die Entwicklung von Impfstoffen und Medikamenten von großer Bedeutung. Erst durch Untersuchungen an Freiwilligen, die im Rahmen kontrollierter Impfstudien durch Mückenstiche mit demselben P. falciparum-isolat infiziert worden waren, konnten wir nachweisen, dass P. falciparum nach Übertragung durch die Mücke immer eine bestimmte Gruppe von var-genen gleichzeitig aktiviert. Offenbar schicken die Parasiten verschiedene Proteine für die Bindung an Gefäßwände ins Rennen, für den Fall, dass der Infizierte von einer früheren Infektion bereits über Antikörper gegen das eine oder andere von ihnen verfügt. Bachmann A. et al., PLoS Pathog 2016, 12:e Anna Bachmann, Ralf Krumkamp, Judith Scholz, Egbert Tannich und externe Kooperationspartner (s. Publikation) Bild: Aktivierung der var-gene im Lebenszyklus des Malariaparasiten Plasmodium falciparum. Der Kreis rechts oben zeigt die Verteilung der abgelesenen var-gene in den Parasiten, mit denen die Mücken infiziert wurden und die vermutlich von den Mücken übertragen wurden, der Kreis links unten die Verteilung der abgelesenen var-gene in den Parasiten im menschlichen Blut nach dem Mückenstich und der Leberpassage. 59

33 Modell gesucht MAUSMALARIA ALS MODELL FÜR DIE TÖDLICHE MALARIA DES MENSCHEN? Der Wert von Tierversuchen für die Erforschung von Infektionskrankheiten des Menschen wird zunehmend angezweifelt. Andererseits ist es aber auch von großem Nachteil, wenn es gar kein überzeugendes Tiermodell gibt, wie im Fall der lebensbedrohlichen Komplikationen der menschlichen Malaria durch P. falciparum. So findet man zwar eine gewisse Hirnbeteiligung bei der Mausmalaria durch Plasmodium berghei, aber ihr Wert als Modell für die zerebrale Malaria des Menschen ist umstritten, weil die Hirnschädigung mikroskopisch anders aussieht und P. berghei nicht über var-gene (s. S. 59) verfügt. Nun haben wir gefunden, dass P. berghei ähnliche Proteine besitzt wie die, die P. falciparum nutzt, um die Proteine für die Bindung an Blutgefäße auf die Oberfläche der infizierten roten Blutkörperchen zu transportieren. P. berghei verwendet auch die gleichen Rezeptoren, lagert die befallenen roten Blutkörperchen allerdings bevorzugt in den Blutgefäßen des Fettgewebes und der Lungen an, weniger in Hirngefäßen. Die Mausmalaria könnte also doch als Modell für Organschäden bei der menschlichen Malaria taugen. De Niz M. et al., Nat Commun 2016, 26:11659 Ann-Katrin Ullrich, Arlett Heiber, Alexandra Blancke Soares, Monica Prado, Sven Flemming, Tobias Spielmann und externe Kooperationspartner (s. Publikation) Bild: Plasmodium berghei in Blutgefäßen des Fettgewebes infizierter Mäuse. Die charakteristischen Ringstrukturen entstehen durch Herauslösen der großen runden Fetteinlagerung im Zentrum der Fettzellen bei der Fixierung mit Alkohol. Zellkörper sind grün, Malariaparasiten rot gefärbt

34 IMMUNOLOGIE Ständig zunehmende Antibiotikaresistenzen bereiten derzeit größte Sorgen in der Gesundheitsversorgung weltweit, insbesondere, da immer seltener neue Antibiotika entdeckt oder entwickelt werden. Gleichzeitig versteht man unser Abwehrsystem immer besser und auch, warum einzelne Menschen von Natur aus vor bestimmten Infektionen geschützt sind. Vielleicht sollte man diese Erkenntnisse stärker nutzen, um Medikamente zu entwickeln, die das Abwehrsystem empfänglicher Menschen so beeinflussen, dass es wie das Abwehrsystem derjenigen Menschen reagiert, die von Natur aus geschützt sind. Diese Art von Medikamenten gibt es schon, zur Behandlung von Autoimmunerkrankungen. Sie werden Immunmodulatoren genannt. Es gibt Gründe anzunehmen, dass es Infektionserregern ungleich schwerer fallen würde, gegen solche Medikamente Resistenzen zu entwickeln

35 Balanceakt IMMUNSUPPRESSION BEI MALARIA 64 Bekanntermaßen kann unser Immunsystem einen deutlichen Schutz vor wiederholten Malariaerkrankungen aufbauen. Andererseits gibt es Hinweise, dass die Immunantwort auch an der Entwicklung lebensbedrohlicher Komplikationen bei der Malaria durch Plasmodium falciparum beteiligt ist. Normalerweise wird das Immunsystem bei einer akuten Infektion nach anfänglicher Aktivierung wieder gebremst, indem zentrale Regulatoren (T-Lymphozyten) dann auf ihrer Oberfläche Rezeptoren für Hemmstoffe (CTLA4, PD1) präsentieren. Wir fanden bei Personen, die in Deutschland wegen einer Malaria behandelt wurden, eine deutlich größere Zahl dieser Rezeptoren als bei gesunden Vergleichspersonen. Im Labor bewirkten rote Blutkörperchen, die mit P. falciparum infiziert waren, eine signifikante Zunahme solcher T-Lymphozyten mit Rezeptoren für Hemmstoffe. Diese Lymphozyten hemmten wiederum andere T-Lymphozyten, die auf P. falciparum reagierten. Eine solche vorübergehende Hemmung von T-Lymphozyten scheint einerseits nachteilig zu sein, weil sie die Immunabwehr gegen Malaria behindert, andererseits aber vorteilhaft, weil sie immunbedingte Entzündungsreaktionen abschwächt, die zur Entwicklung lebensbedrohlicher Komplikationen beitragen eine delikate Balance. Jetzt gilt es herauszufinden, ob man diese beiden Wirkungen trennen und unabhängig voneinander beeinflussen kann. Mackroth M.S. et al., PLoS Pathog 2016, 12:e Maria Mackroth, Annemieke Abel, Christiane Steeg, Thomas Jacobs und externe Kooperationspartner (s. Publikation) Bild: Ein neuartiger Algorithmus ermöglicht es, Immunzellen anhand mehrerer Eigenschaften in einem Stammbaum anzuordnen, hier im Vergleich hemmender Rezeptoren von T-Lymphozyten bei Kindern mit unkomplizierter und komplizierter Malaria (Skala von hohen [rot] zu niedrigen [blau] Werten). 65

36 Rausschmeißer MASTZELLEN ALS EFFEKTOREN, NICHT ALS REGULATOREN DER ABWEHR GEGEN WÜRMER Fast ein Drittel der Weltbevölkerung ist mit parasitären Würmern infiziert. Strongyloides ratti ist ein Darmwurm von Ratten, mit dem sich auch Mäuse infizieren lassen und der so als Labormodell für Infektionen des Menschen dient. Wie bei verwandten Würmern des Menschen dringen die Larven von S. ratti über die Haut ein, können durch Bindegewebe und Lunge wandern und entwickeln sich in der Darmschleimhaut zu erwachsenen Würmern. Wir hatten gezeigt, dass basophile Granulozyten und Mastzellen, hochspezialisierte Zellen der angeborenen Infektionsabwehr im Blut bzw. in Geweben, entscheidend an der Bekämpfung von S. ratti beteiligt sind. Durch Infektion von Mäusen, deren basophile Granulozyten und Mastzellen entweder generell oder spezifisch nur im Bindegewebe ausgeschaltet worden waren, fanden wir nun, dass Mastzellen zwar bei der Austreibung erwachsener Würmer aus dem Darm unerlässlich sind, aber keine übergeordnete Rolle bei der generellen Steuerung der Immunabwehr gegen diese Würmer spielen. Reitz M. et al., Mucosal Immunol 2017, 10: Martina Reitz, Marie-Luise Brunn, Minka Breloer und externe Kooperationspartner (s. Publikation) Bild: Darmschleimhaut mit zwei Mastzellen (Pfeile). Die hochspezialisierten Abwehrzellen sind durch Einschlusskörperchen (Granula) gekennzeichnet, die basisches Histamin enthalten und mit der Färbung (Toluidin) dunkelblau erscheinen. Hellblau stellt sich die Darmschleimhaut mit ihren Zotten dar, langen Ausstülpungen, die zur besseren Adsorption von Nahrungsmitteln die Darmoberfläche vergrößern

37 Erbstück ANGEBORENER SCHUTZ VOR TUBERKULOSE Mehr als ein Drittel der Weltbevölkerung ist mit Mycobacterium tuberculosis, dem Erreger der Tuberkulose, infiziert, doch nur ein kleiner Anteil der Infizierten wird krank. Über die schützenden Faktoren ist wenig bekannt, von Zwillingsstudien weiß man aber, dass genetische Anlagen eine überragende Rolle spielen. Wir haben bei einer Reihe von Afrikanern eingehend die Gene der Proteine untersucht, die auf der Oberfläche von Abwehrzellen Infektionserreger erkennen. Durch einen Vergleich von Tausenden Tuberkulose-Patienten mit nicht erkrankten Personen haben wir gefunden, dass eine Mutation, die die Struktur der Bindungsstelle eines solchen Erkennungsproteins (TLR1) verändert, einen außergewöhnlich starken Schutz von über 80% vor Tuberkulose bewirkt. Offenbar erkennt diese Variante von TLR1 die Tuberkulose- Bakterien besonders gut und leitet wirksame Abwehrreaktionen ein. Allerdings ist sie sehr exklusiv, in der schützenden (homozygoten) Form kommt sie nur bei ca. 0,6% der untersuchten Afrikaner und ca. 0,1% der Europäer vor. Vermutlich ist sie entweder erst vor wenigen Generationen entstanden oder bei anderen Abwehrreaktionen von Nachteil, sonst hätte sie sich im Lauf der Evolution stärker in der Bevölkerung verbreitet. Meyer C.G. et al., PLoS One 2016, 11:e Christian Meyer, Christa Ehmen, Gerd Ruge, Rolf Horstmann, Thorsten Thye und externe Kooperationspartner (s. Publikation) Bild: Atomare Struktur des Toll-Like Receptor 1 (TLR1, grün) im Komplex mit einer Kette des TLR2 (blau). Der Pfeil markiert der Stelle, an der die Mutation, die vor TB schützt, das Molekül verändert, nämlich in der Bindungsstelle zur Erkennung von Strukturen von Infektionserregern - hier vertreten durch die synthetische Substanz PAM3CSK4 (rötlich-graue Stäbchen), die im Labor als Ersatz für ein Molekül in der äußeren Membran von Bakterien verwendet wird, das vom TLR1 erkannt wird. 69

38 METHODEN Obwohl Methoden die Grundlage jeder wissenschaftlichen Arbeit bilden, galt ihre Beschreibung früher als zu trocken und war für renommierte Fachzeitschriften unattraktiv. In der Regel verbargen sich daher bahnbrechende methodische Neuerungen hinter Titeln und in Publikationen, die nicht die Methode, sondern das Ergebnis einer ersten Anwendung in den Vordergrund stellten. Vor fast 15 Jahren riskierte ein renommierter Wissenschaftsverlag jedoch die Herausgabe einer reinen Methodenzeitschrift, die inzwischen zu den höchstzitierten und einflussreichsten naturwissenschaftlichen Fachzeitschriften gehört. Eigentlich nicht erstaunlich, können doch bahnbrechende Methoden ganz neue Forschungsfelder eröffnen, werden vielfach angewandt und entsprechend zahlreich zitiert. Ein Beispiel findet sich auf der folgenden Seite: hier wurde die Methode in den Vordergrund gestellt, und das durchaus bemerkenswerte Ergebnis einer ersten Anwendung hintangestellt

39 Spielerisch GENETISCHE TRICKKISTE FÜR PROTEINE VON PLASMODIUM FALCIPARUM Das etablierte Verfahren, Plasmodium falciparum genetisch zu manipulieren, ist noch sehr mühsam und zeitraubend, weil sich fremde DNA schlecht in das Genom der Parasiten einbauen lässt. Wir haben eine Methodik entwickelt, die es erlaubt, Gene von P. falciparum wie in einem Baukasten zu manipulieren, um die Funktion der entsprechenden Proteine zu analysieren. So können wir beispielsweise schnell solche Parasiten herausfiltern, in denen der Einbau eines künstlichen Gens gelungen ist, Gene von Beginn an oder auf Knopfdruck abschalten, Proteine in den Zellkern als eine Art Abstellkammer schicken usw. Um die Vorteile dieser Methodik zu demonstrieren, haben wir sie erfolgreich an mehr als einem Dutzend Genen getestet. Darunter war ein besonders wichtiges Gen, weil es für ein Protein (Kelch13) kodiert, das an der Resistenz gegen das Medikament Artemisinin beteiligt ist - das größte drohende Problem in der Malariabehandlung weltweit. Birnbaum J. et al., Nat Methods 2017, 14: Jakob Birnbaum, Sven Flemming, Nick Reichard, Alexandra Blancke Soares, Paolo Mesén-Ramírez, Ernst Jonscher, Bärbel Bergmann und Tobias Spielmann Bild: Genetisch verändertes Plasmodium falciparum in roten Blutkörperchen (rot-graue Kreise). Grüne Areale markieren das Kelch13-Protein, der gelbe Punkt das Kelch13-Protein an der Parasitenmembran. 73

40 Subtile Statistik DIE VERGLEICHSGRUPPE ENTSCHEIDET Klinische Studien liefern manchmal widersprüchliche Ergebnisse auf die gleiche Fragestellung. So zeigten Studien, dass Patienten mit Malaria sowohl häufiger, als auch seltener an einer lebensbedrohlichen generalisierten Salmonelleninfektion erkranken als Patienten ohne Malaria. Zusammen mit internationalen Kollegen haben wir gezeigt, dass solche Widersprüche auf Unterschieden im Studienplan beruhen. Entscheidend sind die Vergleichsgruppen. Vergleicht man die Häufigkeit von Malaria bei Patienten mit generalisierten Salmonelleninfektionen mit der Häufigkeit von Malaria bei Patienten, die aus irgendeinem anderen Grund im Krankenhaus behandelt wurden, entsteht ein verzerrtes Bild. Die geeignete Vergleichsgruppe sind Patienten mit einer ähnlich schweren Erkrankung wie die Salmonellen-Gruppe, wie beispielsweise einer generalisierten Infektion durch andere Bakterien, weil sie unabhängig von Malaria mit der gleichen Wahrscheinlichkeit stationär im Krankenhaus behandelt werden wie die Salmonellen-Gruppe. Mit diesem Studienplan fanden wir, dass Patienten mit Malaria in der Tat doppelt so häufig an generalisierten Salmonelleninfektionen erkranken wie Patienten ohne gleichzeitig bestehende Malaria. Mit einer nicht vorselektierten Vergleichsgruppe zeigte sich genau das gegenteilige Ergebnis. Krumkamp R. et al., Clin Infect Dis 2016, 62 Suppl 1:S83-9 Ralf Krumkamp, Benno Kreuels, Benedikt Hogan, Anna Jaeger, Lisa Reigl, Jürgen May und externe Kooperationspartner (s. Publikation) Bild: Formeln zur statistischen Auswertung komplexer Studienpläne. Hintergrund: Kinderstation im Universitätskrankenhaus Kumasi, Ghana (Fotografie: Mika Väisänen) 75

41 Fehlerquelle MALARIA STÖRT ZIKA-TEST Infektionen mit dem Zika-Virus verlaufen häufig so milde, dass sie von den Betroffenen nicht wahrgenommen werden. Infizieren sich allerdings schwangere Frauen, kann das Virus schwere Fruchtschädigungen verursachen. In diesen Fällen ist daher die verlässliche Diagnose einer bestehenden oder zurückliegenden Infektion von großer Bedeutung. Eine weit verbreitete Methode, eine aktuelle oder früher durchgemachte Infektion zu diagnostizieren, beruht auf dem Nachweis von Antikörpern, die gegen das Virus gerichtet sind. Zusammen mit Kooperationspartnern haben wir gefunden, dass der eigentlich sehr zuverlässige Zika- Antikörpertest durch andere Infektionen wie z.b. Malaria gestört werden kann. Dies führte dazu, dass Zika-Infektionen fälschlich nachgewiesen wurden, ein folgenreicher Fehler, der bei Frauen schlimmstenfalls zu einem unnötigen Schwangerschaftsabbruch führen könnte. Schwarz N.G. et al., PloS One 2016, 12:e Norbert Schwarz, Eva Mertens, Doris Winter, Oumou Maiga-Ascofare, Denise Dekker, Stefanie Jansen, Dennis Tappe, Jürgen May, Jonas Schmidt- Chanasit und externe Kooperationspartner (s. Publikation) Bild: Eine Mikrotiter-Platte, Standard-Gefäß für den ELISA (Enzyme-Linked-Immunosorbent Assay). Sie enthält 96 kleine Näpfe, in denen jeweils eine Nachweisreaktion abläuft. Üblicherweise wird ein möglichst spezifischer Teil eines Infektionserregers, das Antigen, auf dem Boden fixiert. Nach Zugabe eines verdünnten Patientenserums lagern sich vorhandene Antikörper an das Antigen an und können durch Antikörper von der Maus nachgewiesen werden, die gegen menschliche Antikörper gerichtet sind und einen gelben Farbumschlag katalysieren. 77

42 SCHNAPPSCHUSS Dr. Jörg Blessmann, ein Mitarbeiter des Instituts, der derzeit in Südostasien stationiert ist, hat mit diesem Bild bei einem Fotowettbewerb der Fa. Globetrotter zum Thema Voll bepackt den dritten Preis gewonnen. 79

43 KUMASI CENTRE FOR COLLABORATIVE RESEARCH (KCCR) Brief on KCCR Having been established as a joint venture between Ghana and Germany for almost twenty years now, the Kumasi Centre for Collaborative Research serves as a platform for health research of overseas partners and their Ghanaian counterparts and continues to maintain its status as the research arm of the College of Health Sciences at the Kwame Nkrumah University of Science and Technology (KNUST). KCCR has been pivotal in the research agenda of the Ghanaian Ministry of Health, while in recent times facilitating investigations into some epidemic prone disease such as meningitis and yellow fever, working closely with the Ghana Health Service. KCCR has recently commissioned a new block for offices and space for biorepository. Research Groups There are currently six groups led by Senior Research Scientists including; Buruli Ulcer (Richard Phillips Group), Haematology (Ofori-Acquah Group), Medicine in Tropics (Owusu-Dabo Group), Onchocerciases, Lymphatic Filariases (Alex Debrah Group), Paediatric Fevers (AG May Group), Viruses and Zoonoses (Christian Drosten Group). Projects There are at least 32 projects that are hosted by KCCR and mainly cover communicable diseases, non-communicable diseases, training and capacity development. Research Themes Projects on filariasis refine the antibiotic treatment targeting symbiotic bacteria in filarial worms to alleviate the often-underestimated suffering from elephantiasis and to tackle drug resistance in onchocerciasis. This also includes assessing genome-wide associations for lymphatic filariasis, developing rapid diagnosis of onchocerciasis using urinary biomarkers and to establish a filarial clinical trial and research platform to address the patient needs in relation to the three areas of access to diagnostics and medicines for the treatment of filariasis. This group was awarded three million Euros by the BMBF (German-Africa) to deepen further understanding of lymphatic filariasis transmission and control. Tuberculosis (TB) projects currently concentrate on typing mycobacterial strains for antibiotic resistance. This includes latent TB infection diagnosis and treatment, and to design point-of-care diagnostics for TB case detection, particularly among children. The Buruli ulcer project focuses on pathogenesis and management of M. ulcerans disease, development of a rapid test for Buruli ulcer and a point of care diagnostic tool as well as to identify vaccine candidates. The current malaria project assesses the effect of schistosomiasis infestation on Plasmodium falciparum transmission in co-endemic areas and determine immunological response in a prospective study. Additionally, the team is assessing the effects of indoor residual spraying on the prevalence of asymptomatic malaria and anaemia among school pupils and for capacity building on genomics and bioinformatics across malaria endemic countries. The use of genetic data for malaria interventions and eradication programmes for graduates, doctoral and Postdoctoral fellows is being explored. Viruses and Zoonosis examines the virus biology, host ecology and human behavior as determinants for coronaviral zoonoses and also the detection of chronic HCV infection and recovery among cohort of HCV-positive blood donors in Ghana. Africa Research Network for Neglected Tropical Diseases (ARNTD) is hosted at KCCR to build capacity (an academy) in Neglected Tropical Disease for the control of all these diseases and provide small grants on Neglected Tropical Diseases. The program is in the third year of implementation. There are minor studies that are examining antimi

44 crobial resistance in Ghana. Other bacterial studies examine specific microbiota of the nasopharyngeal niche, which are associated with pneumonia in HIV-positive children. Typhoid fever studies focus on the burden of the disease and to generate immunological data to drive vaccine development and inform evidence-based prevention and control policy (including vaccine policy) in sub-saharan Africa. KCCR was recently conducted studies on the recent outbreak of Meningitis carrier study in Brong-Ahafo and also in Kumasi. In April 2013 BNITM introduced at KCCR a research group to address the epidemiology and intervention on non-communicable disease (NCD) in the low resource setting. The group participated in a multicentre project on environmental risk factors for obesity and type 2 diabetes mellitus (T2D) among a migrant Ghanaian population in European counterparts compared to residents of rural and urban Ghana (RODAM). Also included is the ORDISS study, which aims to better understand the process of sickle cell organ damage and be able to suggest biomarkers for vaccine and drug development in particular in relation to pain management. Others include cervical cancers, diabetes, and hypertension. Training for PhDs and MPhil / MSc In the year under review, one PhD and six masters students graduated while thirteen PhDs and ten masters students are at various stages of their training. Funding sources KCCR currently hosts and supports a number of projects funded by agencies including the Volkswagen Foundation, German Research Council, German Ministry of Education and Research, Global Fund, Medical Research Council of UK, Wellcome Trust through MRTC, BNITM Hamburg, Gates Foundation, European Union, University of Pittsburgh USA, Loyola University USA, GIZ, WHO/ TDR, EDCTP, and NTD-SC. Social events Ingrid Sobel got wedded to Peter Timm, while Grace Agyekum got wedded to Emmanuel Essilfie. Ellis Owusu-Dabo, Scientific Director, KCCR Bild: Opening of the new storehouse and other impressions from KCCR 83

45 Bericht des Fachbereichs Tropenmedizin der Bundeswehr Der Fokus der speziellen tropenmedizinischen Mikrobiologie lag in den letzten Monaten weiterhin auf der Evaluierung diagnostischer Verfahren. Dazu gehörte die vergleichende Untersuchung der Extraktion von Erregernukleinsäure aus fixiertem Probenmaterial, die als biologische Projektarbeit an der Dienststelle durchgeführt wurde. Zwei medizinische Promotionen beschäftigten sich mit dem Nachweis von Burkholderien, Bakterien, die insbesondere für Personen mit geschwächtem Immunsystem gefährlich werden können. Zur Erweiterung des diagnostischen Portfolios für die Tropenrückkehrer der Bundeswehr wurden PCR- Verfahren zum molekularen Nachweis Durchfallassoziierter E. coli aus Stuhlproben vergleichend analysiert. In enger Kooperation mit Wissenschaftlern des BNITM begann die Evaluierung von Nachweisverfahren für Malaria und Typhus, die seit September 2017 durch zwei Forschungsvorhaben des Sanitätsdiensts gefördert werden. Im Bereich der tropenmedizinischen Infektionsepidemiologie konnte durch retrospektive Erhebungen gezeigt werden, dass anhaltende Besiedelung mit multiresistenten Bakterien im Darmtrakt von Tropenrückkehrern der Bundeswehr eher selten auftreten und dass Giardien und Schistosomen zu den vergleichsweise häufiger nachgewiesenen Erregern bei Migranten aus Endemiegebieten gehören. Die Auseinandersetzung mit der Ebola-Epidemie prägte auch die folgenden Jahre. Nach Beendigung der Freiwilligenmission in der ersten Hälfte 2015 wurde die Teilnahme des Fachbereichs Tropenmedizin an zahlreichen Veranstaltungen nachgefragt. Der Fachbereich selbst veranstaltete das Symposium Learning from Ebola, das am BNITM stattfand. Es sollte den Beteiligten eine Plattform für Resümee und Austausch bieten und Interessierten die Möglichkeit geben, viele Fragen zu stellen. Mit dabei waren Vertreter der großen Hilfsorganisationen und des Sanitätsdienstes der Bundeswehr, Ärzte aus dem Behandlungszentrum für hochinfektiöse Infektionen Hamburg, die Studienleiterin in der Impfstoffentwicklung des Universitätsklinikums Hamburg-Eppendorf, Marylyn Addo, die Kollegen der Virologie des BNITM mit ihren mobilen Feldeinheiten des European Mobile Laboratory und die Ingenieure des Rettungsflugzeugs Robert Koch. Im Januar 2016 hielt der Fachbereich Tropenmedizin zwei dreitägige Kurse in Barrier Nursing für die Mitarbeiter des Komfo Anokye Teaching Hospitals in Kumasi/Ghana ab. Das Krankenhaus ist mit dem BNITM im Rahmen des von der Deutschen Gesellschaft für internationale Zusammenarbeit (GIZ) geförderten ESTHER-Programms verschwistert. Als für dieses Programm konkret nach Expertise im Management hochinfektiöser und übertragbarer Erkrankungen gefragt wurde, konnte der Fachbereich Tropenmedizin in Amtshilfe unterstützen. Im September 2016 richtete der Fachbereich für das Bundeswehrkrankenhaus Hamburg den 3rd Force Health Protection Congress aus, der zusammen mit einem Treffen hochrangiger NATO- Vertreter stattfand. 24 Nationen beteiligten sich an der Veranstaltung, die diesmal an der Helmut- Schmidt-Universität in Hamburg stattfand. Die guten Erfahrungen mit internationalem, kulturübergreifendem Unterricht und Training für den fachgerechten Umgang mit hochansteckenden, gefährlichen Krankheiten konnte sich der Fachbereich Tropenmedizin dann im Oktober 2016 nochmal beim 1er Congrès International Militaire der Médecine Tropicale et de Pathologies Sub-Sahariennes in Gabes, Tunesien, mit einem Workshop zu diesem Thema einbringen. Kurs in Barrier Nursing am Komfo Anokye Teaching Hospital in Ghana 3rd Force Health Protection Congress in Hamburg 84 85

46 Kurse 87

47 Am 1. Oktober 1900 wurde das Institut für Schiffs- und Tropenkrankheiten unter der Leitung von Bernhard Nocht eröffnet, dessen Idee von einem Institut verwirklicht wurde, in dem Patienten behandelt, Erkrankungen erforscht und die daraus resultierenden Erkenntnisse an Mediziner weitergegeben werden. Die tropenmedizinische Ausbildung wurde im Januar 1901 aufgenommen und in den folgenden 15 Jahren wurden 836 Mediziner in 43 Kursen fortgebildet. Auch heute ist die Lehre noch ein wichtiger Bestandteil des Instituts und das Angebot an Kursen hat sich stätig erweitert. In den letzten 15 Jahren erhielten rund 1000 Personen das Diplom in Tropenmedizin. Kurs für Mediziner*innen vom bis und bis DIPLOMKURS TROPENMEDIZIN Ziel des Diplomkurses ist, Ärztinnen und Ärzte entsprechend der Weiterbildungsordnung der deutschen Ärztekammern auf eine Tätigkeit in den Tropen und Subtropen vorzubereiten. Sie sollen in die Lage versetzt werden, bei Reisenden und Migranten aus Tropen und Subtropen importierte Krankheiten zu erkennen und zu behandeln sowie präventivmedizinische Beratungen durchzuführen. Zentrales Thema des Kurses ist die Darstellung der tropentypischen Krankheiten des Menschen. Im Vordergrund der Lehrinhalte stehen dabei die Pathogenese, Diagnose, Klinik, Therapie, Epidemiologie und Prophylaxe parasitärer, bakterieller, viraler und nicht-übertragbarer Tropen- und Reisekrankheiten. Gleichzeitig werden die Biologie, Epidemiologie und Bekämpfung der Erreger sowie Überträger und Reservoire berücksichtigt. Weitere Inhalte sind Besonderheiten der einzelnen klinischen Fachgebiete in den Tropen, Probleme der Gesundheitsversorgung in armen Ländern sowie Verfahren der medizinischen Entwicklungszusammenarbeit und der Katastrophenhilfe. Ebenfalls werden Themen der Migranten- bzw. Flüchtlingsmedizin angesprochen und Grundlagen zur Arbeitsmedizin in den Tropen vermittelt. Der Lehrplan ist in 13 thematische Abschnitte unterteilt. Das Gliederungsprinzip folgt der Taxonomie der Erreger und wird durch Einblicke in die Arbeitsfelder der Reise-, Migranten-, und Arbeitsmedizin sowie Themen aus dem Public Health-Sektor ergänzt. Der Lehrplan umfasst ca. 350 Vorlesungsstunden sowie 30 Stunden praktische, überwiegend mikroskopische Übungen. Während der Kurszeit steht die Deutsche Referenzbibliothek für Tropenmedizin zum Selbststudium zur Verfügung. Der Diplomkurs Tropenmedizin ist anerkannt durch die Bundesärztekammer als Teil der Weiterbildung zur Zusatzbezeichnung Tropenmedizin und von der America Society of Tropical Medicine and Hygiene (ASTMH). Er wurde mit 586 (2016) / 366 (2017) Fortbildungspunkten durch die Ärztekammer Hamburg angerechnet. Wissenschaftliche Leitung: Prof. Dr. Gerd Burchard Historisches Foto: Kursussaal des Instituts um 1930 Teilnehmerinnen und Teilnehmer des Diplomkurses Tropenmedizin

48 Inhalte DIPLOMKURS TROPENMEDIZIN Hausdozent*innen / Auswärtige Dozent*innen DOZENTEN UND DOZENTINNEN DES DIPLOMKURSES TROPENMEDIZIN Allgemeine Übersichten Emerging infectious diseases, Klima und Infektionskrankheiten, Weltseuchenlage, Klinische Studien in den Tropen, Vakzinologie, Digital Health in der Tropenmedizin u.a. Einführungen und Grundlagen Virologie, Bakteriologie, Mykologie, Protozoologie, Helminthologie, Entomologie, Immunologie, Prinzipien der Immundiagnostik, Einführung in die Mikroskopie, Einführung in die Epidemiologie Virologie und virale Erkrankungen Virologische Diagnostik, HIV und HTLV-1, Erkrankungen durch Flaviren, Arenaviren, Filoviren, Bunyaviren, Pockenviren, Tollwut, MERS u.a. Bakteriologie und bakterielle Erkrankungen Systemische bakterielle Infektionen, Rickettsiosen, Rückfallfieber, Leptospirose, Brucellose, Typhus abdominalis und andere Salmonellosen, Pest, Melioidose, Milzbrand, Cholera u.a.; Antibiotikaresistenz in den Tropen; mykobakterielle Erkrankungen: Tuberkulose, Lepra, Buruli-Ulkus u.a. Mykologie und Erkrankungen durch Pilze Systemmykosen, subkutane Mykosen Protozoologie und Erkrankungen durch Protozoen Malaria, Leishmaniasen, Trypanosomiasis, Amöbiasis, Erkrankungen durch Darmprotozoen, Toxoplasmose Helminthologie und Erkrankungen durch Helminthen Immunologie, Molekulare Diagnostik, Cestoden und Cestodenlarven, Schistosomiasis, Leber- und Darmegel, Lungenegel, Nematoden und Nematodenlarven (speziell Filarien), Pentastomiden Ektoparasitosen, Gifttiere Myiasis, Tungiasis, Skabies, Gifttiere, Management von Schlangenbissen Medizin in den Tropen Dermatologie in den Tropen, STDs in den Tropen, Ophthalomologie in den Tropen, Anästhesie in den Tropen, Chirurgie in den Tropen, Radiologie in den Tropen, Sonographie in den Tropen, Neurologie in den Tropen, transkulturelle Psychiatrie, Pädiatrie in den Tropen, Ernährungsprobleme in den Tropen, Mutter-Kind-Gesundheit, Gynäkologie und Geburtshilfe, Enzephalitis und Meningitis in den Tropen, Pneumonien in den Tropen, Hepatitis und HCC in den Tropen Nicht-übertragbare Krankheiten Hämoglobinopathien in den Tropen, Tropische Onkologie inkl. Burkitt-Tumor, Diabetes in den Tropen, Hypertonus in den Tropen, Kardiologie in den Tropen, Nierenkrankheiten in den Tropen, FMF und Morbus Behçet, Toxikologie in den Tropen Reisemedizin und Migrantenmedizin Risiken in der Reisemedizin, Malaria-Prophylaxe, Reiseimpfungen, Reisende mit Vorkrankheiten, Flugmedizin, Höhenmedizin, Wilderness Medicine, Migration, Umgang mit Krankheit in anderen Kulturen, Medizin und Islam, Screening-Untersuchungen bei Asylsuchenden, unbegleitete minderjährige Flüchtlinge, interkulturelle Kommunikation Arbeitsmedizin Arbeitsmedizinische Vorsorge-Untersuchungen, Berufskrankheiten und Arbeitsplatz-assoziierte Erkrankungen, Umweltmedizin im Ausland, Gefährdungsbeurteilung von Arbeitsplätzen in den Tropen, besondere Gefährdungen bei speziellen Berufsgruppen, Tropentauglichkeit Public Health Infektionsepidemiologie, Allgemeine Hygiene, Krankenhaushygiene in den Tropen, akute Katastrophenintervention, Gesundheit und Kultur, Gesundheitssysteme und Finanzierung, medizinische Entwicklungszusammenarbeit und internationale Organisationen, Impfprogramme, reproduktive Gesundheit, Sustainable Development Goals, District Health Systems, Projektmanagement HAUSDOZENT*INNEN PD Dr. Norbert Brattig; PD Dr. Minka Breloer; Prof. Dr. Iris Bruchhaus; Prof. Dr. Gerd Burchard; PD Dr. Joachim Clos; Dr. Denise Dekker; Prof. Dr. Bernhard Fleischer; Prof. Dr. Rolf Garms; Prof. Dr. Stephan Günther; Prof. Dr. Rolf Horstmann; Martina-Christine Koschwitz; Dr. Ralf Krumkamp; Prof. Dr. Jürgen May; Dr. Eva Mertens; Dr. Bernd Noack; Prof. Dr. Jonas Schmidt-Chanasit; Prof. Dr. Herbert Schmitz; Prof. Dr. Esther Schnettler; PD Dr. Norbert Georg Schwarz; Prof. Dr. Herbert Schmitz; Prof. Dr. Egbert Tannich; PD Dr. Dennis Tappe; Dr. Christian Timmann AUSWÄRTIGE DOZENT*INNEN Prof. Dr. Marylyn Addo Universitätsklinikum Eppendorf, Hamburg; Dr. John Amuasi University of Minnesota, USA; Dr. Mary Asiyo-Vogel Augenärztin, Lübeck; Dr. Katrin Bangert Universitätsklinikum Eppendorf, Hamburg; Dr. Heiko Becher Universitätsklinikum Eppendorf, Hamburg; Dr. Jörg Blessmann University of Health Science Vientiane Lao PDR, Laos; Dr. Boecken Auswärtiges Amt, Berlin; Dr. Matthias Brockstedt Kinder- und Jugendmedizin, Berlin; Dr. Alois Dörlemann Managing Director, Health Focus, Berlin; Prof. Efraime Jr, PhD Psychologe und Physiotherapeut, Mosambik; Prof. Dr. Götz Ehrmann Zahnarzt; Prof. Dr. Jochen H. Ehrich Med. Hochschule Hannover, Hannover; Dr. Torsten Feldt Universitätsklinikum Eppendorf, Hamburg; Dr. Thomas Fenner Labor Dr. Fenner und Kollegen, Hamburg; Dr. Marcellus Fischer Bundeswehrkrankenhaus, Hamburg; PD Dr. Herbert Fliege Auswärtiges Amt, Berlin; Dr. Antje Fuß Missionsärztliches Institut, Würzburg; Bernd Göken Cap Anamur, Köln; Dr. Matthias Grade Christliches Krankenhaus Quakenbrück, Quakenbrück; Prof. Dr. Uwe Groß Universität Göttingen, Göttigen; Dr. Claudia Herlt Fachärztin für Allgemeinmedizin, Hamburg; Dr. Sandra Hertling Universitätsklinikum Eppendorf, Hamburg; Prof. Dr. Achim Hoerauf Universitätsklinikum Bonn, Bonn; Prof. Dr. Klaus Hoffmann Zentrum für Psychiatrie, Reichenau; Dr. Fritz Holst Philipps-Universität Marburg, Marburg; Dr. Dr. Ph. Jens Holst Hochschule Fulda, Fulda; Dr. Olaf Horstick Institute of Public Health (IPH), Heidelberg; Dr. Frank Hünger Klinikum Dortmund, Dortmund; Dr. Helmut Jäger Heidekreis Klinikum GmbH, Walsrode; Prof. Dr. Albrecht Jahn Institute of Public Health (IPH), Heidelberg; Dr. Johannes Jochum Universitätsklinikum Eppendorf, Hamburg; Dr. Sabine Jordan Universitätsklinikum Eppendorf, Hamburg; Dr. Rolf Käthner Carl Zeiss Microscopy GmbH, Göttingen; Prof. Dr. Volker Klauß Praxis Augenärzte Klauß, München; PD Dr. Robin Kobbe Universitätsklinikum Eppendorf, Hamburg; Prof. Dr. Michael Krawinkel Institut für Ernährungswissenschaft, Gießen; Dr. Benno Kreuels Universitätsklinikum Eppendorf, Hamburg; Dr. Ute Lippert hanza Hanseatisches Zentrum für Arbeitsmedizin, Hamburg; Prof. Dr. Thomas Löscher Klinikum der LMU, München; Prof. Dr. Dieter Mebs Zentrum für Rechtsmedizin, Frankfurt/Main; PD Dr. Peter Meißner Klinik für Kinder- und Jugendmedizin, Universität Ulm; Dr. Andreas Meyer Arzt für Allgemeinmedizin, Hamburg; Prof. Dr. Frank P. Mockenhaupt Charité, Berlin; Dr. Andreas Montag Facharzt für Haut- und Geschlechtskrankheiten und Allergologie, Hamburg; PD Dr. Henning Mothes Universitätsklinikum Jena, Jena; Dr. Andreas Müller Klinikum Würzburg Mitte ggmbh, Würzburg; Dr. Thomas Müller Friedrich-Loeffler-Institut, Insel Riems; Andreas Neutzling Tauchmedizin, Meißen; Prof. Dr. Andreas Nitsche Robert-Koch-Institut, Berlin; Dr. Ellis Owusu-Dabo KCCR, Ghana; Dr. Rupert Pöschl Facharzt für Anästhesiologie, Baunatal; PD Dr. Sven Poppert Regio Klinikum Wedel, Wedel; Prof. Dr. Utz Reichard MVZ wagnerstibbe, Göttingen; Dr. Dieter Reinel Dermatologe, Hamburg; Prof. Dr. Frank Riedel Facharzt für Kinder- und Jugendmedizin, Hamburg; Dr. Thierry Rolling Universitätsklinikum Eppendorf, Hamburg; Dr. Camilla Rothe Klinikum der LMU, München; Dr. Sabine Rüsch-Gerdes Forschungszentrum Borstel, Borstel; Dr. Helmut Salzer Forschungszentrum Borstel, Borstel; Dr. Clara Schlaich Fachärztin für Innere Medizin und für Arbeitsmedizin, Hamburg; Dr. Salvatore Schmidt Sanitätsamt der Bundeswehr, München; Dr. Stefan Schmiedel Universitätsklinikum Eppendorf, Hamburg; Dr. Peter K. Schmitz Universität Bonn, Bonn; Prof. Dr. Erich Schmutzhard Universitätsklinik für Neurologie, Innsbruck; Dr. Jörg Siedenburg Aeromedical Center München der Deutschen Lufthansa AG, München; Prof. Dr. August Stich Missionsärztliche Klinik, Würzburg; Dr. Tankred Stöbe Ärzte ohne Grenzen, Berlin; Dr. Hinrich Sudeck Tropenmediziner, Hamburg; Lars Timm Region AMEOS West, Hildesheim; Prof. Jan van Lunzen ViiV Healthcare, UK; Dr. Christof Vinnemeier Universitätsklinikum Eppendorf, Hamburg; Dr. Katrin Völker Bundeswehrkrankenhaus Hamburg, Hamburg; Dr. Christian Wagner-Ahlfs BUKO Pharma-Kampagne,Kiel; PD Dr. Martin W. Weber WHO Regional Office for Europe, Dänemark; Waltraut Wernhart Missionsärztliches Institut, Würzburg, Frankfurt; Dr. Alexander Wex Auswärtiges Amt, Berlin; Dr. Dominic Wichmann Universitätsklinikum Hamburg-Eppendorf, Hamburg; Gudrun Zimmermann Zentrum für Interkulturelles Management & Diversity, Bremen 90 91

49 Kursus für medizinisches Fachpersonal vom bis und bis MEDIZIN IN DEN TROPEN Der Kursus vermittelt grundlegende Kenntnisse auf dem Gebiet der Tropenmedizin und widmet sich den Themen Public Health und Gesundheitsmanagement in den Tropen. ZIELGRUPPEN: Medizinisches Fachpersonal (Krankenpflegepersonal, MTAs, Hebammen, Gesundheitswirte etc.), das sich auf eine berufliche Tätigkeit in den Tropen und Subtropen vorbereitet; darüber hinaus medizinisches Fachpersonal, das Kenntnisse auf dem Gebiet der Tropenmedizin erwerben bzw. vertiefen möchte. Kursinhalte Tropische Infektionskrankheiten: Malaria, Lepra, Tuberkulose, Schistosomiasis und andere Wurmerkrankungen, virale Infektionen Insekten als Krankheitsüberträger Fehl- und Mangelernährung Weltseuchenlage, Grundlagen der Epidemiologie Allgemeinmedizinische Aspekte: Geburtshilfe, Familienplanung, Pädiatrie, Geschlechtskrankheiten, Dermatologie, HIV/AIDS, Reisemedizin u.a. Klinische Untersuchung und Labortechniken, Mikroskopieren Gesundheitssysteme im soziokulturellen Vergleich Interkulturelle Kompetenz Hygiene, Trinkwasser Krankenpflege in den Tropen Organisationen der internationalen Zusammenarbeit stellen sich vor Informationssysteme, Literatur-/Internetrecherche Gruppenarbeit Historisches Foto Kursus für medizinisches Fachpersonal 2017 Wissenschaftliche Leitung: Prof. Dr. Gerd Burchard 92 93

50 Auffrischkurs Tropen- und Reisemedizin für Mediziner*innen am und am NEUESTES AUS DER REISEMEDIZIN Kursus für Mediziner*innen am 20./ und 11./ BASISSEMINAR REISEMEDIZIN Der Kursus informiert über aktuelle Entwicklungen und Empfehlungen reisemedizinischer Beratung wie z.b. Impfungen und Malariaprophylaxe und beleuchtet auch speziellere Themen, die momentan in der Reisemedizin diskutiert werden. So wurde 2017 der Import resistenter Erreger durch Wissenschaftliche Leitung: Prof. Dr. Gerd Burchard Kursus für Mediziner*innen am sowie und AUFFRISCHKURSE / REFRESHERKURSE TROPENMEDIZIN Reisende (und Migranten) aufgegriffen. Der Kursus beinhaltet den DTG-Reisemedizin- Refresherkurs. In Zusammenarbeit mit der Sektion Infektiologie und Tropenmedizin, I. Medizinische Klinik, Universitätsklinikum Hamburg-Eppendorf, wurde ein 32-Stunden-Kurs Reisemedizin entsprechend dem Curriculum der Deutschen Gesellschaft für Tropenmedizin und Internationale Gesundheit (DTG) veranstaltet. Dieses Basisseminar vermittelt Grundkenntnisse über die Gesundheitsrisiken in Zusammenhang mit einer Reise, speziell in tropische Länder, und über Maßnahmen zur Prävention. Vermittelt werden auch orientierende Aspekte zu Rückkehrer-Erkrankungen und zur Flugreisemedizin. Der Kurs ist zertifiziert durch die Ärztekammer Hamburg und durch die Akademie für Infektionsmedizin der Deutschen Gesellschaft für Infektiologie. Wissenschaftliche Leitung: Prof. Dr. Gerd Burchard Der Kurs ist gedacht für alle Ärzte mit Interesse an der Tropenmedizin, insbesondere für Absolventen des Diplomkurses Tropenmedizin am Bernhard-Nocht-Institut. Im Kurs werden aktuelle Entwicklungen in der Tropenmedizin beleuchtet, u. a. neue Ergebnisse aus der Grundlagenforschung, neue Empfehlungen aus klinischen Studien und aktuelle epidemiologische Daten. Zusätzlich wird ein Mikroskopie-Kurs angeboten. Wissenschaftliche Leitung: Prof. Dr. Gerd Burchard 94 95

51 Daten und Fakten 97

52 PERSONAL 256, davon 106 Wissenschaftlerinnen und Wissenschaftler (Stand ) HAUSHALTSMITTEL Drittmittel erhielt das Institut von folgenden Organisationen: Alexander von Humboldt-Stiftung, Auswärtiges Amt, Becton Dickinson GmbH, Bio-X-Charge, Bundesanstalt für Landwirtschaft und Ernährung (BLE), Deutscher Akademischer Austauschdienst (DAAD), Deutsche Lepra- und Tuberkulosehilfe (DAHW), Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG), Deutsches Zentrum für Luft- und Raumfahrt e.v. (DLR), Bundesministerium für Bildung und Forschung (BMBF), Euroimmun AG, European Commission, European Federation of Immunological Societies (EFIS), Europese Federatie van Immunologische Vereinigungen, GeoSentinel, Deutsche Gesellschaft für Internationale Zusammenarbeit (GIZ), Deutsches Zentrum für Infektionsforschung e.v. (DZIF), Instand e.v., IUIS Education Committee, Jürgen Manchot Stiftung, Kirmser- Stiftung, Klinikum der Universität München, Leibniz Gemeinschaft, Robert-Koch-Institut, Rockefeller University, Stiftung Diagnostik Hilft, Umweltbundesamt, Vereinigung der Freunde des Tropeninstituts Hamburg e.v. (VdF), VW-Stiftung, Wiley-Blackwell Am wurde dem BNITM das Zertifikat zum audit berufundfamilie erteilt Mio. EUR Mio. EUR Institutionelle Förderung Betrieb und Investitionen Drittmittel davon weitergeleitet an Kooperationspartner im Institut verblieben andere eigene Einnahmen Leistungsindikatoren Publikationen referierte Publikationen durchschnittlicher Impact Factor 6,12 7,05 sonstige Publikationen 3 5 Wissenschaftliche Qualifikationen Bachelor- / Masterarbeiten Dissertationen 26 8 Lehre, Fort- und Weiterbildung 1 Universitätslehre (SWS*) Fort- und Weiterbildungsveranstaltungen im BNITM (Lehrtage) Technologietransfer (laufend) Patente und Lizenzen Erfindungsmeldungen 4 2 Labordiagnostik 2 Fallzahlen Einzelleistungen Bibliothek 3 Bestand Laufende Zeitschriften Internationale Kooperationen gemeinsam finanzerte Drittmittelprojekte KCCR 4 betreute Projekte KCCR davon externe Projekte *Semesterwochenstunden 1 Lehre, Fort- und Weiterbildung Wissenstransfer umfasst die akademische Lehre (Universitätslehre) mit den Semesterwochenstunden (SWS) 2 Labordiagnostik des Medizinischen Versorgungszentrum des Bernhard- Nocht-Instituts für Tropenmedizin GmbH (MVZ-BNI GmbH) Fallzahl: Zahl der erfassten Einsendungen Einzelleistungen: Zahl der durchgeführten Tests 3 Tropenmedizinische Referenzbibliothek Gesamtbestand und Nutzung der tropenmedizinischen Referenzbibliothek 4 KCCR Kumasi Centre for Collaborative Research in Tropical Medicine: Zahl der betreuten Projekte bzw. Zahl externer Projekte, die ohne Beteiligung des BNITM durchgeführt werden 98 99

53 Personal 101

54 BERNHARD-NOCHT-INSTITUT FÜR TROPENMEDIZIN A) WISSENSCHAFTLICHES PERSONAL (*= Ende der Mitarbeit im Berichtszeitraum) Abteilung Molekulare Parasitologie Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen Prof. Dr. Egbert Tannich; Prof. Dr. Iris Bruchhaus; Dr. Anna Bachmann; Dr. Hannah Bernin* (BMBF/DZIF); PD Dr. Hannelore Lotter; Dr. Jenny Matthiesen*; Dr. Anna Heitmann (BMEL); Dr. Jill Noll (DFG)*; Dr. Julie Sellau (BWFG, DFG) Doktorandinnen/Doktoranden, Master und Bachelor-Studentinnen/-Studenten Michael Dörpinghaus (Jürgen Manchot Stiftung); Finn Fürstenwerth*; Constantin König; Dirk Lercher*; Pedro Lubiana* (DFG, UHH); Thorben Matthies*; Nahla Metwally* (DAAD); Martin Meyer* (DFG); Sonja Obersteller*; Torben Rehn (Jürgen Manchot Stiftung); Jill Noll* (DFG); Helena Fehling*; Stephan Hoenow (BWFG); Mayke Leggewie* (Leibniz Graduate School, BMBF/DZIF); Corinna Lender; Judith Scholz* (Instand e. V.); Jan Stephan Wichers (DFG); Siew Ling Choy (Leibniz-Graduiertenschule); Hanno Niss (BMBF/DZIF) Technische Assistenz Christina Herrde; Claudia Marggraff (DFG); Susann Ofori; Heidrun von Thien Gastwissenschaftler/innen Amen Rahma* Abteilung Zelluläre Parasitologie Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen Prof Dr. Tim Gilberger; Dr. Paul Burda (UHH); Dr. Steffen Erkelenz*; Dr. Janis Rambow Doktorandinnen/Doktoranden, Master und Bachelor-Studentinnen/-Studenten Arne Alder (Jürgen Manchot Stiftung); Dorothee Heincke (UHH)*; Louisa Wilcke (UHH); Christoph Keil*; Francis Nkrumah; Sarah Scharf; Louisa Wilcke; Benthe Winkelmann*; Michael Geiger Technische Assistenz Sarah Lemcke (UHH) Studentische Hilfskräfte, Praktikantinnen/Praktikanten Lisa Fuhrmann*; Jacqueline Kolanski*; Hanna Matthiesen*; Yvonne Randi; Annika Schmidtke Gastwissenschaftler/innen Tawanda Zininga* Arbeitsgruppe Spielmann (Malaria) Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen Dr. Tobias Spielmann; Dr. Jakob Birnbaum; Dr. Alexandra Blancke Soares*; Dr. Paolo Mesen-Ramirez (DFG) Stand: 2017 Assoziierte Wissenschaftler/innen in der Abt. Molekulare Parasitologie Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen Dr. Erin Boyle (Re-entry)*; Prof. Dr. Rolf D. Garms; Dr. Thomas Kruppa; Dr. Susanne Witt (Re-entry) Technische Assistenz Silke van Hoorn; Frank Geisinger Studentische Hilfskräfte, Praktikantinnen/Praktikanten Melina Fonfara; Vincent Wolf* Gastwissenschaftler/innen Wilmar Alexander Correa* (Vargas) Doktorandinnen/Doktoranden, Diplomandinnen/Diplomanden, Master und Bachelor-Studentinnen/-Studenten Jakob Birnbaum*; Ernst Jonscher (DFG); Melissa Khosh-Naucke (DFG); Sabine Schmidt (BMBF/DZIF); Ann-Katrin Ullrich* (DFG); Ricarda Sabitzki; Sarah Smith (DAAD); Johanna Becker*; Lea Sanchez Milde* (DAAD); Isabel Naranjo Prado; Svenja Schwald*; Jan Stäcker; Alexandra Blancke Soares* (DFG) Technische Assistenz Bärbel Bergmann; Ulrike Fröhlke Studentische Hilfskräfte, Praktikantinnen/Praktikanten Thuy Tuyen Tran (DFG/Uni Bonn); Sarah Scharf*; Anja Schmidt* Gastwissenschaftler/innen Christine Lehmann* 103

55 Arbeitsgruppe Clos (Leishmaniasen) Abteilung Virologie Arbeitsgruppe Schmidt-Chanasit (Arbovirologie) Arbeitsgruppe Jacobs (Protozoen-Immunologie) Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen PD Dr. Joachim Clos; Dr. Eugenia Bifeld (EU); Dr. Antje Hombach-Barrigah (DFG); Dr. Katharina Bartsch (DFG); Vanessa Adaui Sicheri (Humboldt Research Foundation) Doktorandinnen/Doktoranden, Master und Bachelor-Studentinnen/-Studenten Katharina Bartsch* (DFG); Julia Eick* (EU); Paloma Tejera Nevado* (EU); Henner Zirpel (DFG); Constanze Kröber; Judith Laurentius Technische Assistenz Marlis Badusche; Andrea MacDonald; Dorothea Zander-Dinse; Sandra Arriens* (DFG); Christine Brinker Studentische Hilfskräfte, Praktikantinnen/Praktikanten Christine Brinker*; Miriam Martens*; Henriette Rehn* Gastwissenschaftler/innen Anna Heitmann* Arbeitsgruppe Hagedorn Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen Dr. Monica Hagedorn*; Dr. Lilli Gerstenmaier* (DFG); Dr. Ann-Kathrin Tilly** Doktorandinnen/Doktoranden, Master und Bachelor-Studentinnen/-Studenten Ombretta Colasanti*; Yannick Brenz* (DFG); Lilli Gerstenmaier * (DFG) Arbeitsgruppe Schnettler (Molekulare Entomologie) Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen Prof. Dr. Esther Schnettler (BMBF/DZIF); Dr. Mayke Leggewie (BMBF/DZIF) Doktorandinnen/Doktoranden, Master und Bachelor-Studentinnen/-Studenten Eric Agboli (DAAD) Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen Prof. Dr. Stephan Günther; Dr. Sophia Reindl; Dr. Michael Schreiber; Prof. Dr. emer. Herbert Schmitz; Dr. Petra Emmerich-Paloh; Dr. Elisabeth Fichet-Calvet (BMG, DFG); Dr. Martin Gabriel (EU, BMG); Dr. Meike Pahlmann (DFG); Dr. Romy Kerber; Dr. Maria Rosenthal; Dr. Lisa Oestereich (BMBF/DZIF); Dr. Toni Rieger (EU); Dr. Martin Rudolf (EU); Dr. Sophie Duraffour (BMG); Ronald von Possel (Euroimmun); Dr. Yaiza Fernández García (BMBF); Dr. Deborah Ehichioya (Humboldt Research Foundation) Doktorandinnen/Doktoranden, Master und Bachelor-Studentinnen/-Studenten Heidi Auerswald* (EU); Tobias Holm (DFG); Paula Ruibal Montoro* (EU); Dominik Vogel (DFG); David Wozniak (DFG); András Bencsik; Veronika Brinschwitz*; Xenia Jentgens*; Anna Kiss; Anja Lüdtke*; Linda Niemetz*; Maximilian Schulz*; Anke Thielebein (AA, BMG); Silke Olschewski (Jürgen Manchot Stiftung) Technische Assistenz Beate Becker-Ziaja*; Sabrina Bockholt (BMBF/DZIF); Elisa Pallasch (BMBF/DZIF); Stephanie Wurr; Nadja Gogrefe (EU, DFG); Carola Busch; Marzenna Domagalski* (RKI); Kerstin Krausz; Corinna Thomé-Bolduan; Neele Neddersen (BMG, EU, BMBF/DZIF); Alexander Schlaphof; Mathias Hartmann* (Translationsfond); Michaela Bockelmann (AA); Julia Hinzmann (BMBF/DZIF); Maboubah Mahjoubi* (AA); Agnieszka Malota (AA); Jonas Müller (EU); Angela Parczany* (AA); Sabine Kleuckling Studentische Hilfskräfte, Praktikantinnen/Praktikanten André Fienemann*; Fenja Harder* (EU); Maibritt Kretschmer (EU); Julian Leefmann* (EU); Franziska Meusel* (EU) Gastwissenschaftler/innen Adesina Adetunji; Umaru Bangura*; Gédéon Bongo*; Dr. Beatriz Escudero Pérez*; Ákos Gellért*; Sergio Gómez Medina*; Yemisi Ighodalo*; Baforday Jatta*; Liana Kafetzopoulou; Dr. Claudia Kohl*; Michel Koropogui*; Fara Raymond Koundouno*; Angelika Lander*; Mark Anthony Luz*; Meheretu Yona Madebo* (DFG); Joachim Marien*; Jürgen Müller-Guhl; Dr. Cesar Muñoz-Fontela*; Dr. Emily Nelson*; Catherine Olal*; Dr. Bernadett Pályi*; Julia Port*; Monika Rottstegge*; Dr. Paula Ruibal Montoro*; Anges Yadouleton* (DFG) Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen Prof. Dr. Jonas Schmidt-Chanasit; Dr. Daniel Cadar; Dr. Stephanie Jansen (BMBF/DZIF); Dr. Hanna Jöst (BMBF/DZIF); Dr. Renke Lühken (BMEL); Dr. Jessica Börstler* (AA) Doktorandinnen/Doktoranden, Master und Bachelor-Studentinnen/-Studenten Johannes Friedrich* (BMBF/DZIF); Linda Jaworski (BMEL); Sandra Oerther; Stefan Pfister*; Jessica Börstler*; Nariman Shahhosseini* (Leibniz Graduate School); Alexandru Tomazatos Technische Assistenz Alexandra Bialonski; Mathis Petersen (AA)*; Heike Baum (BMEL); Lisa Kustermann (BMBF); Leonie Meya*; Anucha Ponyiam; Branka Zibrat; Clemens Schlink* Studentische Hilfskräfte, Praktikantinnen/Praktikanten Marthe Claußen*; Julian Leefmann* Gastwissenschaftler/innen Xenia Augsten*; Lilian Avilla*; Tania Ayllori Santiago*; Xuan Su Hoang*; Madeleine Königer*; Van An Nguyen* Abteilung Immunologie Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen Prof. Dr. Bernhard Fleischer*; Dr. Matthias Hauptmann*; Dr. Christian Keller*; Dr. Anke Osterloh* (VW-Stiftung, RKI); Dr. Jessica Rauch* Doktorandinnen/Doktoranden, Diplomandinnen/Diplomanden, Master und Bachelor-Studentinnen/-Studenten Liza Heine*; Sabrina Osterhof*; Michael Petermann*; Jakob Schwemmler*; Nadine Stetter*; Stefanie Papp*; Kristin Moderzynski* (VW-Stiftung) Technische Assistenz Svenja Kühl Studentische Hilfskräfte, Praktikantinnen/Praktikanten Hella Schwanke* Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen PD Dr. Thomas Jacobs; Prof. Dr. Bernhard Fleischer (VW-Stiftung); Dr. Annemieke Abel (DFG); Dr. Mathias Riehn; Dr. Julie Sellau*; Dr. Rafael de Fraitas e Silva (Humboldt Research Foundation); Dr. Lidia Bosurgi (UKE); Dr. Maria Mackroth (UKE, BMBF/DZIF) Doktorandinnen/Doktoranden, Master und Bachelor-Studentinnen/-Studenten Annemieke Abel* (DFG); Franziska Muscate (DFG); Frederik Bitzer*; Katrin Scheu*; Auriane Carcone*; Sarah Elbaz*; Stephane Gankou; Rosa Isela Grote-Gálvez (Konrad-Adenauer-Stiftung); Stephan Hoenow*; Michelle Vanessa Kamga Kapchoup; Bastian Kruse*; Imke Liebold (UKE); Hannes Michelsen*; Yanina Arana Policarpo (DAAD); Rhamin Shakiba*; Mona Tabel*;Vincent Wolf Technische Assistenz Lea Kaminski (BMBF/DZIF); Ulricke Richardt; Christiane Steeg; Birgit Hüsing Studentische Hilfskräfte, Praktikantinnen/Praktikanten Antonia Wierk*; Vera Brackrock; Atchana Ganesalingam*; Franziska Karl*; Leonie Ott*; Ella Weinert* Arbeitsgruppe Breloer (Helminthen-Immunologie) Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen PD Dr. Minka Breloer; Dr. Wiebke Hartmann (DFG); Dr. Nils Kruse (DFG)*; Dr. Martina Reitz Doktorandinnen/Doktoranden, Master und Bachelor-Studentinnen/-Studenten Annette Beatrix Schlosser*; Nikolas Rüdiger (Leibniz-Graduiertenschule); Nadine Stetter (BWFG) Technische Assistenz Marie-Luise Brunn Studentische Hilfskräfte, Praktikantinnen/Praktikanten Andrea Iteka*; Kim Steffens* Technische Assistenz Marlis Badusche; Michelle Helms (BMEL) 104 Gastwissenschaftler/innen (EMLab) Dr. Anna Maisa*; Dr. Susann Handrick* (EU); Dr. Verena Klümpers* (EU); Julia Hinzmann*; Dr. Thomas Strecker*; Dr. Sandra Beermann*; Dr. Cristina Domingo Carrasco*; Nicole Hetzelt*; Dr. Andreas Kurth*; Dr. Philipp Raab*; Dr. Constanze Yue*; Eeva Kuisma*; Koffi Mathurin Koumoin*; Dr. Janine Michel*; Dr. Antonio Mazzarelli*; Dr. Rebecca Surtees* 105

56 Abteilung Molekulare Medizin Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen Prof. Dr. Rolf Horstmann*; Dr. Kathrin Schuldt*; Dr. Thorsten Thye; Dr. Christian Timmann; Prof. Dr. Gerd Burchard; Dr. Christina Deschermeier (EXIST); Dr. Yang Liu (EXIST); Dr. Angela Mika; Dr. Stephan Lorenzen; Dr. Ulrike Thalmaier* (EU) Doktorandinnen/Doktoranden, Master und Bachelor-Studentinnen/-Studenten Christina Strauß* (DFG); Anne Rackow* (Translationsfond) Technische Assistenz Christa Ehmen; Birgit Förster; Britta Liedigk; Anna-Maria Mallmann* (EXIST); Birgit Muntau; Gerd Ruge (AA); Jürgen Sievertsen; Valentina König (EXIST) Assoziierte Wissenschaftler/innen in der Abt. Molekulare Medizin Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen PD Dr. Klaus Erttmann*; PD Dr. Norbert W. Brattig; Prof. Dr. Paul Racz; Dr. Klara Tenner-Racz; Dr. Simone Kann* Technische Assistenz Silke van Hoorn Gastwissenschaftler/innen Nancy Ngwafu*, Elizabeth Sentongo*, MSc Sara Barati*, Shahid Chamram Arbeitsgruppe N.N. (Klinische Studien) Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen Dr. Jakob Cramer*; Dr. Kirsten Eberhardt; Dr. Stefanie Schoppen* Technische Assistenz Abdul-Malik Chimsi Haruna* (GIZ) Studentische Hilfskräfte, Praktikantinnen/Praktikanten Michael Dörpinghaus (GeoS) Arbeitsgruppe Tappe (Zoonosen) Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen Prof. Dr. Dennis Tappe; Dr. Jessica Rauch Technische Assistenz Ute Mehlhoop; Petra Allartz; Petra Eggert; Yvonne Gross* Abteilung Infektionsepidemiologie Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen Prof. Dr. Jürgen May; Dr. Oumou Maiga-Ascofaré (BMBF/DZIF); Dr. Denise Dekker (BMBF/DZIF); Dr. Daniel Eibach; Dr. Nicole Sunaina Gilberger (BMBF/DZIF); Dr. Benedikt Hogan* (BMBF/DZIF); Dr. Ralf Krumkamp (BMBF/DZIF); Dr. Eva Mertens (BMBF/DZIF, AA); PD Dr. Norbert Schwarz (AA, BMG, Humboldt Research Foundation); Cassandra Aldrich* (BMBF/DZIF); Dr. Jörg Blessmann; Barbara Bürkin (AA, BMG); Maike Lamshöft (BMBF/DZIF); Lisa Reigl (BMBF/DZIF, BMZ); Dr. Eva Lorenz; Dr. Dewi Ismajani Puradiredja (AA, BMG); Ricardo Strauss (BMG, AA); Dr. Florian Gehre (BMZ); Dr. Benno Kreuels (UKE); Dr. Peter Sothmann (UKE); Dr. Thierry Rolling (UKE); Dr. Christof Vinnemeier (UKE) Doktorandinnen/Doktoranden, Master und Bachelor-Studentinnen/-Studenten Luise Sophie Ammer*; Matilda Ayim-Akonor (DAAD); Konstantin Franke*; Wiebke Herr; Shari Elena Kapischke*; Sebastian Krannich*; Vinzent Levermann*; Sophia Melhem (BMBF/DZIF); Enusa Ramani*; Christina Rohmann* (BMBF/DZIF); Kira Schütze; Maria Johanna Tapken; Marlow Zimmermann (BMBF/DZIF); Hassan Al-Emran* (BMBF/DZIF) Studentische Hilfskräfte, Praktikantinnen/Praktikanten Luisa Korte; Myrtha Eggert; Sara Steinfurth*; Luisa Korte Gastwissenschaftler/innen Kennedy-Gyau Boahen*; Prof. Dr. Julius Fobil Arbeitsgruppe Owusu-Dabo (Medizin in den Tropen) Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen Dr. Ellis Owusu-Dabo; Dr. Michael Nagel*; Dr. Sampson Pandam Salifu; Augustina A. Sylverken (KCCR); Dr. Denis D. Yar Doktorandinnen/Doktoranden, Master und Bachelor-Studentinnen/-Studenten Aliyu Mohammed; Samuel N. Darko; Nana Y. Awua-Boateng; Denis D. Yar; Caleb O. W. Sarfo; John Amuasi; Alexander Kwarteng Technische Assistenz Isaac Aguna; Kwadwo Asante Elektronenmikroskopie Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen Dr. Katharina Höhn Zentrale Labordiagnostik / NRZ Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen Prof. Dr. Bernhard Fleischer*; Prof. Dr. Stephan Günther; Prof. Dr. Rolf Horstmann*; Prof. Dr. Egbert Tannich; Dr. Petra Emmerich-Paloh; Dr. Martin Gabriel; Dr. Bernd Noack; Prof. Dr. Jonas Schmidt-Chanasit; Dr. Philip Eisermann; Prof. Dr. Dennis Tappe Technische Assistenz Fatma Firat (RKI); Alexandra Veit (RKI); Insa Bonow; Anja Schörle; Inga Bandholz; Doreen Bockmeyer; Yalini Chandraseelan; Nina Klein*; Jürgen Müller-Guhl*; Dorthe Noack*; Suzana Pinto de Jesus; Britta Rieckmann; Stefanie Ruben Klinisches Labor Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen Prof. Dr. Egbert Tannich Technische Assistenz Birgit Raschdorff; Doris von Schassen; Christine Wegner; Iris Zielke Kumasi Centre for Collaborative Research in Tropical Medicine (KCCR), Ghana Wissenschaftliche Mitarbeiter/innen Prof. Dr. Ellis Owusu-Dabu; Kerstin Shand (Head of Laboratories)* Doktorandinnen/Doktoranden, Master und Bachelor-Studentinnen/-Studenten Jubin Osei Mensah; Sandra Baffour-Awwuah; Daniel Antwi-Berko; Dorcas Owusu-Ohui; Nana Yaa Awua-Boateng; Aliyu Mohammed; Samuel Nkansah Darko; Nicholas Adoffoh; Phillip el-duah; Dr. Vitus Burimah; Yaw Oppong Frimpong; Kennedy Gyau Boahen; Godfred Acheampong; Aloysius Loglo Dzigbordi; Mabel Sarpong Duah; Clinton Azuure; Vera Opoku; Wellington Owusu; Bernadette Agbavor; Henry Hanson; Jones Lamtey; Fatima Amponsah Forjour; Priscilla Adjei-Kusi; Daniel Sedohia; Portia Boakye Okyrere; Caleb Osei-wusu; Kwabena Oppong; Nancy Ackam; Richmond Yeboah; Francisca Naana Sarpong; Ebenezer Badu; Bismark Opoku Appiah; Abu Abudu Rahmani; Derrick Adu Mensah; Egla Agyeiwaah Appiah; Peter Gyamfi Akosah Technische Assistenz Dr. Michael Nagel (Head of Laboratories) until 03/2016; Dr. Tabea Binger (Head of Laboratories since 10/ 2016); Godfred Acheampong (Deputy Head of Lab); Richard Larbi (Laboratory Technician Technische Assistenz Nassim Behjat-Mohammadi (BMBF/DZIF, AA, Humboldt Research Foundation); Johanna Brinkel (BMBF); Anna Jaeger (BMBF/DZIF); Wibke Loag; Doris Winter (BMBF/DZIF)

57 B) WEITERES PERSONAL (*= Ende der Mitarbeit im Berichtszeitraum) Administration Kaufmännische Geschäftsführung Birgit Müller Finanzabteilung Herbert Groß (Leiter); Ata Atayi; Susanne Crohn; Simone Gülk; Dörte Kröhnert; Christiane Melzer*; Ruth Petersen*; Regina Senet; Anja Strebel; Maik Wortmann Personal Carsten Schaible (Leiter); Katja Bünger; Linda Dvorak; Melanie Fuchs (Azubi); Anja Göttsche; Jennifer Hallmann; Ulrich Kretschmer; Jeannette Meurer Einkauf und Betrieb Thomas Strebel (Leiter); Werner Bormann; David Campbell; Stefan Elfert; Stephan Gadow; Riza Güven; Alexander Henkel; Katrin Himstedt; Rainer van Hoorn; Irmela van Kempen; Önder Kücük; Stefanie Meftah; Frauke Rau; Susanne Scherlitz; Marc Schiffner*; Karin Schröder*; Marie-Annique Stadie; Sylvie Szagarus*; Jens-Peter Voß; Simone Witt Technik Paul-Gerhardt Kämpfer (Leiter); Thorben Adam; Claus Ahrens*; Rainer Fromm; Andreas Lange*; Frank Lipiota; René Loose; Patrick Mach; Marc Schiffner; Joachim Zietzschmann Reinigung Grace Asare-Bediako; Sandy Chaimanatzis-Mohr; Bianka Dehus; Serpil Demir; Monika Dreessen; Cevahir Güven; Petra Hartmann; Naima Helbig; Güler Kanak; Birgit Mohr-Flügge; Claudia Scharloh; Nadine Schiffner; Annette Schwarzbach; Corinna Stallbaum; Kudret Sügök*; Meral Tezcan; Serpil Tosun; Gülbahar Ulucan; Türkan Ulucan; Kadriye Yesilkaya; Sylvia Zanner Stäbe, Dienstleistungen und Sekretariate Bibliothek Martina-Christine Koschwitz; Irene Michael Fotografie Klaus Jürries Vorstandsreferat, Presse- und Öffentlichkeitsarbeit Dr. Natalie Bergholz (Vorstandsreferentin); Dr. Eleonora Schönherr, Dr.Jessica Tiedke und Laura Zimmermann (Wissenschaftsreferentin/Presse- und Öffentlichkeitsarbeit); Dr. Anneke Novak-Funk (DZIF); Martina-Christine Koschwitz; Jeannette Meurer Arbeitsschutz Agnes Gerber, externe Fachkraft (Zentrum für Arbeits-, Umwelt- und Gesundheitsschutz), Dr. Toni Rieger Qualitätsbeauftragte Maren Lintzel Sekretariate Britta Rehn, Vorstand, Sektion Klinische Forschung Wiebke Böhm, Sektion Molekularbiologie und Immunologie Daniela Krüger*, Abteilung Infektionsepidemiologie Ulrike Kolander, Abteilung Infektionsepidemiologie, Vereinigung der Freunde des Tropeninstituts (VdF), Deutsche Gesellschaft für Tropenmedizin und Internationale Gesundheit (DTG), Elke Werner, Kurse, Deutsche Gesellschaft für Tropenmedizin und Internationale Gesundheit (DTG) Personalvertretung Personalrat bis Dorothea Zander-Dinse (Vorsitz); Beate Becker-Ziaja; Sabine Kleuckling; Andreas Lange; Mathis Petersen*; Constantin Pretnar; Dr. Maria Rosenthal; Dr. Norbert Schwarz Personalrat ab Dorothea Zander-Dinse (Vorsitz); Dr. Stephanie Jansen; Sabine Kleuckling; Constantin Pretnar; Dr. Maria Rosenthal; Marc Schiffner; Dr. Norbert Schwarz C) WEITERES PERSONAL KCCR, GHANA (*= Ende der Mitarbeit im Berichtszeitraum) Leitung Prof. Ellis Owusu-Dabo (Scientific Director bis ); Prof. Richard Odame Phillips (Scientific Director seit ); Ingrid Sobel (Head of Administration) Administration Sebastian Kankam (Senior Accountant); Francis Dorman (Senior Accountant); Henrietta Addai (Prin. Admin. Secretary); Jeffrey Agyeman (Systems Operator); Foster Boateng ( Logistician); Elvis Oduro Adomako (Accountant Assistant); Emmanuel Kwaku Essilfie (Logistician Assistant); Grace Agyemang Agyekum (Office Assistant); Prisca Morkporkor Fiadoze (Receptionist/ Office Assistant) Transport Senyo Dompey (car mechanic/driver ); Joseph Teye (car mechanic/driver); Robert Acheampong (driver); Paul Marfo Bekyir (driver); Philip Frimpong (driver) Sicherheit Dominic Adongo (Head); Andrews Baka; Francis Ayerakwa; Yaw Dankwa; Fidalis Ayomah, Simon Ayomah (bis ) Gartenarbeit / Reinigung Helina F. K. Amaning (Caretaker); Eric Baba Amotchaab (gardener); Immaculate Kudimaya (cleaner); Christopher Tan (gardener); Comfort Yamson (senior cleaner); Rita Gyekye (cleaner); Mariam Issifu (cleaner)

58 Anhang 111

59 A. Adam, O. M. Seidahmed, C. Weber, B. Schnierle, J. Schmidt-Chanasit, S. Reiche, and C. Jassoy, Low Seroprevalence Indicates Vulnerability of Eastern and Central Sudan to Infection with Chikungunya Virus, Vector Borne Zoonotic Dis, 16 (2016), O. Addai-Mensah, M. Seidel, N. Amidu, D. J. Maskus, S. Kapelski, G. Breuer, C. Franken, E. Owusu-Dabo, M. Frempong, R. Rakotozandrindrainy, H. Schinkel, A. Reimann, T. Klockenbring, S. Barth, R. Fischer, and R. Fendel, Acquired Immune Responses to Three Malaria Vaccine Candidates and Their Relationship to Invasion Inhibition in Two Populations Naturally Exposed to Malaria, Malar J, 15 (2016), 65. J. Addo, C. Agyemang, A. de-graft Aikins, E. Beune, M. B. Schulze, I. Danquah, C. Galbete, M. Nicolaou, K. Meeks, K. Klipstein-Grobusch, S. Bahendaka, F. P. Mockenhaupt, E. Owusu-Dabo, A. Kunst, K. Stronks, and L. Smeeth, Association between Socioeconomic Position and the Prevalence of Type 2 Diabetes in Ghanaians in Different Geographic Locations: The Rodam Study, J Epidemiol Community Health, 71 (2017), S. T. Agnandji, A. Huttner, M. E. Zinser, P. Njuguna, C. Dahlke, J. F. Fernandes, S. Yerly, J. A. Dayer, V. Kraehling, R. Kasonta, A. A. Adegnika, M. Altfeld, F. Auderset, E. B. Bache, N. Biedenkopf, S. Borregaard, J. S. Brosnahan, R. Burrow, C. Combescure, J. Desmeules, M. Eickmann, S. K. Fehling, A. Finckh, A. R. Goncalves, M. P. Grobusch, J. Hooper, A. Jambrecina, A. L. Kabwende, G. Kaya, D. Kimani, B. Lell, B. Lemaitre, A. W. Lohse, M. Massinga-Loembe, A. Matthey, B. Mordmuller, A. Nolting, C. Ogwang, M. Ramharter, J. Schmidt-Chanasit, S. Schmiedel, P. Silvera, F. R. Stahl, H. M. Staines, T. Strecker, H. C. Stubbe, B. Tsofa, S. Zaki, P. Fast, V. Moorthy, L. Kaiser, S. Krishna, S. Becker, M. P. Kieny, P. Bejon, P. G. Kremsner, M. M. Addo, and C. A. Siegrist, Phase 1 Trials of Rvsv Ebola Vaccine in Africa and Europe - Preliminary Report, N Engl J Med, 374 (2016 ), C. Agop-Nersesian, M. De Niz, L. Niklaus, M. Prado, N. Eickel, and V. T. Heussler, Shedding of Host Autophagic Proteins from the Parasitophorous Vacuolar Membrane of Plasmodium Berghei, Sci Rep, 7 (2017), C. Agyemang, K. Meeks, E. Beune, E. Owusu-Dabo, F. P. Mockenhaupt, J. Addo, A. de Graft Aikins, S. Bahendeka, I. Danquah, M. B. Schulze, J. Spranger, T. Burr, P. Agyei- Baffour, S. K. Amoah, C. Galbete, P. Henneman, K. Klipstein-Grobusch, M. Nicolaou, A. Adeyemo, J. van Straalen, L. Smeeth, and K. Stronks, Obesity and Type 2 Diabetes in Sub-Saharan Africans - Is the Burden in Today s Africa Similar to African Migrants in Europe? The Rodam Study, BMC Med, 14 (2016), 166. T. Aiba, S. Suehara, S. L. Choy, Y. Maekawa, H. Lotter, T. Murai, S. Inuki, K. Fukase, and Y. Fujimoto, Employing Binol-Phosphoroselenoyl Chloride for Selective Inositol Phosphorylation and Synthesis of Glycosyl Inositol Phospholipid from Entamoeba Histolytica, Chemistry, 23 (2017), I. Ajonina-Ekoti, D. Ndjonka, M. K. Tanyi, M. Wilbertz, A. E. Younis, D. Boursou, M. A. Kurosinski, R. Eberle, K. Luersen, M. Perbandt, M. Breloer, N. W. Brattig, and E. Liebau, Corrigendum to Functional Characterization and Immune Recognition of the Extracellular Superoxide Dismutase from the Human Pathogenic Parasite Onchocerca Volvulus (Ovec-Sod) [Acta Trop. 124 (2012) 15-26], Acta Trop, 161 (2016), 114. O. C. Akhuemokhan, R. O. Ewah-Odiase, N. Akpede, J. Ehimuan, D. I. Adomeh, I. Odia, S. C. Olomu, M. Pahlmann, B. Becker-Ziaja, C. T. Happi, D. A. Asogun, S. A. Okogbenin, P. O. Okokhere, O. S. Dawodu, I. U. Omoike, P. C. Sabeti, S. Gunther, and G. O. Akpede, Prevalence of Lassa Virus Disease (LVD) in Nigerian Children with Fever or Fever and Convulsions in an Endemic Area, PLoS Negl Trop Dis, 11 (2017), e H. M. Al-Emran, D. Eibach, R. Krumkamp, M. Ali, S. Baker, H. M. Biggs, M. Bjerregaard- Andersen, R. F. Breiman, J. D. Clemens, J. A. Crump, L. M. Cruz Espinoza, J. Deerin, D. M. Dekker, A. Gassama Sow, J. T. Hertz, J. Im, S. Ibrango, V. von Kalckreuth, L. P. Kabore, F. Konings, S. V. Lofberg, C. G. Meyer, E. D. Mintz, J. M. Montgomery, B. Olack, G. D. Pak, U. Panzner, S. E. Park, J. L. Razafindrabe, H. Rabezanahary, J. P. Rakotondrainiarivelo, R. Rakotozandrindrainy, T. M. Raminosoa, H. Schutt-Gerowitt, E. Sampo, A. B. Soura, A. Tall, M. Warren, T. F. Wierzba, J. May, and F. Marks, A Multicountry Molecular Analysis of Salmonella Enterica Serovar Typhi with Reduced Susceptibility to Ciprofloxacin in Sub-Saharan Africa, Clin Infect Dis, 62 Suppl 1 (2016), S42-6. H. M. Al-Emran, A. Hahn, J. Baum, L. M. Cruz Espinoza, J. Deerin, J. Im, S. Ibrango, L. P. Kabore, V. von Kalckreuth, F. Konings, F. Marks, E. Sampo, U. Panzner, S. E. Park, G. D. Pak, H. Schutt-Gerowitt, C. D. Vinnemeier, M. Warren, and A. B. Soura, Diagnosing Salmonella Enterica Serovar Typhi Infections by Polymerase Chain Reaction Using Edta Blood Samples of Febrile Patients from Burkina Faso, Clin Infect Dis, 62 Suppl 1 (2016), S H. M. Al-Emran, A. Heisig, D. Dekker, Y. Adu-Sarkodie, L. M. Cruz Espinoza, U. Panzner, V. von Kalckreuth, F. Marks, S. E. Park, N. Sarpong, J. May, and P. Heisig, Detection of a Novel Gyrb Mutation Associated with Fluoroquinolone-Nonsusceptible Salmonella Enterica Serovar Typhimurium Isolated from a Bloodstream Infection in Ghana, Clin Infect Dis, 62 Suppl 1 (2016), S47-9. H. M. Al-Emran, R. Krumkamp, D. M. Dekker, D. Eibach, P. Aaby, Y. Adu-Sarkodie, M. Ali, M. P. Rubach, M. Bjerregaard-Andersen, J. A. Crump, L. M. Cruz Espinoza, S. V. Lofberg, A. Gassama Sow, J. T. Hertz, J. Im, A. Jaeger, L. P. Kabore, F. Konings, C. G. Meyer, A. Niang, G. D. Pak, U. Panzner, S. E. Park, H. Rabezanahary, R. Rakotozandrindrainy, T. M. Raminosoa, T. J. Razafindrabe, E. Sampo, H. Schutt-Gerowitt, N. Sarpong, A. B. Soura, A. Tall, V. von Kalckreuth, T. F. Wierzba, J. May, and F. Marks, Validation and Identification of Invasive Salmonella Serotypes in Sub-Saharan Africa by Multiplex Polymerase Chain Reaction, Clin Infect Dis, 62 Suppl 1 (2016), S80-2. E. M. Anandarajah, D. Ditgen, J. Hansmann, K. D. Erttmann, E. Liebau, and N. W. Brattig, Sparc (Secreted Protein Acidic and Rich in Cysteine) of the Intestinal Nematode Strongyloides Ratti Is Involved in Mucosa-Associated Parasite-Host Interaction, Mol Biochem Parasitol, 207 (2016), A. Annan, F. Ebach, V. M. Corman, R. Krumkamp, Y. Adu-Sarkodie, A. M. Eis-Hubinger, T. Kruppa, A. Simon, J. May, J. Evans, C. Drosten, and J. F. Drexler, Similar Virus Spectra and Seasonality in Paediatric Patients with Acute Respiratory Disease, Ghana and Germany, Clin Microbiol Infect, 22 (2016), A. Annan, D. D. Yar, M. Owusu, E. A. Biney, P. K. Forson, P. B. Okyere, A. A. Gyimah, and E. Owusu-Dabo, Health Care Workers Indicate Ill Preparedness for Ebola Virus Disease Outbreak in Ashanti Region of Ghana, BMC Public Health, 17 (2017), 546. A. Arias, S. Watson, D. Asogun, E. A. Tobin, J. Lu, M. V. T. Phan, U. Jah, R. E. Guetiya Wadoum, L. Meredith, L. Thorne, S. Caddy, A. Tarawalie, P. Langat, G. Dudas, N. R. Faria, S. Dellicour, A. Kamara, B. Kargbo, B. Osaio Kamara, S. Gevao, D. Cooper, M. Newport, P. Horby, J. Dunning, F. Sahr, T. Brooks, A. J. H. Simpson, E. Groppelli, G. Liu, N. Mulakken, K. Rhodes, J. Akpablie, Z. Yoti, M. Lamunu, E. Vitto, P. Otim, C. Owilli, I. Boateng, L. Okoror, E. Omomoh, J. Oyakhilome, R. Omionu, I. Yemisis, D. Adomeh, S. Ehikhiametalor, P. Akhilomen, C. Aire, A. Kurth, N. Cook, J. Baumann, M. Gabriel, R. Wölfel, A. Di Caro, M. W. Carroll, S. Günther, J. Redd, D. Naidoo, O. G. Pybus, A. Rambaut, P. Kellam, I. Goodfellow, and M. Cotten, Rapid Outbreak Sequencing of Ebola Virus in Sierra Leone Identifies Transmission Chains Linked to Sporadic Cases, Virus Evolution, 2 (2016). C. Aryee, W. K. Owiredu, J. Osei-Yeboah, E. Owusu-Dabo, E. F. Laing, and I. K. Owusu, An Analysis of Anthropometric Indicators and Modifiable Lifestyle Parameters Associated with Hypertensive Nephropathy, Int J Hypertens, 2016 (2016), T. Ayllon, R. M. Campos, P. Brasil, F. C. Morone, D. C. P. Camara, G. L. S. Meira, E. Tannich, K. A. Yamamoto, M. S. Carvalho, R. S. Pedro, J. Schmidt-Chanasit, D. Cadar, D. F. Ferreira, and N. A. Honorio, Early Evidence for Zika Virus Circulation among Aedes Aegypti Mosquitoes, Rio De Janeiro, Brazil, Emerg Infect Dis, 23 (2017), A. Bachmann, M. Petter, R. Krumkamp, M. Esen, J. Held, J. A. Scholz, T. Li, B. K. Sim, S. L. Hoffman, P. G. Kremsner, B. Mordmuller, M. F. Duffy, and E. Tannich, Mosquito Passage Dramatically Changes Var Gene Expression in Controlled Human Plasmodium Falciparum Infections, PLoS Pathog, 12 (2016), e S. Baffour-Awuah, A. A. Annan, O. Maiga-Ascofare, S. D. Dieudonne, P. Adjei-Kusi, E. Owusu-Dabo, and K. Obiri-Danso, Insecticide Resistance in Malaria Vectors in Kumasi, Ghana, Parasit Vectors, 9 (2016), 633. D. Barthel, L. Kriston, C. Barkmann, J. Appiah-Poku, M. Te Bonle, K. Y. Esther Doris, B. K. Carine Esther, K. E. Jean Armel, Y. Mohammed, Y. Osei, D. Fordjour, D. Owusu, K. A. Eberhardt, R. Hinz, M. Koffi, E. N Goran, S. B. Nguah, H. Tagbor, S. Schoppen, S. Ehrhardt, and C. Bindt, Longitudinal Course of Ante- and Postpartum Generalized Anxiety Symptoms and Associated Factors in West-African Women from Ghana and Cote D ivoire, J Affect Disord, 197 (2016), D. Barthel, L. Kriston, D. Fordjour, Y. Mohammed, E. D. Kra-Yao, C. E. Bony Kotchi, E. J. Koffi Armel, K. A. Eberhardt, T. Feldt, R. Hinz, K. Mathurin, S. Schoppen, C. Bindt, and S. Ehrhardt, Trajectories of Maternal Ante- and Postpartum Depressive Symptoms and Their Association with Child- and Mother-Related Characteristics in a West African Birth Cohort Study, PLoS ONE, 12 (2017), e K. Bartsch, J. Eick, H. Zirpel, and J. Clos, Leishmania Heat Shock Proteins as Effectors of Immune Evasion and Virulence, Curr Immunol Rev, 13 (2017), K. Bartsch, A. Hombach-Barrigah, and J. Clos, Hsp90 Inhibitors Radicicol and Geldanamycin Have Opposing Effects on Leishmania Aha1-Dependent Proliferation, Cell Stress Chaperones, 22 (2017), N. Becker, S. Schon, A. M. Klein, I. Ferstl, A. Kizgin, E. Tannich, C. Kuhn, B. Pluskota, and A. Jost, First Mass Development of Aedes Albopictus (Diptera: Culicidae)-Its Surveillance and Control in Germany, Parasitol Res, 116 (2017), J... Owusu-Dabo Bentham, E...Cisneros, JZ, A Century of Trends in Adult Human Height, Elife, 5 (2016). R. Bergquist, N. W. Brattig, M. J. Chimbari, J. Zinsstag, and J. Utzinger, Ecohealth Research in Africa: Where from-where To?, Acta Trop, 175 (2017), 1-8. H. Bernin, H. Fehling, C. Marggraff, E. Tannich, and H. Lotter, The Cytokine Profile of Human Nkt Cells and Pbmcs Is Dependent on Donor Sex and Stimulus, Med Microbiol Immunol, 205 (2016), E. Bifeld, P. Tejera Nevado, J. Bartsch, J. Eick, and J. Clos, A Versatile Qpcr Assay to Quantify Trypanosomatidic Infections of Host Cells and Tissues, Med Microbiol Immunol, 205 (2016), P. Biglari, S. Chinikar, H. Belqeiszadeh, Z. Telmadarraiy, E. Mostafavi, M. Ghaffari, S. Javaherizadeh, N. Nowotny, A. R. Fooks, and N. Shahhosseini, Phylogeny of Tick- Derived Crimean-Congo Hemorrhagic Fever Virus Strains in Iran, Ticks Tick Borne Dis, 7 (2016), M. Bijlholt, K. A. C. Meeks, E. Beune, J. Addo, L. Smeeth, M. B. Schulze, I. Danquah, C. Galbete, A. de-graft Aikins, K. Klipstein-Grobusch, E. Owusu-Dabo, J. Spranger, F. P. Mockenhaupt, S. K. Amoah, S. Bahendeka, K. Stronks, and C. Agyemang, Type 2 Diabetes Mellitus Management among Ghanaian Migrants Resident in Three European Countries and Their Compatriots in Rural and Urban Ghana - the Rodam Study, Diabetes Res Clin Pract, 136 (2017), J. Birnbaum, S. Flemming, N. Reichard, A. B. Soares, P. Mesen-Ramirez, E. Jonscher, B. Bergmann, and T. Spielmann, A Genetic System to Study Plasmodium Falciparum Protein Function, Nat Methods, 14 (2017), J. Blank, L. Eggers, J. Behrends, T. Jacobs, and B. E. Schneider, One Episode of Self- Resolving Plasmodium Yoelii Infection Transiently Exacerbates Chronic Mycobacterium Tuberculosis Infection, Front Microbiol, 7 (2016), 152. J. Blessmann, Aktinomyzetom Durch Nocardia Aobensis: Unerwartet Günstiger Therapieerfolg Nach Kurzer Antibiotikatherapie, Flugmedizin Tropenmedizin Reisemedizin, 24 (2017), D. Boateng, C. Agyemang, E. Beune, K. Meeks, L. Smeeth, M. Schulze, J. Addo, A. de- Graft Aikins, C. Galbete, S. Bahendeka, I. Danquah, P. Agyei-Baffour, E. Owusu-Dabo, F. P. Mockenhaupt, J. Spranger, A. P. Kengne, D. E. Grobbee, K. Stronks, and K. Klipstein- Grobusch, Migration and Cardiovascular Disease Risk among Ghanaian Populations in Europe: The Rodam Study (Research on Obesity and Diabetes among African Migrants), Circ Cardiovasc Qual Outcomes, 10 (2017). C. N. Bock, S. Babu, M. Breloer, A. Rajamanickam, Y. Boothra, M. L. Brunn, A. A. Kuhl, R. Merle, M. Lohning, S. Hartmann, and S. Rausch, Th2/1 Hybrid Cells Occurring in Murine and Human Strongyloidiasis Share Effector Functions of Th1 Cells, Front Cell Infect Microbiol, 7 (2017), 261. J. A. Boddey, M. T. O Neill, S. Lopaticki, T. G. Carvalho, A. N. Hodder, T. Nebl, S. Wawra, P. van West, Z. Ebrahimzadeh, D. Richard, S. Flemming, T. Spielmann, J. Przyborski, J. J. Babon, and A. F. Cowman, Export of Malaria Proteins Requires Co-Translational Processing of the Pexel Motif Independent of Phosphatidylinositol-3-Phosphate Binding, Nat Commun, 7 (2016), G. Boecken, G. Burchard, B. Fleischer, H. D. Nothdurft, and B. Rieke, Aktuelle Empfehlungen: Gelbfieberimpfung, Flugmedizin Tropenmedizin Reisemedizin, 23 (2016), 27. J. Bohme, C. Rossnagel, T. Jacobs, J. Behrends, C. Holscher, and H. Erdmann, Epstein- Barr Virus-Induced Gene 3 Suppresses T Helper Type 1, Type 17 and Type 2 Immune Responses after Trypanosoma Cruzi Infection and Inhibits Parasite Replication by Interfering with Alternative Macrophage Activation, Immunology, 147 (2016), J. Bonwitt, A. H. Kelly, R. Ansumana, S. Agbla, F. Sahr, A. M. Saez, M. Borchert, R. Kock, and E. Fichet-Calvet, Rat-Atouille: A Mixed Method Study to Characterize Rodent Hunting and Consumption in the Context of Lassa Fever, Ecohealth, 13 (2016), J. Bonwitt, A. M. Saez, J. Lamin, R. Ansumana, M. Dawson, J. Buanie, D. Sondufu, M. Borchert, F. Sahr, E. Fichet-Calvet, and H. Brown, At Home with Mastomys and Rattus: Human-Rodent Interactions and Potential for Primary Transmission of Lassa Virus in Domestic Spaces, Am J Trop Med Hyg, 96 (2017), I. Boone, K. Henning, A. Hilbert, H. Neubauer, V. von Kalckreuth, D. M. Dekker, N. G. Schwarz, G. D. Pak, A. Kruger, R. M. Hagen, H. Frickmann, J. N. Heriniaina, R. Rakotozandrindrainy, J. P. Rakotondrainiarivelo, T. Razafindrabe, B. Hogan, J. May, F. Marks, S. Poppert, and S. Al Dahouk, Are Brucellosis, Q Fever and Melioidosis Potential Causes of Febrile Illness in Madagascar?, Acta Trop, 172 (2017), J. Borner, C. Pick, J. Thiede, O. M. Kolawole, M. T. Kingsley, J. Schulze, V. M. Cottontail, N. Wellinghausen, J. Schmidt-Chanasit, I. Bruchhaus, and T. Burmester, Phylogeny of Haemosporidian Blood Parasites Revealed by a Multi-Gene Approach, Mol Phylogenet Evol, 94 (2016), C. Borsari, R. Luciani, C. Pozzi, I. Poehner, S. Henrich, M. Trande, A. Cordeiro-da-Silva, N. Santarem, C. Baptista, A. Tait, F. Di Pisa, L. Dello Iacono, G. Landi, S. Gul, M. Wolf, M. Kuzikov, B. Ellinger, J. Reinshagen, G. Witt, P. Gribbon, M. Kohler, O. Keminer, B. Behrens, L. Costantino, P. Tejera Nevado, E. Bifeld, J. Eick, J. Clos, J. Torrado, M. D. Jimenez- Anton, M. J. Corral, J. M. Alunda, F. Pellati, R. C. Wade, S. Ferrari, S. Mangani, and M. P. Costi, Profiling of Flavonol Derivatives for the Development of Antitrypanosomatidic Drugs, J Med Chem, 59 (2016), C. Borsari, N. Santarem, J. Torrado, A. I. Olias, M. J. Corral, C. Baptista, S. Gul, M. Wolf, M. Kuzikov, B. Ellinger, G. Witt, P. Gribbon, J. Reinshagen, P. Linciano, A. Tait, L. Costantino, L. H. Freitas-Junior, C. B. Moraes, P. Bruno Dos Santos, L. M. Alcantara, C. H. Franco, C. D. Bertolacini, V. Fontana, P. Tejera Nevado, J. Clos, J. M. Alunda, A. Cordeiro-da- Silva, S. Ferrari, and M. P. Costi, Methoxylated 2 -Hydroxychalcones as Antiparasitic Hit Compounds, Eur J Med Chem, 126 (2017), J. Borstler, D. Engel, M. Petersen, C. Poggensee, S. Jansen, J. Schmidt-Chanasit, and R. Luhken, Surveillance of Maternal Antibodies against West Nile Virus in Chicken Eggs in South-West Germany, Trop Med Int Health, 21 (2016), J. Borstler, H. Jost, R. Garms, A. Kruger, E. Tannich, N. Becker, J. Schmidt-Chanasit, and R. Luhken, Host-Feeding Patterns of Mosquito Species in Germany, Parasit Vectors, 9 (2016), 318. R. Brathwaite, J. Addo, A. E. Kunst, C. Agyemang, E. Owusu-Dabo, A. de-graft Aikins, E. Beune, K. Meeks, K. Klipstein-Grobusch, S. Bahendeka, F. P. Mockenhaupt, S. Amoah, C. Galbete, M. B. Schulze, I. Danquah, and L. Smeeth, Smoking Prevalence Differs by Location of Residence among Ghanaians in Africa and Europe: The Rodam Study, PLoS ONE, 12 (2017), e M. Breloer, and D. Abraham, Strongyloides Infection in Rodents: Immune Response and Immune Regulation, Parasitology, 144 (2017), Y. Brenz, D. Ohnezeit, H. C. Winther-Larsen, and M. Hagedorn, Nramp1 and Nrampb Contribute to Resistance against Francisella in Dictyostelium, Front Cell Infect Microbiol, 7 (2017), 282. J. Brinkel, P. Dako-Gyeke, A. Kramer, J. May, and J. N. Fobil, An Investigation of Users Attitudes, Requirements and Willingness to Use Mobile Phone-Based Interactive Voice Response Systems for Seeking Healthcare in Ghana: A Qualitative Study, Public Health, 144 (2017), J. Brinkel, J. May, R. Krumkamp, M. Lamshoft, B. Kreuels, E. Owusu-Dabo, A. Mohammed, A. B. Marinovic, P. Dako-Gyeke, A. Kramer, and J. N. Fobil, Mobile Phone-Based Interactive Voice Response as a Tool for Improving Access to Healthcare in Remote Areas in Ghana - an Evaluation of User Experiences, Trop Med Int Health, 22 (2017), G. Burchard, and B. Fleischer, Tsutsugamushi-Fieber Breitet Sich Weltweit Aus., Flugmedizin Tropenmedizin Reisemedizin, 23 (2016), 215. F. J. Burt, W. Chen, J. J. Miner, D. J. Lenschow, A. Merits, E. Schnettler, A. Kohl, P. A. Rudd, A. Taylor, L. J. Herrero, A. Zaid, L. F. Ng, and S. Mahalingam, Chikungunya Virus: An Update on the Biology and Pathogenesis of This Emerging Pathogen, Lancet Infect Dis, 17 (2017), e107-e17. G. B. Busby, G. Band, Q. Si Le, M. Jallow, E. Bougama, V. D. Mangano, L. N. Amenga- Etego, A. Enimil, T. Apinjoh, C. M. Ndila, A. Manjurano, V. Nyirongo, O. Doumba, K. A. Rockett, D. P. Kwiatkowski, C. C. Spencer, and J. Evans, Admixture into and within Sub-Saharan Africa, Elife, 5 (2016). D. Cadar, R. Luhken, H. van der Jeugd, M. Garigliany, U. Ziegler, M. Keller, J. Lahoreau, L. Lachmann, N. Becker, M. Kik, B. B. Oude Munnink, S. Bosch, E. Tannich, A. Linden, V. Schmidt, M. P. Koopmans, J. Rijks, D. Desmecht, M. H. Groschup, C. Reusken, and J. Schmidt-Chanasit, Widespread Activity of Multiple Lineages of Usutu Virus, Western Europe, 2016, Euro Surveill, 22 (2017). D. Cadar, P. Maier, S. Muller, J. Kress, M. Chudy, A. Bialonski, A. Schlaphof, S. Jansen, H. Jost, E. Tannich, S. Runkel, W. E. Hitzler, G. Hutschenreuter, M. Wessiepe, and J. Schmidt-Chanasit, Blood Donor Screening for West Nile Virus (Wnv) Revealed Acute Usutu Virus (Usuv) Infection, Germany, September 2016, Euro Surveill, 22 (2017). S. Caluwaerts, T. Fautsch, D. Lagrou, M. Moreau, A. Modet Camara, S. Gunther, A. Di Caro, B. Borremans, F. Raymond Koundouno, J. Akoi Bore, C. H. Logue, M. Richter, R. Wolfel, E. Kuisma, A. Kurth, S. Thomas, G. Burkhardt, E. Erland, F. Lionetto, P. Lledo Weber, O. de la Rosa, H. Macpherson, and M. Van Herp, Dilemmas in Managing Pregnant Women with Ebola: 2 Case Reports, Clin Infect Dis, 62 (2016), E. Cardenal-Munoz, S. Arafah, A. T. Lopez-Jimenez, S. Kicka, A. Falaise, F. Bach, O. Schaad, J. S. King, M. Hagedorn, and T. Soldati, Mycobacterium Marinum Antagonistically Induces an Autophagic Response While Repressing the Autophagic Flux in a Torc1- and Esx-1-Dependent Manner, PLoS Pathog, 13 (2017), e P. Carrillo-Bustamante, T. H. T. Nguyen, L. Oestereich, S. Gunther, J. Guedj, and F. Graw, Determining Ribavirin s Mechanism of Action against Lassa Virus Infection, Sci Rep, 7 (2017), M. W. Carroll, S. Haldenby, N. Y. Rickett, B. Palyi, I. Garcia-Dorival, X. Liu, G. Barker, J. A. Bore, F. R. Koundouno, E. D. Williamson, T. R. Laws, R. Kerber, D. Sissoko, N. Magyar, A. Di Caro, M. Biava, T. E. Fletcher, A. Sprecher, L. F. P. Ng, L. Renia, N. Magassouba, S. Gunther, R. Wolfel, K. Stoecker, D. A. Matthews, and J. A. Hiscox, Deep Sequencing of Rna from Blood and Oral Swab Samples Reveals the Presence of Nucleic Acid from a Number of Pathogens in Patients with Acute Ebola Virus Disease and Is Consistent with Bacterial Translocation across the Gut, msphere, 2 (2017). J. S. Casalegno, D. Eibach, M. Valette, V. Enouf, I. Daviaud, S. Behillil, A. Vabret, J. C. Soulary, M. Benchaib, J. M. Cohen, S. van der Werf, A. Mosnier, and B. Lina, Performance of Influenza Case Definitions for Influenza Community Surveillance: Based on the French Influenza Surveillance Network Grog, , Euro Surveill, 22 (2017). M. Chachage, G. Pollakis, E. O. Kuffour, K. Haase, A. Bauer, Y. Nadai, L. Podola, P. Clowes, M. Schiemann, L. Henkel, D. Hoffmann, S. Joseph, S. Bhuju, L. Maboko, F. S. Sarfo, K. Eberhardt, M. Hoelscher, T. Feldt, E. Saathoff, and C. Geldmacher, Cd25+Foxp3+ Memory Cd4 T Cells Are Frequent Targets of Hiv Infection in Vivo, J Virol, 90 (2016), R. A. Cheke, S. Young, and R. Garms, Ecological Characteristics of Simulium Breeding Sites in West Africa, Acta Trop, 167 (2017), R. A. Cheke, S. Young, and R. Garms, Inverse Density Dependence of Parity Rates in the Onchocerciasis Vector Simulium Damnosum S.L, Med Vet Entomol, 30 (2016), S. L. Choy, H. Bernin, T. Aiba, E. Bifeld, S. C. Lender, M. Muhlenpfordt, J. Noll, J. Eick, C. Marggraff, H. Niss, N. G. Roldan, S. Tanaka, M. Kitamura, K. Fukase, J. Clos, E. Tannich, Y. Fujimoto, and H. Lotter, Synthetic Analogs of an Entamoeba Histolytica Glycolipid Designed to Combat Intracellular Leishmania Infection, Sci Rep, 7 (2017), E. Cimini, D. Viola, M. Cabeza-Cabrerizo, A. Romanelli, N. Tumino, A. Sacchi, V. Bordoni, R. Casetti, F. Turchi, F. Martini, J. A. Bore, F. R. Koundouno, S. Duraffour, J. Michel, T. Holm, E. G. Zekeng, L. Cowley, I. Garcia Dorival, J. Doerrbecker, N. Hetzelt, J. H. J. Baum, J. Portmann, R. Wolfel, M. Gabriel, O. Miranda, G. Diaz, J. E. Diaz, Y. A. Fleites, C. A. Pineiro, C. M. Castro, L. Koivogui, N. Magassouba, B. Diallo, P. Ruibal, L. Oestereich, D. M. Wozniak, A. Ludtke, B. Becker-Ziaja, M. R. Capobianchi, G. Ippolito, M. W. Carroll, S. Gunther, A. Di Caro, C. Munoz-Fontela, and C. Agrati, Different Features of Vdelta2 T and Nk Cells in Fatal and Non-Fatal Human Ebola Infections, PLoS Negl Trop Dis, 11 (2017), e H. V. Cole, E. Owusu-Dabo, J. Iwelunmor, V. Newsome, K. Meeks, C. Agyemang, and G. Jean-Louis, Sleep Duration Is Associated with Increased Risk for Cardiovascular Outcomes: A Pilot Study in a Sample of Community Dwelling Adults in Ghana, Sleep Med, 34 (2017), L. Colineau, J. Clos, K. M. Moon, L. J. Foster, and N. E. Reiner, Leishmania Donovani Chaperonin 10 Regulates Parasite Internalization and Intracellular Survival in Human Macrophages, Med Microbiol Immunol, 206 (2017), V. M. Corman, A. Rasche, C. Baronti, S. Aldabbagh, D. Cadar, C. B. Reusken, S. D. Pas, A. Goorhuis, J. Schinkel, R. Molenkamp, B. M. Kummerer, T. Bleicker, S. Brunink, M. Eschbach-Bludau, A. M. Eis-Hubinger, M. P. Koopmans, J. Schmidt-Chanasit, M. P. Grobusch, X. de Lamballerie, C. Drosten, and J. F. Drexler, Assay Optimization for Molecular Detection of Zika Virus, Bull World Health Organ, 94 (2016), J. P. Cramer, K. Dubischar, S. Eder, G. D. Burchard, T. Jelinek, B. Jilma, H. Kollaritsch, E. Reisinger, and K. Westritschnig, Immunogenicity and Safety of the Inactivated Japanese Encephalitis Vaccine Ixiaro(R) in Elderly Subjects: Open-Label, Uncontrolled, Multi-Center, Phase 4 Study, Vaccine, 34 (2016), J. P. Cramer, T. Jelinek, M. Paulke-Korinek, E. C. Reisinger, S. Dieckmann, M. Alberer, S. Buhler, D. Bosse, S. Meyer, E. Fragapane, M. Costantini, M. Pellegrini, M. Lattanzi, and C. Dovali, One-Year Immunogenicity Kinetics and Safety of a Purified Chick Embryo Cell Rabies Vaccine and an Inactivated Vero Cell-Derived Japanese Encephalitis Vaccine Administered Concomitantly According to a New, 1-Week, Accelerated Primary Series, J Travel Med, 23 (2016), taw011. L. M. Cruz Espinoza, C. Nichols, Y. Adu-Sarkodie, H. M. Al-Emran, S. Baker, J. D. Clemens, D. M. Dekker, D. Eibach, R. Krumkamp, K. Boahen, J. Im, A. Jaeger, V. von Kalckreuth, G. D. Pak, U. Panzner, S. E. Park, J. K. Park, N. Sarpong, H. Schutt-Gerowitt, T. Toy, T. F. Wierzba, F. Marks, and J. May, Variations of Invasive Salmonella Infections by Population Size in Asante Akim North Municipal, Ghana, Clin Infect Dis, 62 Suppl 1 (2016), S C. Dahlke, S. Lunemann, R. Kasonta, B. Kreuels, S. Schmiedel, M. L. Ly, S. K. Fehling, T. Strecker, S. Becker, M. Altfeld, A. Sow, A. W. Lohse, C. Munoz-Fontela, and M. M. Addo, Comprehensive Characterization of Cellular Immune Responses Following Ebola Virus Infection, J Infect Dis (2017) D. A. Danquah, K. O. Buabeng, K. P. Asante, E. Mahama, C. Bart-Plange, and E. Owusu- Dabo, Malaria Case Detection Using Rapid Diagnostic Test at the Community Level in Ghana: Consumer Perception and Practitioners Experiences, Malar J, 15 (2016), 34. M. Campos R. de, C. Cirne-Santos, G. L. Meira, L. L. Santos, M. D. de Meneses, J. Friedrich, S. Jansen, M. S. Ribeiro, I. C. da Cruz, J. Schmidt-Chanasit, and D. F. Ferreira, Prolonged Detection of Zika Virus Rna in Urine Samples During the Ongoing Zika Virus Epidemic in Brazil, J Clin Virol, 77 (2016), M. De Niz, P. C. Burda, G. Kaiser, H. A. Del Portillo, T. Spielmann*, F. Frischknecht*, V. T. Heussler*, and *equal contributors, Progress in Imaging Methods: Insights Gained into Plasmodium Biology, Nat Rev Microbiol, 15 (2017), M. De Niz, A. K. Ullrich, A. Heiber, A. Blancke Soares, C. Pick, R. Lyck, D. Keller, G. Kaiser, M. Prado, S. Flemming, H. Del Portillo, C. J. Janse, V. Heussler*, T. Spielmann*, and equal supervisors, The Machinery Underlying Malaria Parasite Virulence Is Conserved between Rodent and Human Malaria Parasites, Nat Commun, 7 (2016), B. De Smet, D. Van den Bossche, C. van de Werve, J. Mairesse, J. Schmidt-Chanasit, J. Michiels, K. K. Arien, M. Van Esbroeck, and L. Cnops, Confirmed Zika Virus Infection in a Belgian Traveler Returning from Guatemala, and the Diagnostic Challenges of Imported Cases into Europe, J Clin Virol, 80 (2016), D. Dekker, M. Wolters, E. Mertens, K. G. Boahen, R. Krumkamp, D. Eibach, N. G. Schwarz, Y. Adu-Sarkodie, H. Rohde, M. Christner, F. Marks, N. Sarpong, and J. May, Antibiotic Resistance and Clonal Diversity of Invasive Staphylococcus Aureus in the Rural Ashanti Region, Ghana, BMC Infect Dis, 16 (2016), 720. B. Diallo, D. Sissoko, N. J. Loman, H. A. Bah, H. Bah, M. C. Worrell, L. S. Conde, R. Sacko, S. Mesfin, A. Loua, J. K. Kalonda, N. A. Erondu, B. A. Dahl, S. Handrick, I. Goodfellow, L. W. Meredith, M. Cotten, U. Jah, R. E. Guetiya Wadoum, P. Rollin, N. Magassouba, D. Malvy, X. Anglaret, M. W. Carroll, R. B. Aylward, M. H. Djingarey, A. Diarra, P. Formenty, S. Keita, S. Gunther, A. Rambaut, and S. Duraffour, Resurgence of Ebola Virus Disease in Guinea Linked to a Survivor with Virus Persistence in Seminal Fluid for More Than 500 Days, Clin Infect Dis, 63 (2016), Dietrich, S. Jansen, G. Fall, S. Lorenzen, M. Rudolf, K. Huber, A. Heitmann, S. Schicht, E. H. Ndiaye, M. Watson, I. Castelli, B. Brennan, R. M. Elliott, M. Diallo, A. A. Sall, A. B. Failloux, E. Schnettler, A. Kohl, and S. C. Becker, RNA Interference Restricts Rift Valley Fever Virus in Multiple Insect Systems, msphere, 2 (2017). K. K. Dietze, U. Dittmer, D. K. Koudaimi, S. Schimmer, M. Reitz, M. Breloer, and W. Hartmann, Filariae-Retrovirus Co-Infection in Mice Is Associated with Suppressed Virus-Specific IGg Immune Response and Higher Viral Loads, PLoS Negl Trop Dis, 10 (2016), e S. Dimonte, E. I. Bruske, J. Hass, C. Supan, C. L. Salazar, J. Held, S. Tschan, M. Esen, M. Flotenmeyer, I. Koch, J. Berger, A. Bachmann, B. K. Sim, S. L. Hoffman, P. G. Kremsner, B. Mordmuller, and M. Frank, Sporozoite Route of Infection Influences in Vitro Var Gene Transcription of Plasmodium Falciparum Parasites from Controlled Human Infections, J Infect Dis, 214 (2016), D. Ditgen, E. M. Anandarajah, J. Hansmann, D. Winter, G. Schramm, K. D. Erttmann, E. Liebau, and N. W. Brattig, Multifunctional Thioredoxin-Like Protein from the Gastrointestinal Parasitic Nematodes Strongyloides Ratti and Trichuris Suis Affects Mucosal Homeostasis, J Parasitol Res, 2016 (2016), J. Drebes, M. Kunz, B. Windshugel, A. G. Kikhney, I. B. Muller, R. J. Eberle, D. Oberthur, H. Cang, D. I. Svergun, M. Perbandt, C. Betzel, and C. Wrenger, Structure of Thim from Vitamin B1 Biosynthetic Pathway of Staphylococcus Aureus - Insights into a Novel Pro- Drug Approach Addressing Mrsa Infections, Sci Rep, 6 (2016), G. Dudas, L. M. Carvalho, T. Bedford, A. J. Tatem, G. Baele, N. R. Faria, D. J. Park, J. T. Ladner, A. Arias, D. Asogun, F. Bielejec, S. L. Caddy, M. Cotten, J. D Ambrozio, S. Dellicour, A. Di Caro, J. W. Diclaro, S. Duraffour, M. J. Elmore, L. S. Fakoli, O. Faye, M. L. Gilbert, S. M. Gevao, S. Gire, A. Gladden-Young, A. Gnirke, A. Goba, D. S. Grant, B. L. Haagmans, J. A. Hiscox, U. Jah, J. R. Kugelman, D. Liu, J. Lu, C. M. Malboeuf, S. Mate, D. A. Matthews, C. B. Matranga, L. W. Meredith, J. Qu, J. Quick, S. D. Pas, M. V. T. Phan, G. Pollakis, C. B. Reusken, M. Sanchez-Lockhart, S. F. Schaffner, J. S. Schieffelin, R. S. Sealfon, E. Simon-Loriere, S. L. Smits, K. Stoecker, L. Thorne, E. A. Tobin, M. A. Vandi, S. J. Watson, K. West, S. Whitmer, M. R. Wiley, S. M. Winnicki, S. Wohl, R. Wolfel, N. L. Yozwiak, K. G. Andersen, S. O. Blyden, F. Bolay, M. W. Carroll, B. Dahn, B. Diallo, P. Formenty, C. Fraser, G. F. Gao, R. F. Garry, I. Goodfellow, S. Gunther, C. T. Happi, E. C. Holmes, B. Kargbo, S. Keita, P. Kellam, M. P. G. Koopmans, J. H. Kuhn, N. J. Loman, N. Magassouba, D. Naidoo, S. T. Nichol, T. Nyenswah, G. Palacios, O. G. Pybus, P. C. Sabeti, A. Sall, U. Stroher, I. Wurie, M. A. Suchard, P. Lemey, and A. Rambaut, Virus Genomes Reveal Factors That Spread and Sustained the Ebola Epidemic, Nature, 544 (2017), J. Duehr, T. J. Wohlbold, L. Oestereich, V. Chromikova, F. Amanat, M. Rajendran, S. Gomez-Medina, I. Mena, B. R. tenoever, A. Garcia-Sastre, C. F. Basler, C. Munoz- Fontela, and F. Krammer, Novel Cross-Reactive Monoclonal Antibodies against Ebolavirus Glycoproteins Show Protection in a Murine Challenge Model, J Virol, 91 (2017). S. Duraffour, D. Malvy, and D. Sissoko, How to Treat Ebola Virus Infections? A Lesson from the Field, Curr Opin Virol, 24 (2017), PUBLIKATIONEN 2016/2017 Artikel in referierten Zeitschriften (BNITM-MitarbeiterInnen fett gedruckt)

60 K. A. Eberhardt, C. D. Vinnemeier, J. Dehnerdt, T. Rolling, R. Steffen, and J. P. Cramer, Travelers to the Fifa World Cup 2014 in Brazil: Health Risks Related to Mass Gatherings/ Sports Events and Implications for the Summer Olympic Games in Rio De Janeiro in 2016, Travel Med Infect Dis, 14 (2016), J. Ehlers, J. U. Ganzhorn, C. Silaghi, A. Kruger, D. Pothmann, R. Y. Ratovonamana, A. Veit, C. Keller, and S. Poppert, Tick (Amblyomma Chabaudi) Infestation of Endemic Tortoises in Southwest Madagascar and Investigation of Tick-Borne Pathogens, Ticks Tick Borne Dis, 7 (2016), S. Ehrhardt, N. Guo, R. Hinz, S. Schoppen, J. May, M. Reiser, M. P. Schroeder, S. Schmiedel, M. Keuchel, E. C. Reisinger, A. Langeheinecke, A. de Weerth, M. Schuchmann, T. Schaberg, S. Ligges, M. Eveslage, R. M. Hagen, G. D. Burchard, and A. W. Lohse, Saccharomyces Boulardii to Prevent Antibiotic-Associated Diarrhea: A Randomized, Double-Masked, Placebo-Controlled Trial, Open Forum Infect Dis, 3 (2016), ofw011. D. Eibach, H. M. Al-Emran, D. M. Dekker, R. Krumkamp, Y. Adu-Sarkodie, L. M. Cruz Espinoza, C. Ehmen, K. Boahen, P. Heisig, J. Im, A. Jaeger, V. von Kalckreuth, G. D. Pak, U. Panzner, S. E. Park, A. Reinhardt, N. Sarpong, H. Schutt-Gerowitt, T. F. Wierzba, F. Marks, and J. May, The Emergence of Reduced Ciprofloxacin Susceptibility in Salmonella Enterica Causing Bloodstream Infections in Rural Ghana, Clin Infect Dis, 62 Suppl 1 (2016), S32-6. D. Eibach, C. B. Campos, R. Krumkamp, H. M. Al-Emran, D. Dekker, K. G. Boahen, B. Kreuels, Y. Adu-Sarkodie, M. Aepfelbacher, S. E. Park, U. Panzner, F. Marks, and J. May, Extended Spectrum Beta-Lactamase Producing Enterobacteriaceae Causing Bloodstream Infections in Rural Ghana, , Int J Med Microbiol, 306 (2016), D. Eibach, S. Herrera-Leon, H. Gil, B. Hogan, L. Ehlkes, M. Adjabeng, B. Kreuels, M. Nagel, D. Opare, J. N. Fobil, and J. May, Molecular Epidemiology and Antibiotic Susceptibility of Vibrio Cholerae Associated with a Large Cholera Outbreak in Ghana in 2014, PLoS Negl Trop Dis, 10 (2016), e D. Eibach, R. Krumkamp, A. Hahn, N. Sarpong, Y. Adu-Sarkodie, A. Leva, J. Kasmaier, M. Panning, J. May, and E. Tannich, Application of a Multiplex Pcr Assay for the Detection of Gastrointestinal Pathogens in a Rural African Setting, BMC Infect Dis, 16 (2016), 150. D. Eibach, M. Nagel, B. Hogan, C. Azuure, R. Krumkamp, D. Dekker, M. Gajdiss, M. Brunke, N. Sarpong, E. Owusu-Dabo, and J. May, Nasal Carriage of Staphylococcus Aureus among Children in the Ashanti Region of Ghana, PLoS ONE, 12 (2017), e H. Ellerbrok, S. Jacobsen, P. Patel, T. Rieger, M. Eickmann, S. Becker, S. Gunther, D. Naidoo, L. Schrick, K. Keeren, A. Targosz, A. Teichmann, P. Formenty, and M. Niedrig, External Quality Assessment Study for Ebolavirus Pcr-Diagnostic Promotes International Preparedness During the Ebola Outbreak in West Africa, PLoS Negl Trop Dis, 11 (2017), e D. Engel, H. Jost, M. Wink, J. Borstler, S. Bosch, M. M. Garigliany, A. Jost, C. Czajka, R. Luhken, U. Ziegler, M. H. Groschup, M. Pfeffer, N. Becker, D. Cadar, and J. Schmidt- Chanasit, Reconstruction of the Evolutionary History and Dispersal of Usutu Virus, a Neglected Emerging Arbovirus in Europe and Africa, MBio, 7 (2016), e K. Engelberg, F. D. Ivey, A. Lin, M. Kono, A. Lorestani, D. Faugno-Fusci, T. W. Gilberger, M. White, and M. J. Gubbels, A Morn1-Associated Had Phosphatase in the Basal Complex Is Essential for Toxoplasma Gondii Daughter Budding, Cell Microbiol, 18 (2016), F. Farhadpour, Z. Telmadarraiy, S. Chinikar, K. Akbarzadeh, M. D. Moemenbellah- Fard, F. Faghihi, M. R. Fakoorziba, T. Jalali, E. Mostafavi, N. Shahhosseini, and M. Mohammadian, Molecular Detection of Crimean-Congo Haemorrhagic Fever Virus in Ticks Collected from Infested Livestock Populations in a New Endemic Area, South of Iran, Trop Med Int Health, 21 (2016), Y. Fernandez-Garcia, J. Reguera, C. Busch, G. Witte, O. Sanchez-Ramos, C. Betzel, S. Cusack, S. Gunther, and S. Reindl, Atomic Structure and Biochemical Characterization of an RNA Endonuclease in the N Terminus of Andes Virus L Protein, PLoS Pathog, 12 (2016), e M. R. Ferrero, A. M. Heins, L. L. Soprano, D. M. Acosta, M. I. Esteva, T. Jacobs, and V. G. Duschak, Involvement of Sulfates from Cruzipain, a Major Antigen of Trypanosoma Cruzi, in the Interaction with Immunomodulatory Molecule Siglec-E, Med Microbiol Immunol, 205 (2016), E. Fichet-Calvet, S. Olschlager, T. Strecker, L. Koivogui, B. Becker-Ziaja, A. B. Camara, B. Soropogui, N. Magassouba, and S. Gunther, Spatial and Temporal Evolution of Lassa Virus in the Natural Host Population in Upper Guinea, Sci Rep, 6 (2016), O. A. Folarin*, D. Ehichioya*, S. F. Schaffner*, S. M. Winnicki*, S. Wohl*, P. Eromon, K. L. West, A. Gladden-Young, N. E. Oyejide, C. B. Matranga, A. B. Deme, A. James, C. Tomkins-Tinch, K. Onyewurunwa, J. T. Ladner, G. Palacios, I. Nosamiefan, K. G. Andersen, S. Omilabu, D. J. Park, N. L. Yozwiak, A. Nasidi, R. F. Garry, O. Tomori, P. C. Sabeti, C. T. Happi, and *contributed equally, Ebola Virus Epidemiology and Evolution in Nigeria, J Infect Dis, 214 (2016), S102-S09. C. Frank, D. Cadar, A. Schlaphof, N. Neddersen, S. Gunther, J. Schmidt-Chanasit, and D. Tappe, Sexual Transmission of Zika Virus in Germany, April 2016, Euro Surveill, 21 (2016). C. Frank, R. Krumkamp, N. Sarpong, P. Sothmann, J. N. Fobil, G. Foli, A. Jaeger, L. Ehlkes, E. Owusu-Dabo, Y. Adu-Sarkodie, F. Marks, R. R. Schumann, J. May, and B. Kreuels, Spatial Heterogeneity of Malaria in Ghana: A Cross-Sectional Study on the Association between Urbanicity and the Acquisition of Immunity, Malar J, 15 (2016), 84. H. Frickmann, W. Schmeja, E. Reisinger, T. Mittlmeier, K. Mitzner, N. G. Schwarz, P. Warnke, and A. Podbielski, Risk Reduction of Needle Stick Injuries Due to Continuous Shift from Unsafe to Safe Instruments at a German University Hospital, Eur J Microbiol Immunol (Bp), 6 (2016), J. J. Gabor, N. G. Schwarz, M. Esen, P. G. Kremsner, and M. P. Grobusch, Dengue and Chikungunya Seroprevalence in Gabonese Infants Prior to Major Outbreaks in 2007 and 2010: A Sero-Epidemiological Study, Travel Med Infect Dis, 14 (2016), E. Gabriel, A. Ramani, U. Karow, M. Gottardo, K. Natarajan, L. M. Gooi, G. Goranci- Buzhala, O. Krut, F. Peters, M. Nikolic, S. Kuivanen, E. Korhonen, T. Smura, O. Vapalahti, A. Papantonis, J. Schmidt-Chanasit, M. Riparbelli, G. Callaini, M. Kronke, O. Utermohlen, and J. Gopalakrishnan, Recent Zika Virus Isolates Induce Premature Differentiation of Neural Progenitors in Human Brain Organoids, Cell Stem Cell, 20 (2017), e5. C. Galbete, M. Nicolaou, K. A. Meeks, A. de-graft Aikins, J. Addo, S. K. Amoah, L. Smeeth, E. Owusu-Dabo, K. Klipstein-Grobusch, S. Bahendeka, C. Agyemang, F. P. Mockenhaupt, E. J. Beune, K. Stronks, M. B. Schulze, and I. Danquah, Food Consumption, Nutrient Intake, and Dietary Patterns in Ghanaian Migrants in Europe and Their Compatriots in Ghana, Food Nutr Res, 61 (2017), G. Garg, E. Nikolouli, M. Hardtke-Wolenski, A. Toker, N. Ohkura, M. Beckstette, T. Miyao, R. Geffers, S. Floess, N. Gerdes, E. Lutgens, A. Osterloh, S. Hori, S. Sakaguchi, E. Jaeckel, and J. Huehn, Unique Properties of Thymic Antigen-Presenting Cells Promote Epigenetic Imprinting of Alloantigen-Specific Regulatory T Cells, Oncotarget, 8 (2017), M. Garigliany, B. Taminiau, N. El Agrebi, D. Cadar, G. Gilliaux, M. Hue, D. Desmecht, G. Daube, A. Linden, F. Farnir, M. De Proft, and C. Saegerman, Moku Virus in Invasive Asian Hornets, Belgium, 2016, Emerg Infect Dis, 23 (2017), M. Gharaibeh, M. Hagedorn, S. Lilla, M. Hauptmann, H. Heine, B. Fleischer, and C. Keller, Toll-Like Receptor 2 Recognizes Orientia Tsutsugamushi and Increases Susceptibility to Murine Experimental Scrub Typhus, Infect Immun, 84 (2016), M. Ginier, A. Neumayr, S. Gunther, J. Schmidt-Chanasit, and J. Blum, Zika without Symptoms in Returning Travellers: What Are the Implications?, Travel Med Infect Dis, 14 (2016), A. Golldack, B. Henke, B. Bergmann, M. Wiechert, H. Erler, A. Blancke Soares, T. Spielmann, and E. Beitz, Substrate-Analogous Inhibitors Exert Antimalarial Action by Targeting the Plasmodium Lactate Transporter Pffnt at Nanomolar Scale, PLoS Pathog, 13 (2017), e H. Granzer, R. M. Hagen, P. Warnke, W. Bock, T. Baumann, N. G. Schwarz, A. Podbielski, H. Frickmann, and T. Koeller, Molecular Epidemiology of Carbapenem-Resistant Acinetobacter Baumannii Complex Isolates from Patients That Were Injured During the Eastern Ukrainian Conflict, Eur J Microbiol Immunol (Bp), 6 (2016), S. Graul, S. Bottcher, D. Eibach, R. Krumkamp, J. Kasmaier, Y. Adu-Sarkodie, J. May, E. Tannich, and M. Panning, High Diversity of Human Parechovirus Including Novel Types in Stool Samples from Ghanaian Children, J Clin Virol, 96 (2017), R. Grosse, Z. Lukacs, P. N. Cobos, F. Oyen, C. Ehmen, B. Muntau, C. Timmann, and B. Noack, The Prevalence of Sickle Cell Disease and Its Implication for Newborn Screening in Germany (Hamburg Metropolitan Area), Pediatr Blood Cancer, 63 (2016), H. Gruell, L. Hamacher, V. Jennissen, A. Tuchscherer, N. Ostendorf, T. Loffler, M. Hallek, M. Kochanek, E. Tannich, B. Boll, and G. Fatkenheuer, On Taking a Different Route: An Unlikely Case of Malaria by Nosocomial Transmission, Clin Infect Dis, 65 (2017), D. Gyurech, J. Schilling, J. Schmidt-Chanasit, P. Cassinotti, F. Kaeppeli, and M. Dobec, False Positive Dengue Ns1 Antigen Test in a Traveller with an Acute Zika Virus Infection Imported into Switzerland, Swiss Med Wkly, 146 (2016), w R. M. Hagen, H. Frickmann, J. Ehlers, A. Kruger, G. Margos, C. Hizo-Teufel, V. Fingerle, R. Rakotozandrindrainy, V. V. Kalckreuth, J. Im, G. D. Pak, H. J. Jeon, J. P. Rakotondrainiarivelo, J. N. Heriniaina, T. Razafindrabe, F. Konings, J. May, B. Hogan, J. Ganzhorn, U. Panzner, N. G. Schwarz, D. Dekker, F. Marks, and S. Poppert, Presence of Borrelia Spp. DNA in Ticks, but Absence of Borrelia Spp. and of Leptospira Spp. DNA in Blood of Fever Patients in Madagascar, Acta Trop, 177 (2018), R. Hardi, G. Babocsay, D. Tappe, M. Sulyok, I. Bodo, and L. Rozsa, Armillifer-Infected Snakes Sold at Congolese Bushmeat Markets Represent an Emerging Zoonotic Threat, Ecohealth, 14 (2017), M. Hauptmann, N. Burkhardt, U. Munderloh, S. Kuehl, U. Richardt, S. Krasemann, K. Hartmann, T. Krech, B. Fleischer, C. Keller, and A. Osterloh, Gfpuv-Expressing Recombinant Rickettsia Typhi: A Useful Tool for the Study of Pathogenesis and Cd8+ T Cell Immunology in Rickettsia Typhi Infection, Infect Immun, 85 (2017). M. Hauptmann, J. Kolbaum, S. Lilla, D. Wozniak, M. Gharaibeh, B. Fleischer, and C. A. Keller, Protective and Pathogenic Roles of CD8+ T Lymphocytes in Murine Orientia Tsutsugamushi Infection, PLoS Negl Trop Dis, 10 (2016), e Heitmann, S. Jansen, R. Luhken, M. Leggewie, M. Badusche, B. Pluskota, N. Becker, O. Vapalahti, J. Schmidt-Chanasit, and E. Tannich, Experimental Transmission of Zika Virus by Mosquitoes from Central Europe, Euro Surveill, 22 (2017), M. Henao-Restrepo, A. Camacho, I. M. Longini, C. H. Watson, W. J. Edmunds, M. Egger, M. W. Carroll, N. E. Dean, I. Diatta, M. Doumbia, B. Draguez, S. Duraffour, G. Enwere, R. Grais, S. Gunther, P. S. Gsell, S. Hossmann, S. V. Watle, M. K. Konde, S. Keita, S. Kone, E. Kuisma, M. M. Levine, S. Mandal, T. Mauget, G. Norheim, X. Riveros, A. Soumah, S. Trelle, A. S. Vicari, J. A. Rottingen, and M. P. Kieny, Efficacy and Effectiveness of an Rvsv-Vectored Vaccine in Preventing Ebola Virus Disease: Final Results from the Guinea Ring Vaccination, Open-Label, Cluster-Randomised Trial (Ebola Ca Suffit!), Lancet, 389 (2017), S. Herzmann, R. Krumkamp, S. Rode, C. Kintrup, and S. Rumpf, Par-1 Promotes Microtubule Breakdown During Dendrite Pruning in Drosophila, EMBO J, 36 (2017), V. Heussler, T. Spielmann, F. Frischknecht, and T. Gilberger, Plasmodium, in Molecular Parasitology: Protozoan Parasites and Their Molecules, ed. by J. Walochnik and M. DucheneSpringer, 2016), R. Hinz, N. G. Schwarz, A. Hahn, and H. Frickmann, Serological Approaches for the Diagnosis of Schistosomiasis - a Review, Mol Cell Probes, 31 (2017), B. Hogan, L. Ammer, M. Zimmermann, T. Binger, R. Krumkamp, N. Sarpong, T. Rettig, D. Dekker, B. Kreuels, L. Reigl, K. G. Boahen, C. Wiafe, Y. Adu-Sarkodie, E. Owusu-Dabo, J. May, and D. Eibach, Burden of Influenza among Hospitalized Febrile Children in Ghana, Influenza Other Respir Viruses, 11 (2017), B. Hogan, R. Rakotozandrindrainy, H. Al-Emran, D. Dekker, A. Hahn, A. Jaeger, S. Poppert, H. Frickmann, R. M. Hagen, V. Micheel, S. Crusius, J. N. Heriniaina, J. P. Rakotondrainiarivelo, T. Razafindrabe, J. May, and N. G. Schwarz, Prevalence of Nasal Colonisation by Methicillin-Sensitive and Methicillin-Resistant Staphylococcus Aureus among Healthcare Workers and Students in Madagascar, BMC Infect Dis, 16 (2016), 420. C. Holscher, L. Heitmann, E. Owusu-Dabo, R. D. Horstmann, C. G. Meyer, S. Ehlers, and T. Thye, A Mutation in Il4ra Is Associated with the Degree of Pathology in Human Tb Patients, Mediators Inflamm, 2016 (2016), V. L. Hunt, I. J. Tsai, A. Coghlan, A. J. Reid, N. Holroyd, B. J. Foth, A. Tracey, J. A. Cotton, E. J. Stanley, H. Beasley, H. M. Bennett, K. Brooks, B. Harsha, R. Kajitani, A. Kulkarni, D. Harbecke, E. Nagayasu, S. Nichol, Y. Ogura, M. A. Quail, N. Randle, D. Xia, N. W. Brattig, H. Soblik, D. M. Ribeiro, A. Sanchez-Flores, T. Hayashi, T. Itoh, D. R. Denver, W. Grant, J. D. Stoltzfus, J. B. Lok, H. Murayama, J. Wastling, A. Streit, T. Kikuchi, M. Viney, and M. Berriman, The Genomic Basis of Parasitism in the Strongyloides Clade of Nematodes, Nat Genet, 48 (2016), D. Huzly, I. Hanselmann, J. Schmidt-Chanasit, and M. Panning, High Specificity of a Novel Zika Virus Elisa in European Patients after Exposure to Different Flaviviruses, Euro Surveill, 21 (2016). J. Im, C. Nichols, M. Bjerregaard-Andersen, A. G. Sow, S. Lofberg, A. Tall, G. D. Pak, P. Aaby, S. Baker, J. D. Clemens, L. M. Espinoza, F. Konings, J. May, M. Monteiro, A. Niang, U. Panzner, S. E. Park, H. Schutt-Gerowitt, T. F. Wierzba, F. Marks, and V. von Kalckreuth, Prevalence of Salmonella Excretion in Stool: A Community Survey in 2 Sites, Guinea- Bissau and Senegal, Clin Infect Dis, 62 Suppl 1 (2016), S50-5. S. Jacobsen, P. Patel, J. Schmidt-Chanasit, I. Leparc-Goffart, A. Teichmann, H. Zeller, and M. Niedrig, External Quality Assessment Studies for Laboratory Performance of Molecular and Serological Diagnosis of Chikungunya Virus Infection, J Clin Virol, 76 (2016), J. Jochum, E. Tannich, D. Tappe, and S. Schmiedel, [A Somali Refugee with Fever and Abnormal Blood Smear], Internist (Berl), 58 (2017), M. V. Johansen, S. C. Welburn, P. Dorny, and N. W. Brattig, Control of Neglected Zoonotic Diseases, Acta Trop, 165 (2017), 1-2. H. Kampen, S. Jansen, J. Schmidt-Chanasit, and D. Walther, Indoor Development of Aedes Aegypti in Germany, 2016, Euro Surveill, 21 (2016). H. Kang, B. Kreuels, J. May, and D. S. Small, Full Matching Approach to Instrumental Variables Estimation with Application to the Effect of Malaria on Stunting, Ann Applied Stat, 10 (2016), M. N. Katabarwa, J. Katamanywa, T. Lakwo, P. Habomugisha, E. Byamukama, D. Oguttu, C. Nahabwe, M. Ngabirano, E. Tukesiga, A. Khainza, E. Tukahebwa, T. R. Unnasch, F. O. Richards, and R. Garms, The Imaramagambo Onchocerciasis Focus in Southwestern Uganda: Interruption of Transmission after Disappearance of the Vector Simulium Neavei and Its Associated Freshwater Crabs, Am J Trop Med Hyg, 95 (2016), P. Kaur, M. Garg, A. Hombach-Barrigah, J. Clos, and N. Goyal, Mapk1 of Leishmania Donovani Interacts and Phosphorylates Hsp70 and Hsp90 Subunits of Foldosome Complex, Sci Rep, 7 (2017), M. Keita, S. Duraffour, N. J. Loman, A. Rambaut, B. Diallo, N. Magassouba, M. W. Carroll, J. Quick, A. A. Sall, J. R. Glynn, P. Formenty, L. Subissi, and O. Faye, Unusual Ebola Virus Chain of Transmission, Conakry, Guinea, , Emerg Infect Dis, 22 (2016), C. Keller, A. Kruger, N. G. Schwarz, R. Rakotozandrindrainy, J. P. Rakotondrainiarivelo, T. Razafindrabe, H. Derschum, C. Silaghi, D. Pothmann, A. Veit, B. Hogan, J. May, M. Girmann, S. Kramme, B. Fleischer, and S. Poppert, High Detection Rate of Rickettsia Africae in Amblyomma Variegatum but Low Prevalence of Anti-Rickettsial Antibodies in Healthy Pregnant Women in Madagascar, Ticks Tick Borne Dis, 7 (2016), R. Kerber*, R. Krumkamp, B. Diallo, A. Jaeger, M. Rudolf, S. Lanini, J. A. Bore, F. R. Koundouno, B. Becker-Ziaja, E. Fleischmann, K. Stoecker, S. Meschi, S. Mely, E. N. Newman, F. Carletti, J. Portmann, M. Korva, S. Wolff, P. Molkenthin, Z. Kis, A. Kelterbaum, A. Bocquin, T. Strecker, A. Fizet, C. Castilletti, G. Schudt, L. Ottowell, A. Kurth, B. Atkinson, M. Badusche, A. Cannas, E. Pallasch, A. Bosworth, C. Yue, B. Palyi, H. Ellerbrok, C. Kohl, L. Oestereich, C. H. Logue, A. Ludtke, M. Richter, D. Ngabo, B. Borremans, D. Becker, S. Gryseels, S. Abdellati, T. Vermoesen, E. Kuisma, A. Kraus, B. Liedigk, P. Maes, R. Thom, S. Duraffour, S. Diederich, J. Hinzmann, B. Afrough, J. Repits, M. Mertens, I. Vitoriano, A. Bah, A. Sachse, J. P. Boettcher, S. Wurr, S. Bockholt, A. Nitsche, T. A. Zupanc, M. Strasser, G. Ippolito, S. Becker, H. Raoul, M. W. Carroll, H. De Clerck, M. Van Herp, A. Sprecher, L. Koivogui, N. Magassouba, S. Keita, P. Drury, C. Gurry, P. Formenty, J. May, M. Gabriel*, R. Wolfel*, S. Gunther*, A. Di Caro*, and *contributed equally, Analysis of Diagnostic Findings from the European Mobile Laboratory in Gueckedou, Guinea, March 2014 through March 2015, J Infect Dis, 214 (2016), S250-S57. R. Klemz, S. Reischl, T. Wallach, N. Witte, K. Jurchott, S. Klemz, V. Lang, S. Lorenzen, M. Knauer, S. Heidenreich, M. Xu, J. A. Ripperger, M. Schupp, R. Stanewsky, and A. Kramer, Reciprocal Regulation of Carbon Monoxide Metabolism and the Circadian Clock, Nat Struct Mol Biol, 24 (2017), D. J. Klionsky, K. Abdelmohsen, M. Hagedorn, and S. M. Zughaier, Guidelines for the Use and Interpretation of Assays for Monitoring Autophagy (3rd Edition), Autophagy, 12 (2016), T. Koch, C. Schoen, B. Muntau, M. Addo, H. Ostertag, B. Wiechens, and D. Tappe, Molecular Diagnosis of Human Taenia Martis Eye Infection, Am J Trop Med Hyg, 94 (2016), M. K. Konde, D. P. Baker, F. A. Traore, M. S. Sow, A. Camara, A. A. Barry, D. Mara, A. Barry, M. Cone, I. Kaba, A. A. Richard, A. H. Beavogui, S. Gunther, M. Pintilie, and E. N. Fish, Interferon Beta-1a for the Treatment of Ebola Virus Disease: A Historically Controlled, Single-Arm Proof-of-Concept Trial, PLoS ONE, 12 (2017), e M. Kono, D. Heincke, L. Wilcke, T. Wong, C. Bruns, S. Herrmann, T. Spielmann, and T. W. Gilberger, Pellicle Formation in the Malaria Parasite, J Cell Sci, 129 (2016), V. Krahling, D. Becker, C. Rohde, M. Eickmann, Y. Eroglu, A. Herwig, R. Kerber, K. Kowalski, J. Vergara-Alert, and S. Becker, Development of an Antibody Capture Elisa Using Inactivated Ebola Zaire Makona Virus, Med Microbiol Immunol, 205 (2016), R. Krumkamp, B. Kreuels, N. Sarpong, K. G. Boahen, G. Foli, B. Hogan, A. Jaeger, L. Reigl, H. Zeeb, F. Marks, Y. Adu-Sarkodie, and J. May, Association between Malaria and Invasive Nontyphoidal Salmonella Infection in a Hospital Study: Accounting for Berkson s Bias, Clin Infect Dis, 62 Suppl 1 (2016), S83-9. S. Kumar, M. Kumar, R. Ekka, J. D. Dvorin, A. S. Paul, A. K. Madugundu, T. Gilberger, H. Gowda, M. T. Duraisingh, T. S. Keshava Prasad, and P. Sharma, Pfcdpk1 Mediated Signaling in Erythrocytic Stages of Plasmodium Falciparum, Nat Commun, 8 (2017), 63. A. Kwarteng, J. Amuasi, A. Annan, S. Ahuno, D. Opare, M. Nagel, C. Vinnemeier, J. May, and E. Owusu-Dabo, Current Meningitis Outbreak in Ghana: Historical Perspectives and the Importance of Diagnostics, Acta Trop, 169 (2017), T. Lakwo, R. Garms, J. Wamani, E. M. Tukahebwa, E. Byamukama, A. W. Onapa, E. Tukesiga, J. Katamanywa, S. Begumisa, P. Habomugisha, D. Oguttu, F. Richards, T. R. Unnasch, and M. Katabarwa, Interruption of the Transmission of Onchocerca Volvulus in the Kashoya-Kitomi Focus, Western Uganda by Long-Term Ivermectin Treatment and Elimination of the Vector Simulium Neavei by Larviciding, Acta Trop, 167 (2017), E. O. Lampe, Y. Brenz, L. Herrmann, U. Repnik, G. Griffiths, C. Zingmark, A. Sjostedt, H. C. Winther-Larsen, and M. Hagedorn, Dissection of Francisella - Host Cell Interactions in Dictyostelium Discoideum, Appl Environ Microbiol, 82 (2016), M. Lee, K. Etebari, S. Hall-Mendelin, A. F. van den Hurk, J. Hobson-Peters, S. Vatipally, E. Schnettler, R. Hall, and S. Asgari, Understanding the Role of Micrornas in the Interaction of Aedes Aegypti Mosquitoes with an Insect-Specific Flavivirus, J Gen Virol, 98 (2017), M. Leggewie, M. Badusche, M. Rudolf, S. Jansen, J. Börstler, K. Huber, A. Krüger, J. Schmidt-Chanasit, E Tannich, and S. C. Becker, Culex Pipiens and Culex Torrentium Populations from Germany Are Susceptible to West Nile Virus Infection, One Health, 2 (2016), C. Lehmann, M. Kochanek, D. Abdulla, S. Becker, B. Boll, A. Bunte, D. Cadar, A. Dormann, M. Eickmann, P. Emmerich, T. Feldt, C. Frank, J. Fries, M. Gabriel, U. Goetsch, R. Gottschalk, S. Gunther, M. Hallek, D. Haussinger, C. Herzog, B. Jensen, F. Kolibay, M. Krakau, G. Langebartels, T. Rieger, L. Schaade, J. Schmidt-Chanasit, E. Schomig, G. Schuttfort, A. Shimabukuro-Vornhagen, M. von Bergwelt-Baildon, U. Wieland, G. Wiesmuller, T. Wolf, and G. Fatkenheuer, Control Measures Following a Case of Imported Lassa Fever from Togo, North Rhine Westphalia, Germany, 2016, Euro Surveill, 22 (2017). S. Leitherer, J. Clos, E. M. Liebler-Tenorio, U. Schleicher, C. Bogdan, and D. Soulat, Characterization of the Protein Tyrosine Phosphatase Lmprl-1 Secreted by Leishmania Major Via the Exosome Pathway, Infect Immun, 85 (2017). Leva, D. Eibach, R. Krumkamp, J. Kasmaier, D. Rubbenstroth, Y. Adu-Sarkodie, J. May, E. Tannich, and M. Panning, Diagnostic Performance of the Luminex Xtag Gastrointestinal Pathogens Panel to Detect Rotavirus in Ghanaian Children with and without Diarrhoea, Virol J, 13 (2016), 132. Y. Li, J. Hoffmann, F. Stephano, I. Bruchhaus, C. Fink, and T. Roeder, Octopamine Controls Starvation Resistance, Life Span and Metabolic Traits in Drosophila, Sci Rep, 6 (2016), Y. Li, L. Tiedemann, J. von Frieling, S. Nolte, S. El-Kholy, F. Stephano, C. Gelhaus, I. Bruchhaus, C. Fink, and T. Roeder, The Role of Monoaminergic Neurotransmission for Metabolic Control in the Fruit Fly Drosophila Melanogaster, Front Syst Neurosci, 11 (2017), 60. L. R. Lima, A. P. Silva, J. Schmidt-Chanasit, and V. S. Paula, Diagnosis of Human Herpes Virus 1 and 2 (Hhv-1 and Hhv-2): Use of a Synthetic Standard Curve for Absolute Quantification by Real Time Polymerase Chain Reaction, Mem Inst Oswaldo Cruz, 112 (2017), X. Liu, E. Speranza, C. Munoz-Fontela, S. Haldenby, N. Y. Rickett, I. Garcia-Dorival, Y. Fang, Y. Hall, E. G. Zekeng, A. Ludtke, D. Xia, R. Kerber, R. Krumkamp, S. Duraffour, D. Sissoko, J. Kenny, N. Rockliffe, E. D. Williamson, T. R. Laws, M. N Faly, D. A. Matthews, S. Gunther, A. R. Cossins, A. Sprecher, J. H. Connor, M. W. Carroll, and J. A. Hiscox, Transcriptomic Signatures Differentiate Survival from Fatal Outcomes in Humans Infected with Ebola Virus, Genome Biol, 18 (2017), 4. G. Lo Iacono, A. A. Cunningham, E. Fichet-Calvet, R. F. Garry, D. S. Grant, M. Leach, L. M. Moses, G. Nichols, J. S. Schieffelin, J. G. Shaffer, C. T. Webb, and J. L. Wood, A Unified Framework for the Infection Dynamics of Zoonotic Spillover and Spread, PLoS Negl Trop Dis, 10 (2016), e M. Ludlow, J. Kortekaas, C. Herden, B. Hoffmann, D. Tappe, C. Trebst, D. E. Griffin, H. E. Brindle, T. Solomon, A. S. Brown, D. van Riel, K. C. Wolthers, D. Pajkrt, P. Wohlsein, B. E. Martina, W. Baumgartner, G. M. Verjans, and A. D. Osterhaus, Neurotropic Virus Infections as the Cause of Immediate and Delayed Neuropathology, Acta Neuropathol, 131 (2016), A.Ludtke, P. Ruibal, B. Becker-Ziaja, M. Rottstegge, D. M. Wozniak, M. Cabeza- Cabrerizo, A. Thorenz, R. Weller, R. Kerber, J. Idoyaga, N. Magassouba, M. Gabriel, S. Gunther, L. Oestereich, and C. Munoz-Fontela, Ebola Virus Disease Is Characterized by Poor Activation and Reduced Levels of Circulating Cd16+ Monocytes, J Infect Dis, 214 (2016), S275-S80. A. Ludtke, P. Ruibal, D. M. Wozniak, E. Pallasch, S. Wurr, S. Bockholt, S. Gomez- Medina, X. Qiu, G. P. Kobinger, E. Rodriguez, S. Gunther, S. Krasemann, J. Idoyaga, L. Oestereich, and C. Munoz-Fontela, Ebola Virus Infection Kinetics in Chimeric Mice Reveal a Key Role of T Cells as Barriers for Virus Dissemination, Sci Rep, 7 (2017), R. Luhken, C. Czajka, S. Steinke, H. Jost, J. Schmidt-Chanasit, W. Pfitzner, N. Becker, E. Kiel, A. Kruger, and E. Tannich, Distribution of Individual Members of the Mosquito Anopheles Maculipennis Complex in Germany Identified by Newly Developed Real-Time Pcr Assays, Med Vet Entomol, 30 (2016), R. Luhken, J. M. Gethmann, P. Kranz, P. Steffenhagen, C. Staubach, F. J. Conraths, and E. Kiel, Comparison of Single- and Multi-Scale Models for the Prediction of the Culicoides Biting Midge Distribution in Germany, Geospat Health, 11 (2016), 405. R. Luhken, H. Jost, D. Cadar, S. M. Thomas, S. Bosch, E. Tannich, N. Becker, U. Ziegler, L. Lachmann, and J. Schmidt-Chanasit, Distribution of Usutu Virus in Germany and Its Effect on Breeding Bird Populations, Emerg Infect Dis, 23 (2017), C. Lundtoft, A. Afum-Adjei Awuah, J. Rimpler, K. Harling, N. Nausch, M. Kohns, E. Adankwah, F. Lang, L. Olbrich, E. Mayatepek, E. Owusu-Dabo, and M. Jacobsen, Aberrant Plasma IL-7 and Soluble IL-7 Receptor Levels Indicate Impaired T-Cell Response to IL-7 in Human Tuberculosis, PLoS Pathog, 13 (2017), e C. Lundtoft, A. A. Awuah, N. Nausch, A. Enimil, E. Mayatepek, E. Owusu-Dabo, and M. Jacobsen, Alternative Quantiferon Cytokines for Diagnosis of Children with Active Tuberculosis and Hiv Co-Infection in Ghana, Med Microbiol Immunol, 206 (2017), W. Maassen, D. Wiemer, C. Frey, C. Kreuzberg, E. Tannich, R. Hinz, A. Wille, A. Fritsch, R. M. Hagen, and H. Frickmann, Microbiological Screenings for Infection Control in Unaccompanied Minor Refugees: The German Armed Forces Medical Service s Experience, Mil Med Res, 4 (2017), 13. M. S. Mackroth, A. Abel, C. Steeg, J. Schulze Zur Wiesch, and T. Jacobs, Acute Malaria Induces Pd1+Ctla4+ Effector T Cells with Cell-Extrinsic Suppressor Function, PLoS Pathog, 12 (2016), e M. S. Mackroth, D. Tappe, E. Tannich, M. Addo, and C. Rothe, Rapid-Antigen Test Negative Malaria in a Traveler Returning from Thailand, Molecularly Diagnosed as Plasmodium Knowlesi, Open Forum Infect Dis, 3 (2016), ofw039. V. Madelain, J. Guedj, F. Mentre, T. H. Nguyen, F. Jacquot, L. Oestereich, T. Kadota, K. Yamada, A. M. Taburet, X. de Lamballerie, and H. Raoul, Favipiravir Pharmacokinetics in Nonhuman Primates and Insights for Future Efficacy Studies of Hemorrhagic Fever Viruses, Antimicrob Agents Chemother, 61 (2017), e O. Maiga-Ascofare, and J. May, Is the A578s Single-Nucleotide Polymorphism in K13-Propeller a Marker of Emerging Resistance to Artemisinin among Plasmodium Falciparum in Africa?, J Infect Dis, 213 (2016), J. Marien, B. Borremans, S. Gryseels, B. V. Broecke, B. Becker-Ziaja, R. Makundi, A. Massawe, J. Reijniers, and H. Leirs, Arenavirus Dynamics in Experimentally and Naturally Infected Rodents, Ecohealth, 14 (2017), J. Marien, B. Borremans, S. Gryseels, B. Soropogui, L. De Bruyn, G. N. Bongo, B. Becker- Ziaja, J. G. de Bellocq, S. Gunther, N. Magassouba, H. Leirs, and E. Fichet-Calvet, No Measurable Adverse Effects of Lassa, Morogoro and Gairo Arenaviruses on Their Rodent Reservoir Host in Natural Conditions, Parasit Vectors, 10 (2017), 210. F. Marks, V. von Kalckreuth, P. Aaby, Y. Adu-Sarkodie, M. A. El Tayeb, M. Ali, A. Aseffa, S. Baker, H. M. Biggs, M. Bjerregaard-Andersen, R. F. Breiman, J. I. Campbell, L. Cosmas, J. A. Crump, L. M. Espinoza, J. F. Deerin, D. M. Dekker, B. S. Fields, N. Gasmelseed, J. T. Hertz, N. Van Minh Hoang, J. Im, A., H. J. Jeon, L. P. Kabore, K. H. Keddy, F. Konings, R. Krumkamp, B. Ley, S. V. Lofberg, J. May, C. G. Meyer, E. D. Mintz, J. M. Montgomery, A. A. Niang, C. Nichols, B. Olack, G. D. Pak, U. Panzner, J. K. Park, S. E. Park, H. Rabezanahary, R. Rakotozandrindrainy, T. M. Raminosoa, T. J. Razafindrabe, E. Sampo, H. Schutt-Gerowitt, A. G. Sow, N. Sarpong, H. J. Seo, A. Sooka, A. B. Soura, A. Tall, M. Teferi, K. Thriemer, M. R. Warren, B. Yeshitela, J. D. Clemens, and T. F. Wierzba, Incidence of Invasive Salmonella Disease in Sub-Saharan Africa: A Multicentre Population-Based Surveillance Study, Lancet Glob Health, 5 (2017), e310-e23. K. A. Meeks, K. Stronks, A. Adeyemo, J. Addo, S. Bahendeka, E. Beune, E. Owusu-Dabo, I. Danquah, C. Galbete, P. Henneman, K. Klipstein-Grobusch, F. P. Mockenhaupt, K. Osei, M. B. Schulze, J. Spranger, L. Smeeth, and C. Agyemang, Peripheral Insulin Resistance Rather Than Beta Cell Dysfunction Accounts for Geographical Differences in Impaired Fasting Blood Glucose among Sub-Saharan African Individuals: Findings from the Rodam Study, Diabetologia, 60 (2017), P. Mesen-Ramirez, F. Reinsch, A. Blancke Soares, B. Bergmann, A. K. Ullrich, S. Tenzer, and T. Spielmann, Stable Translocation Intermediates Jam Global Protein Export in Plasmodium Falciparum Parasites and Link the Ptex Component Exp2 with Translocation Activity, PLoS Pathog, 12 (2016), e N. G. Metwally, A. K. Tilly, P. Lubiana, L. K. Roth, M. Dorpinghaus, S. Lorenzen, K. Schuldt, S. Witt, A. Bachmann, H. Tidow, T. Gutsmann, T. Burmester, T. Roeder, E. Tannich, and I. Bruchhaus, Characterisation of Plasmodium Falciparum Populations Selected on the Human Endothelial Receptors P-Selectin, E-Selectin, Cd9 and Cd151, Sci Rep, 7 (2017),

61 A. Neumayr, J. Munoz, M. Schunk, E. Bottieau, J. Cramer, G. Calleri, R. Lopez-Velez, A. Angheben, T. Zoller, L. Visser, N. Serre-Delcor, B. Genton, F. Castelli, M. Van Esbroeck, A. Matteelli, L. Rochat, E. Sulleiro, F. Kurth, F. Gobbi, F. Norman, I. Torta, J. Clerinx, D. Poluda, M. Martinez, A. Calvo-Cano, M. P. Sanchez-Seco, A. Wilder-Smith, C. Hatz, and L. Franco, Sentinel Surveillance of Imported Dengue Via Travellers to Europe 2012 to 2014: Tropnet Data from the Denguetools Research Initiative, Euro Surveill, 22 (2017). C. Nisii, D. Vincenti, F. M. Fusco, J. Schmidt-Chanasit, C. Carbonnelle, H. Raoul, M. Eickmann, R. Hewson, A. Brave, S. Nuncio, M. P. Sanchez-Seco, B. Palyi, Z. Kis, S. Zange, A. Nitsche, A. Kurth, M. Strasser, M. R. Capobianchi, A. Ozin, P. Guglielmetti, C. Menel-Lemos, D. Jacob, R. Grunow, G. Ippolito, and A. Di Caro, The Contribution of the European High Containment Laboratories During the Ebola Virus Disease Emergency, Clin Microbiol Infect, 23 (2017), J. Noll, E. Helk, H. Fehling, H. Bernin, C. Marggraff, T. Jacobs, S. Huber, P. Pelczar, T. Ernst, H. Ittrich, B. Otto, H. W. Mittrucker, C. Holscher, F. Tacke, I. Bruchhaus, E. Tannich, and H. Lotter, Il-23 Promotes Immunopathology and Prevents Il-13-Dependent Tissue Repair Associated with Ly6c Monocytes in Entamoeba Histolytica-Induced Liver Damage, J Hepatol, 64 (2016), L. Oestereich, A. Ludtke, P. Ruibal, E. Pallasch, R. Kerber, T. Rieger, S. Wurr, S. Bockholt, J. V. Perez-Giron, S. Krasemann, S. Gunther, and C. Munoz-Fontela, Chimeric Mice with Competent Hematopoietic Immunity Reproduce Key Features of Severe Lassa Fever, PLoS Pathog, 12 (2016), e L. Oestereich, T. Rieger, A. Ludtke, P. Ruibal, S. Wurr, E. Pallasch, S. Bockholt, S. Krasemann, C. Munoz-Fontela, and S. Gunther, Efficacy of Favipiravir Alone and in Combination with Ribavirin in a Lethal, Immunocompetent Mouse Model of Lassa Fever, J Infect Dis, 213 (2016), A. Olayemi, D. Cadar, N. Magassouba, A. Obadare, F. Kourouma, A. Oyeyiola, S. Fasogbon, J. Igbokwe, T. Rieger, S. Bockholt, H. Jerome, J. Schmidt-Chanasit, M. Garigliany, S. Lorenzen, F. Igbahenah, J. N. Fichet, D. Ortsega, S. Omilabu, S. Gunther, and E. Fichet-Calvet, New Hosts of the Lassa Virus, Sci Rep, 6 (2016), A. Olayemi, A. Obadare, A. Oyeyiola, J. Igbokwe, A. Fasogbon, F. Igbahenah, D. Ortsega, D. Asogun, P. Umeh, I. Vakkai, C. Abejegah, M. Pahlman, B. Becker-Ziaja, S. Gunther, and E. Fichet-Calvet, Arenavirus Diversity and Phylogeography of Mastomys Natalensis Rodents, Nigeria, Emerg Infect Dis, 22 (2016), A. Osterloh, Immune Response against Rickettsiae: Lessons from Murine Infection Models, Med Microbiol Immunol, 206 (2017), A. Osterloh, Immune Response against Rickettsiae: Lessons from Murine Infection Models, Med Microbiol Immunol, 206 (2017), A. Osterloh, S. Papp, K. Moderzynski, S. Kuehl, U. Richardt, and B. Fleischer, Persisting Rickettsia Typhi Causes Fatal Central Nervous System Inflammation, Infect Immun, 84 (2016), S. D. Otienoburu, O. Maiga-Ascofare, B. Schramm, V. Jullien, J. J. Jones, Y. M. Zolia, P. Houze, E. A. Ashley, J. R. Kiechel, P. J. Guerin, J. Le Bras, and S. Houze, Selection of Plasmodium Falciparum Pfcrt and Pfmdr1 Polymorphisms after Treatment with Artesunate-Amodiaquine Fixed Dose Combination or Artemether-Lumefantrine in Liberia, Malar J, 15 (2016), 452. M. Owusu, E. Owusu-Dabo, G. Acheampong, I. Osei, J. Amuasi, N. Sarpong, A. Annan, H. Y. Chiang, C. H. Kuo, S. E. Park, F. Marks, and Y. Adu-Sarkodie, Pseudomonas Oryzihabitans Sepsis in a 1-Year-Old Child with Multiple Skin Rashes: A Case Report, J Med Case Rep, 11 (2017), 77. E. Owusu-Dabo, and NCD Risk Factor Collaboration members... Worldwide Trends in Body-Mass Index, Underweight, Overweight, and Obesity from 1975 to 2016: A Pooled Analysis of 2416 Population-Based Measurement Studies in Million Children, Adolescents, and Adults, Lancet 390 (2017), S. Papp, K. Moderzynski, J. Rauch, L. Heine, S. Kuehl, U. Richardt, H. Mueller, B. Fleischer, and A. Osterloh, Liver Necrosis and Lethal Systemic Inflammation in a Murine Model of Rickettsia Typhi Infection: Role of Neutrophils, Macrophages and Nk Cells, PLoS Negl Trop Dis, 10 (2016), e S. Papp, J. Rauch, S. Kuehl, U. Richardt, C. Keller, and A. Osterloh, Comparative Evaluation of Two Rickettsia Typhi-Specific Quantitative Real-Time Pcrs for Research and Diagnostic Purposes, Med Microbiol Immunol, 206 (2017), S. E. Park, G. D. Pak, P. Aaby, Y. Adu-Sarkodie, M. Ali, A. Aseffa, H. M. Biggs, M. Bjerregaard-Andersen, R. F. Breiman, J. A. Crump, L. M. Cruz Espinoza, M. A. Eltayeb, N. Gasmelseed, J. T. Hertz, J. Im, A. Jaeger, L. Parfait Kabore, V. von Kalckreuth, K. H. Keddy, F. Konings, R. Krumkamp, C. A. MacLennan, C. G. Meyer, J. M. Montgomery, A. Ahmet Niang, C. Nichols, B. Olack, U. Panzner, J. K. Park, H. Rabezanahary, R. Rakotozandrindrainy, E. Sampo, N. Sarpong, H. Schutt-Gerowitt, A. Sooka, A. B. Soura, A. G. Sow, A. Tall, M. Teferi, B. Yeshitela, J. May, T. F. Wierzba, J. D. Clemens, S. Baker, and F. Marks, The Relationship between Invasive Nontyphoidal Salmonella Disease, Other Bacterial Bloodstream Infections, and Malaria in Sub-Saharan Africa, Clin Infect Dis, 62 Suppl 1 (2016), S S. Poppert, M. Heideking, H. Agostini, M. Fritzenwanker, N. Wuppenhorst, B. Muntau, P. Henneke, W. Kern, J. Krucken, B. Junker, and M. Hufnagel, Diffuse Unilateral Subacute Neuroretinitis Caused by Ancylostoma Hookworm, Emerg Infect Dis, 23 (2017), D. Pothmann, S. Poppert, R. Rakotozandrindrainy, B. Hogan, M. Mastropaolo, C. Thiel, and C. Silaghi, Prevalence and Genetic Characterization of Anaplasma Marginale in Zebu Cattle (Bos Indicus) and Their Ticks (Amblyomma Variegatum, Rhipicephalus Microplus) from Madagascar, Ticks Tick Borne Dis, 7 (2016), B. Prinz, K. L. Harvey, L. Wilcke, U. Ruch, K. Engelberg, L. Biller, I. Lucet, S. Erkelenz, D. Heincke, T. Spielmann, C. Doerig, C. Kunick, B. S. Crabb, P. R. Gilson, and T. W. Gilberger, Hierarchical Phosphorylation of Apical Membrane Antigen 1 Is Required for Efficient Red Blood Cell Invasion by Malaria Parasites, Sci Rep, 6 (2016), J. Quick, N. J. Loman, S. Duraffour, J. T. Simpson, E. Severi, L. Cowley, J. A. Bore, R. Koundouno, G. Dudas, A. Mikhail, N. Ouedraogo, B. Afrough, A. Bah, J. H. Baum, B. Becker-Ziaja, J. P. Boettcher, M. Cabeza-Cabrerizo, A. Camino-Sanchez, L. L. Carter, J. Doerrbecker, T. Enkirch, I. Garcia-Dorival, N. Hetzelt, J. Hinzmann, T. Holm, L. E. Kafetzopoulou, M. Koropogui, A. Kosgey, E. Kuisma, C. H. Logue, A. Mazzarelli, S. Meisel, M. Mertens, J. Michel, D. Ngabo, K. Nitzsche, E. Pallasch, L. V. Patrono, J. Portmann, J. G. Repits, N. Y. Rickett, A. Sachse, K. Singethan, I. Vitoriano, R. L. Yemanaberhan, E. G. Zekeng, T. Racine, A. Bello, A. A. Sall, O. Faye, N. Magassouba, C. V. Williams, V. Amburgey, L. Winona, E. Davis, J. Gerlach, F. Washington, V. Monteil, M. Jourdain, M. Bererd, A. Camara, H. Somlare, M. Gerard, G. Bado, B. Baillet, D. Delaune, K. Y. Nebie, A. Diarra, Y. Savane, R. B. Pallawo, G. J. Gutierrez, N. Milhano, I. Roger, C. J. Williams, F. Yattara, K. Lewandowski, J. Taylor, P. Rachwal, D. J. Turner, G. Pollakis, J. A. Hiscox, D. A. Matthews, M. K. O Shea, A. M. Johnston, D. Wilson, E. Hutley, E. Smit, A. Di Caro, R. Wolfel, K. Stoecker, E. Fleischmann, M. Gabriel, S. A. Weller, L. Koivogui, B. Diallo, S. Keita, A. Rambaut, P. Formenty, S. Gunther, and M. W. Carroll, Real-Time, Portable Genome Sequencing for Ebola Surveillance, Nature, 530 (2016), J. Reguera, P. Gerlach, M. Rosenthal, S. Gaudon, F. Coscia, S. Gunther, and S. Cusack, Comparative Structural and Functional Analysis of Bunyavirus and Arenavirus Cap- Snatching Endonucleases, PLoS Pathog, 12 (2016), e M. Reitz, M. L. Brunn, H. R. Rodewald, T. B. Feyerabend, A. Roers, A. Dudeck, D. Voehringer, F. Jonsson, A. A. Kuhl, and M. Breloer, Mucosal Mast Cells Are Indispensable for the Timely Termination of Strongyloides Ratti Infection, Mucosal Immunol, 10 (2017), T. Rieger, R. Kerber, H. El Halas, E. Pallasch, S. Duraffour, S. Gunther, and S. Olschlager, Evaluation of Realstar Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction Kits for Filovirus Detection in the Laboratory and Field, J Infect Dis, 214 (2016), S243-S49. A. Rockstroh, B. Moges, L. Barzon, A. Sinigaglia, G. Palu, W. Kumbukgolla, J. Schmidt- Chanasit, M. Sarno, C. Brites, A. Moreira-Soto, J. F. Drexler, O. C. Ferreira, and S. Ulbert, Specific Detection of Dengue and Zika Virus Antibodies Using Envelope Proteins with Mutations in the Conserved Fusion Loop, Emerg Microbes Infect, 6 (2017), e99. L. Roggelin, D. Tappe, B. Noack, M. M. Addo, E. Tannich, and C. Rothe, Sharp Increase of Imported Plasmodium Vivax Malaria Seen in Migrants from Eritrea in Hamburg, Germany, Malar J, 15 (2016), 325. T. Rolling, M. Muhlenpfordt, M. M. Addo, J. P. Cramer, and C. D. Vinnemeier, Pre-Travel Advice at a Crossroad: Medical Preparedness of Travellers to South and Southeast-Asia - the Hamburg Airport Survey, Travel Med Infect Dis, 18 (2017), B. Ronnberg, A. Gustafsson, O. Vapalahti, P. Emmerich, A. Lundkvist, J. Schmidt- Chanasit, and J. Blomberg, Compensating for Cross-Reactions Using Avidity and Computation in a Suspension Multiplex Immunoassay for Serotyping of Zika Versus Other Flavivirus Infections, Med Microbiol Immunol, 206 (2017), M. Rosenthal, N. Gogrefe, D. Vogel, J. Reguera, B. Rauschenberger, S. Cusack, S. Gunther, and S. Reindl, Structural Insights into Reptarenavirus Cap-Snatching Machinery, PLoS Pathog, 13 (2017), e L. Rozsa, P. Apari, M. Sulyok, D. Tappe, I. Bodo, R. Hardi, and V. Muller, The Evolutionary Logic of Sepsis, Infect Genet Evol, 55 (2017), P. Ruibal*, L. Oestereich*, A. Ludtke*, B. Becker-Ziaja*, D. M. Wozniak, R. Kerber, M. Korva, M. Cabeza-Cabrerizo, J. A. Bore, F. R. Koundouno, S. Duraffour, R. Weller, A. Thorenz, E. Cimini, D. Viola, C. Agrati, J. Repits, B. Afrough, L. A. Cowley, D. Ngabo, J. Hinzmann, M. Mertens, I. Vitoriano, C. H. Logue, J. P. Boettcher, E. Pallasch, A. Sachse, A. Bah, K. Nitzsche, E. Kuisma, J. Michel, T. Holm, E. G. Zekeng, I. Garcia-Dorival, R. Wolfel, K. Stoecker, E. Fleischmann, T. Strecker, A. Di Caro, T. Avsic-Zupanc, A. Kurth, S. Meschi, S. Mely, E. Newman, A. Bocquin, Z. Kis, A. Kelterbaum, P. Molkenthin, F. Carletti, J. Portmann, S. Wolff, C. Castilletti, G. Schudt, A. Fizet, L. J. Ottowell, E. Herker, T. Jacobs, B. Kretschmer, E. Severi, N. Ouedraogo, M. Lago, A. Negredo, L. Franco, P. Anda, S. Schmiedel, B. Kreuels, D. Wichmann, M. M. Addo, A. W. Lohse, H. De Clerck, C. Nanclares, S. Jonckheere, M. Van Herp, A. Sprecher, G. Xiaojiang, M. Carrington, O. Miranda, C. M. Castro, M. Gabriel, P. Drury, P. Formenty, B. Diallo, L. Koivogui, N. Magassouba, M. W. Carroll, S. Gunther**, C. Munoz-Fontela**, *contributed equally, and **jointly supervised this work, Unique Human Immune Signature of Ebola Virus Disease in Guinea, Nature, 533 (2016), C. G. Meyer, C. D. Intemann, B. Forster, E. Owusu-Dabo, A. Franke, R. D. Horstmann, and T. Thye, No Significant Impact of Ifn-Gamma Pathway Gene Variants on Tuberculosis Susceptibility in a West African Population, Eur J Hum Genet, 24 (2016), C. G. Meyer, N. Reiling, C. Ehmen, G. Ruge, E. Owusu-Dabo, R. D. Horstmann, and T. Thye, Tlr1 Variant H305l Associated with Protection from Pulmonary Tuberculosis, PLoS ONE, 11 (2016), e M. Meyer, H. Fehling, J. Matthiesen, S. Lorenzen, K. Schuldt, H. Bernin, M. Zaruba, C. Lender, T. Ernst, H. Ittrich, T. Roeder, E. Tannich, H. Lotter, and I. Bruchhaus, Overexpression of Differentially Expressed Genes Identified in Non-Pathogenic and Pathogenic Entamoeba Histolytica Clones Allow Identification of New Pathogenicity Factors Involved in Amoebic Liver Abscess Formation, PLoS Pathog, 12 (2016), e K. Moderzynski, L. Heine, J. Rauch, S. Papp, S. Kuehl, U. Richardt, B. Fleischer, and A. Osterloh, Cytotoxic Effector Functions of T Cells Are Not Required for Protective Immunity against Fatal Rickettsia Typhi Infection in a Murine Model of Infection: Role of Th1 and Th17 Cytokines in Protection and Pathology, PLoS Negl Trop Dis, 11 (2017), e K. Moderzynski, S. Papp, J. Rauch, L. Heine, S. Kuehl, U. Richardt, B. Fleischer, and A. Osterloh, Cd4+ T Cells Are as Protective as Cd8+ T Cells against Rickettsia Typhi Infection by Activating Macrophage Bactericidal Activity, PLoS Negl Trop Dis, 10 (2016), e M. Mohammadian, S. Chinikar, Z. Telmadarraiy, H. Vatandoost, M. A. Oshaghi, A. A. Hanafi-Bojd, M. M. Sedaghat, M. Noroozi, F. Faghihi, T. Jalali, S. Khakifirouz, N. Shahhosseini, and F. Farhadpour, Molecular Assay on Crimean Congo Hemorrhagic Fever Virus in Ticks (Ixodidae) Collected from Kermanshah Province, Western Iran, J Arthropod Borne Dis, 10 (2016), S. Mueller-Using, T. Feldt, F. S. Sarfo, and K. A. Eberhardt, Factors Associated with Performing Tuberculosis Screening of Hiv-Positive Patients in Ghana: Lasso-Based Predictor Selection in a Large Public Health Data Set, BMC Public Health, 16 (2016), 563. N. J. Mulder, E. Adebiyi, R. Alami, A. Benkahla, J. Brandful, S. Doumbia, D. Everett, F. M. Fadlelmola, F. Gaboun, S. Gaseitsiwe, H. Ghazal, S. Hazelhurst, W. Hide, A. Ibrahimi, Y. Jaufeerally Fakim, C. V. Jongeneel, F. Joubert, S. Kassim, J. Kayondo, J. Kumuthini, S. Lyantagaye, J. Makani, A. Mansour Alzohairy, D. Masiga, A. Moussa, O. Nash, O. Ouwe Missi Oukem-Boyer, E. Owusu-Dabo, S. Panji, H. Patterton, F. Radouani, K. Sadki, F. Seghrouchni, O. Tastan Bishop, N. Tiffin, and N. Ulenga, H3abionet, a Sustainable Pan-African Bioinformatics Network for Human Heredity and Health in Africa, Genome Res, 26 (2016), J. A. Muller, M. Harms, A. Schubert, S. Jansen, D. Michel, T. Mertens, J. Schmidt- Chanasit, and J. Munch, Inactivation and Environmental Stability of Zika Virus, Emerg Infect Dis, 22 (2016), J. A. Muller, M. Harms, A. Schubert, B. Mayer, S. Jansen, J. P. Herbeuval, D. Michel, T. Mertens, O. Vapalahti, J. Schmidt-Chanasit, and J. Munch, Development of a High- Throughput Colorimetric Zika Virus Infection Assay, Med Microbiol Immunol, 206 (2017), M. A. Muller, S. Devignot, E. Lattwein, V. M. Corman, G. D. Maganga, F. Gloza-Rausch, T. Binger, P. Vallo, P. Emmerich, V. M. Cottontail, M. Tschapka, S. Oppong, J. F. Drexler, F. Weber, E. M. Leroy, and C. Drosten, Evidence for Widespread Infection of African Bats with Crimean-Congo Hemorrhagic Fever-Like Viruses, Sci Rep, 6 (2016), B. Naissant, F. Dupuy, Y. Duffier, A. Lorthiois, J. Duez, J. Scholz, P. Buffet, A. Merckx, A. Bachmann, and C. Lavazec, Plasmodium Falciparum Stevor Phosphorylation Regulates Host Erythrocyte Deformability Enabling Malaria Parasite Transmission, Blood, 127 (2016), e N. Nausch, D. Antwi-Berko, Y. Mubarik, K. M. Abass, W. Owusu, E. Owusu-Dabo, L. B. Debrah, A. Y. Debrah, M. Jacobsen, and R. O. Phillips, Analysis of Mycobacterium Ulcerans-Specific T-Cell Cytokines for Diagnosis of Buruli Ulcer Disease and as Potential Indicator for Disease Progression, PLoS Negl Trop Dis, 11 (2017), e NCD Risk Factor Collaboration members..., E. Owusu-Dabo, Worldwide Trends in Diabetes since 1980: A Pooled Analysis of 751 Population-Based Studies with 4.4 Million Participants., Lancet, 387(10027) (2016), A. Negredo, F. de la Calle-Prieto, E. Palencia-Herrejon, M. Mora-Rillo, J. Astray-Mochales, M. P. Sanchez-Seco, E. Bermejo Lopez, J. Menarguez, A. Fernandez-Cruz, B. Sanchez- Artola, E. Keough-Delgado, E. Ramirez de Arellano, F. Lasala, J. Milla, J. L. Fraile, M. Ordobas Gavin, A. Martinez de la Gandara, L. Lopez Perez, D. Diaz-Diaz, M. A. Lopez- Garcia, P. Delgado-Jimenez, A. Martin-Quiros, E. Trigo, J. C. Figueira, J. Manzanares, E. Rodriguez-Baena, L. Garcia-Comas, O. Rodriguez-Fraga, N. Garcia-Arenzana, M. V. Fernandez-Diaz, V. M. Cornejo, P. Emmerich, J. Schmidt-Chanasit, and J. R. Arribas, Autochthonous Crimean-Congo Hemorrhagic Fever in Spain, N Engl J Med, 377 (2017), G. G. Rutledge, U. Bohme, M. Sanders, A. J. Reid, J. A. Cotton, O. Maiga-Ascofare, A. A. Djimde, T. O. Apinjoh, L. Amenga-Etego, M. Manske, J. W. Barnwell, F. Renaud, B. Ollomo, F. Prugnolle, N. M. Anstey, S. Auburn, R. N. Price, J. S. McCarthy, D. P. Kwiatkowski, C. I. Newbold, M. Berriman, and T. D. Otto, Plasmodium Malariae and P. Ovale Genomes Provide Insights into Malaria Parasite Evolution, Nature, 542 (2017), H. J. F. Salzer, T. Rolling, C. D. Vinnemeier, E. Tannich, S. Schmiedel, M. M. Addo, and J. P. Cramer, Helminthic Infections in Returning Travelers and Migrants with Eosinophilia: Diagnostic Value of Medical History, Eosinophil Count and Ige, Travel Med Infect Dis, 20 (2017), F. Sarkodie, O. Hassall, E. Owusu-Dabo, S. Owusu-Ofori, I. Bates, I. C. Bygbjerg, J. K. Ansah, and H. Ullum, Syphilis Screening Practices in Blood Transfusion Facilities in Ghana, Int J Infect Dis, 43 (2016), F. Sarkodie, O. Hassall, E. Owusu-Dabo, S. Owusu-Ofori, I. Bates, I. C. Bygbjerg, A. Owusu-Ofori, L. H. Harritshoj, and H. Ullum, Improving the Screening of Blood Donors with Syphilis Rapid Diagnostic Test (Rdt) and Rapid Plasma Reagin (Rpr) in Low- and Middle-Income Countries (Lmic), Transfus Med, 27 (2017), F. Sarkodie, E. Owusu-Dabo, O. Hassall, I. Bates, I. C. Bygbjerg, and H. Ullum, Recall of Symptoms and Treatment of Syphilis and Yaws by Healthy Blood Donors Screening Positive for Syphilis in Kumasi, Ghana, Int J Infect Dis, 50 (2016), F. Sarkodie, H. Ullum, E. Owusu-Dabo, S. Owusu-Ofori, A. Owusu-Ofori, and O. Hassall, A Novel Strategy for Screening Blood Donors for Syphilis at Komfo Anokye Teaching Hospital, Ghana, Transfus Med, 26 (2016), K. Schlottau, M. Jenckel, J. van den Brand, C. Fast, C. Herden, D. Hoper, T. Homeier- Bachmann, J. Thielebein, N. Mensing, B. Diender, D. Hoffmann, R. G. Ulrich, T. C. Mettenleiter, M. Koopmans, D. Tappe, J. Schmidt-Chanasit, C. B. Reusken, M. Beer, and B. Hoffmann, Variegated Squirrel Bornavirus 1 in Squirrels, Germany and the Netherlands, Emerg Infect Dis, 23 (2017), S. A. Schneider, C. Scharffetter, A. E. Wagner, C. Boesch, I. Bruchhaus, G. Rimbach, and T. Roeder, Social Stress Increases the Susceptibility to Infection in the Ant Harpegnathos Saltator, Sci Rep, 6 (2016), K. Schuldt, C. Ehmen, J. Sievertsen, J. Evans, J. May, D. Ansong, B. Muntau, G. Ruge, C. Timmann, T. Agbenyega, R. D. Horstmann, and T. Thye, Lack of Association of Cd55 Receptor Genetic Variants and Severe Malaria in Ghanaian Children, G3 (Bethesda), 7 (2017), D. Schuster, J. Rickmeyer, M. Gajdiss, T. Thye, S. Lorenzen, M. Reif, M. Josten, C. Szekat, L. D. Melo, R. M. Schmithausen, F. Liegeois, H. G. Sahl, J. J. Gonzalez, M. Nagel, and G. Bierbaum, Differentiation of Staphylococcus argenteus (Formerly: Staphylococcus Aureus Clonal Complex 75) by Mass Spectrometry from S. aureus Using the First Strain Isolated from a Wild African Great Ape, Int J Med Microbiol, 307 (2017), M. Schwameis, T. Kundig, G. Huber, L. von Bidder, L. Meinel, R. Weisser, E. Aberer, G. Harter, T. Weinke, T. Jelinek, G. Fatkenheuer, U. Wollina, G. D. Burchard, R. Aschoff, R. Nischik, G. Sattler, G. Popp, W. Lotte, D. Wiechert, G. Eder, O. Maus, P. Staubach-Renz, A. Grafe, V. Geigenberger, I. Naudts, M. Sebastian, N. Reider, R. Weber, M. Heckmann, E. C. Reisinger, G. Klein, J. Wantzen, and B. Jilma, Topical Azithromycin for the Prevention of Lyme Borreliosis: A Randomised, Placebo-Controlled, Phase 3 Efficacy Trial, Lancet Infect Dis, 17 (2017), N. G. Schwarz, U. Loderstaedt, A. Hahn, R. Hinz, A. E. Zautner, D. Eibach, M. Fischer, R. M. Hagen, and H. Frickmann, Microbiological Laboratory Diagnostics of Neglected Zoonotic Diseases (Nzds), Acta Trop, 165 (2017), N. G. Schwarz, E. Mertens, D. Winter, O. Maiga-Ascofare, D. Dekker, S. Jansen, D. Tappe, N. Randriamampionona, J. May, R. Rakotozandrindrainy, and J. Schmidt- Chanasit, No Serological Evidence for Zika Virus Infection and Low Specificity for Anti-Zika Virus Elisa in Malaria Positive Individuals among Pregnant Women from Madagascar in 2010, PLoS ONE, 12 (2017), e J. Sellau, C. F. Alvarado, S. Hoenow, M. S. Mackroth, D. Kleinschmidt, S. Huber, and T. Jacobs, IL-22 Dampens the T Cell Response in Experimental Malaria, Sci Rep, 6 (2016), N. Shahhosseini, and S. Chinikar, Genetic Evidence for Circulation of Kunjin-Related West Nile Virus Strain in Iran, J Vector Borne Dis, 53 (2016), N. Shahhosseini, S. Chinikar, E. Shams, N. Nowotny, and A. R. Fooks, Crimean-Congo Hemorrhagic Fever Cases in the North of Iran Have Three Distinct Origins, Virusdisease, 28 (2017), N. Shahhosseini, R. Luhken, H. Jost, S. Jansen, J. Borstler, T. Rieger, A. Kruger, A. Yadouleton, R. de Mendonca Campos, C. C. Cirne-Santos, D. F. Ferreira, R. Garms, N. Becker, E. Tannich, D. Cadar, and J. Schmidt-Chanasit, Detection and Characterization of a Novel Rhabdovirus in Aedes Cantans Mosquitoes and Evidence for a Mosquito- Associated New Genus in the Family Rhabdoviridae, Infect Genet Evol, 55 (2017), N. Shahhosseini, S. Chinikar, S. H. Moosa-Kazemi, M. M. Sedaghat, M. H. Kayedi, R. Luhken, and J. Schmidt-Chanasit, West Nile Virus Lineage-2 in Culex Specimens from Iran, Trop Med Int Health 22 (2017), K. Sherifi, A. Rexhepi, A. Robaj, A. Hamidi, B. Behluli, A. Musliu, and P. Emmerich, A Survey of Crimean-Congo Hemorrhagic Fever in Lifestock, Republic of Kosova, Kafkas Universitesi Veteriner Fakultesi Dergisi, 22 (2016), S. Shihada, P. Emmerich, C. Thome-Bolduan, S. Jansen, S. Gunther, C. Frank, J. Schmidt-Chanasit, and D. Cadar, Genetic Diversity and New Lineages of Dengue Virus Serotypes 3 and 4 in Returning Travelers, Germany, , Emerg Infect Dis, 23 (2017), D. Sissoko, M. Keita, B. Diallo, N. Aliabadi, D. L. Fitter, B. A. Dahl, J. Akoi Bore, F. Raymond Koundouno, K. Singethan, S. Meisel, T. Enkirch, A. Mazzarelli, V. Amburgey, O. Faye, A. Alpha Sall, N. Magassouba, M. W. Carroll, X. Anglaret, D. Malvy, P. Formenty, R. Bruce Aylward, S. Keita, M. Harouna Djingarey, N. J. Loman, S. Gunther, and S. Duraffour, Ebola Virus Persistence in Breast Milk after No Reported Illness: A Likely Source of Virus Transmission from Mother to Child, Clin Infect Dis, 64 (2017), D. Sissoko, C. Laouenan, E. Folkesson, A. B. M Lebing, A. H. Beavogui, S. Baize, A. M. Camara, P. Maes, S. Shepherd, C. Danel, S. Carazo, M. N. Conde, J. L. Gala, G. Colin, H. Savini, J. A. Bore, F. Le Marcis, F. R. Koundouno, F. Petitjean, M. C. Lamah, S. Diederich, A. Tounkara, G. Poelart, E. Berbain, J. M. Dindart, S. Duraffour, A. Lefevre, T. Leno, O. Peyrouset, L. Irenge, N. Bangoura, R. Palich, J. Hinzmann, A. Kraus, T. S. Barry, S. Berette, A. Bongono, M. S. Camara, V. Chanfreau Munoz, L. Doumbouya, Harouna Souley, P. M. Kighoma, Lolamou Rene, C. M. Loua, V. Massala, K. Moumouni, C. Provost, N. Samake, C. Sekou, A. Soumah, I. Arnould, M. S. Komano, L. Gustin, C. Berutto, D. Camara, F. S. Camara, J. Colpaert, L. Delamou, L. Jansson, E. Kourouma, M. Loua, K. Malme, E. Manfrin, A. Maomou, A. Milinouno, S. Ombelet, A. Y. Sidiboun, I. Verreckt, P. Yombouno, A. Bocquin, C. Carbonnelle, T. Carmoi, P. Frange, S. Mely, V. K. Nguyen, D. Pannetier, A. M. Taburet, J. M. Treluyer, J. Kolie, R. Moh, M. C. Gonzalez, E. Kuisma, B. Liedigk, D. Ngabo, M. Rudolf, R. Thom, R. Kerber, M. Gabriel, A. Di Caro, R. Wolfel, J. Badir, M. Bentahir, Y. Deccache, C. Dumont, J. F. Durant, K. El Bakkouri, M. Gasasira Uwamahoro, B. Smits, N. Toufik, S. Van Cauwenberghe, K. Ezzedine, E. Dortenzio, L. Pizarro, A. Etienne, J. Guedj, A. Fizet, E. Barte de Sainte Fare, B. Murgue, T. Tran-Minh, C. Rapp, P. Piguet, M. Poncin, B. Draguez, T. Allaford Duverger, S. Barbe, G. Baret, I. Defourny, M. Carroll, H. Raoul, A. Augier, S. P. Eholie, Y. Yazdanpanah, C. Levy-Marchal, A. Antierrens, M. Van Herp, S. Gunther, X. de Lamballerie, S. Keita, F. Mentre, X. Anglaret, and D. Malvy, Experimental Treatment with Favipiravir for Ebola Virus Disease (the Jiki Trial): A Historically Controlled, Single-Arm Proof-of-Concept Trial in Guinea, PLoS Med, 13 (2016), e D. Sissoko*, S. Duraffour*, R. Kerber*, J. S. Kolie, A. H. Beavogui, A. M. Camara, G. Colin, T. Rieger, L. Oestereich, B. Palyi, S. Wurr, J. Guedj, T. H. Nguyen, R. M. Eggo, C. H. Watson, W. J. Edmunds, J. A. Bore, F. R. Koundouno, M. Cabeza-Cabrerizo, L. L. Carter, L. E. Kafetzopoulou, E. Kuisma, J. Michel, L. V. Patrono, N. Y. Rickett, K. Singethan, M. Rudolf, A. Lander, E. Pallasch, S. Bockholt, E. Rodriguez, A. Di Caro, R. Wolfel, M. Gabriel, C. Gurry, P. Formenty, S. Keita, D. Malvy**, M. W. Carroll**, X. Anglaret**, S. Gunther**, *contributed equally, and **contributed equally, Persistence and Clearance of Ebola Virus Rna from Seminal Fluid of Ebola Virus Disease Survivors: A Longitudinal Analysis and Modelling Study, Lancet Glob Health, 5 (2017), e80-e88. G. Slesak, M. Gabriel, C. Domingo, and J. Schafer, [Severe Yellow Fever Vaccine- Associated Disease: A Case Report and Current Overview], Dtsch Med Wochenschr, 142 (2017), P. Sondo, K. Derra, S. Diallo Nakanabo, Z. Tarnagda, A. Kazienga, O. Zampa, I. Valea, H. Sorgho, E. Owusu-Dabo, J. B. Ouedraogo, T. R. Guiguemde, and H. Tinto, Artesunate- Amodiaquine and Artemether-Lumefantrine Therapies and Selection of Pfcrt and Pfmdr1 Alleles in Nanoro, Burkina Faso, PLoS ONE, 11 (2016), e P. Sothmann, C. Keller, R. Krumkamp, B. Kreuels, C. Aldrich, N. Sarpong, S. Steierberg, D. Winter, K. G. Boahen, E. Owusu-Dabo, J. May, and D. Eibach, Rickettsia Felis Infection in Febrile Children, Ghana, Am J Trop Med Hyg, 96 (2017), G. F. Spath, and J. Clos, Joining Forces: First Application of a Rapamycin-Induced Dimerizable Cre System (Dicre) for Conditional Null Mutant Analysis in Leishmania, Mol Microbiol, 100 (2016), K. Steinhagen, C. Probst, C. Radzimski, J. Schmidt-Chanasit, P. Emmerich, M. Van Esbroeck, J. Schinkel, M. P. Grobusch, A. Goorhuis, J. M. Warnecke, E. Lattwein, L. Komorowski, A. Deerberg, S. Saschenbrecker, W. Stöcker, and W. Schlumberger, Serodiagnosis of Zika Virus (Zikv) Infections by a Novel Ns1-Based Elisa Devoid of Crossreactivity with Dengue Virus Antibodies: A Multicohort Study of Assay Performance, 2015 to 2016, Euro Surveill, 21 (2016), S. Steinke, R. Luhken, C. Balczun, and E. Kiel, Emergence of Culicoides Obsoletus Group Species from Farm-Associated Habitats in Germany, Med Vet Entomol, 30 (2016), S. Steinke, R. Luhken, and E. Kiel, Impact of Experimental Flooding on Larvae and Pupae of Dung-Breeding Culicoides, Parasitol Res, 115 (2016), S. Steinke, R. Luhken, F. Kroischke, E. Timmermann, and E. Kiel, Comparison of Emergence Traps of Different Shape and Translucency in the Trapping of Culicoides (Diptera: Ceratopogonidae), Vet Parasitol, 223 (2016), T. Sulesco, T. Volkova, S. Yashkova, A. Tomazatos, H. von Thien, R. Luhken, and E. Tannich, Detection of Dirofilaria Repens and Dirofilaria Immitis DNA in Mosquitoes from Belarus, Parasitol Res, 115 (2016), T. Sulesco, H. von Thien, L. Toderas, I. Toderas, R. Luhken, and E. Tannich, Circulation of Dirofilaria Repens and Dirofilaria Immitis in Moldova, Parasit Vectors, 9 (2016), 627. A. Sylverken, E. Owusu-Dabo, D. D. Yar, S. P. Salifu, N. Y. Awua-Boateng, J. H. Amuasi, P. B. Okyere, and T. Agyarko-Poku, Bacterial Etiology of Sexually Transmitted Infections at a Sti Clinic in Ghana; Use of Multiplex Real Time Pcr, Ghana Med J, 50 (2016), E. Tannich, Dirofilariasis - a New Emerging Vector-Borne Zoonosis in Germany, Nova Acta Leopoldina, 411 (2017), D. Tappe, J. Berkholz, U. Mahlke, H. Lobeck, T. Nagel, A. Haeupler, B. Muntau, P. Racz, and S. Poppert, Molecular Identification of Zoonotic Tissue-Invasive Tapeworm Larvae Other Than Taenia Solium in Suspected Human Cysticercosis Cases, J Clin Microbiol, 54 (2016), D. Tappe, J. V. Perez-Giron, S. Gomez-Medina, S. Gunther, C. Munoz-Fontela, and J. Schmidt-Chanasit, Increased Proinflammatory Cytokine Levels in Prolonged Arthralgia in Ross River Virus Infection, Emerg Infect Dis, 23 (2017), D. Tappe, J. V. Perez-Giron, G. Just-Nubling, G. Schuster, S. Gomez-Medina, S. Gunther, C. Munoz-Fontela, and J. Schmidt-Chanasit, Sustained Elevated Cytokine Levels During Recovery Phase of Mayaro Virus Infection, Emerg Infect Dis, 22 (2016), D. Tappe, J. V. Perez-Giron, L. Zammarchi, J. Rissland, D. F. Ferreira, T. Jaenisch, S. Gomez-Medina, S. Gunther, A. Bartoloni, C. Munoz-Fontela, and J. Schmidt-Chanasit, Cytokine Kinetics of Zika Virus-Infected Patients from Acute to Reconvalescent Phase, Med Microbiol Immunol, 205 (2016), D. Tappe, M. Sulyok, T. Riu, L. Rozsa, I. Bodo, C. Schoen, B. Muntau, G. Babocsay, and R. Hardi, Co-Infections in Visceral Pentastomiasis, Democratic Republic of the Congo, Emerg Infect Dis, 22 (2016), P. Tavakolipoor, J. Schmidt-Chanasit, G. D. Burchard, and S. Jordan, Clinical Features and Laboratory Findings of Dengue Fever in German Travellers: A Single-Centre, Retrospective Analysis, Travel Med Infect Dis, 14 (2016), P. Tejera Nevado, E. Bifeld, K. Hohn, and J. Clos, A Telomeric Cluster of Antimony Resistance Genes on Chromosome 34 of Leishmania Infantum, Antimicrob Agents Chemother, 60 (2016), W. Theess, J. Sellau, C. Steeg, A. Klinke, S. Baldus, J. P. Cramer, and T. Jacobs, Myeloperoxidase Attenuates Pathogen Clearance During Plasmodium Yoelii Nonlethal Infection, Infect Immun, 85 (2017), e J. Tomas-Roig, F. Piscitelli, V. Gil, J. A. Del Rio, T. P. Moore, H. Agbemenyah, G. Salinas- Riester, C. Pommerenke, S. Lorenzen, T. Beissbarth, S. Hoyer-Fender, V. Di Marzo, and U. Havemann-Reinecke, Social Defeat Leads to Changes in the Endocannabinoid System: An Overexpression of Calreticulin and Motor Impairment in Mice, Behav Brain Res, 303 (2016), E. Torok, A. Tomazatos, D. Cadar, C. Horvath, L. Keresztes, S. Jansen, N. Becker, A. Kaiser, O. Popescu, J. Schmidt-Chanasit, H. Jost, and R. Luhken, Pilot Longitudinal Mosquito Surveillance Study in the Danube Delta Biosphere Reserve and the First Reports of Anopheles Algeriensis Theobald, 1903 and Aedes Hungaricus Mihalyi, 1955 for Romania, Parasit Vectors, 9 (2016), 196. T. M. Uyeki, A. K. Mehta, R. T. Davey, Jr., A. M. Liddell, T. Wolf, P. Vetter, S. Schmiedel, T. Grunewald, M. Jacobs, J. R. Arribas, L. Evans, A. L. Hewlett, A. B. Brantsaeter, G. Ippolito, C. Rapp, A. I. Hoepelman, J. Gutman, P. Emmerich, M. Gabriel, S. Günther, and J. Schmidt-Chanasit, Clinical Management of Ebola Virus Disease in the United States and Europe, N Engl J Med, 374 (2016), H. van Tong, T. P. Velavan, T. Thye, and C. G. Meyer, Human Genetic Factors in Tuberculosis: An Update, Trop Med Int Health, 22 (2017), M. Varjak, C. L. Donald, T. J. Mottram, V. B. Sreenu, A. Merits, K. Maringer, E. Schnettler, and A. Kohl, Characterization of the Zika Virus Induced Small Rna Response in Aedes Aegypti Cells, PLoS Negl Trop Dis, 11 (2017), e C. D. Vinnemeier, E. M. Klupp, R. Krumkamp, T. Rolling, N. Fischer, E. Owusu-Dabo, M. M. Addo, Y. Adu-Sarkodie, J. Kasmaier, M. Aepfelbacher, J. P. Cramer, J. May, and E. Tannich, Tropheryma Whipplei in Children with Diarrhoea in Rural Ghana, Clin Microbiol Infect, 22 (2016), 65 e1-3. C. D. Vinnemeier, C. Rothe, B. Kreuels, M. M. Addo, S. Vygen-Bonnet, J. P. Cramer, and T. Rolling, Response to Fever and Utilization of Standby Emergency Treatment (Sbet) for Malaria in Travellers to Southeast Asia: A Questionnaire-Based Cohort Study, Malar J, 16 (2017),

62 V. von Kalckreuth, F. Konings, P. Aaby, Y. Adu-Sarkodie, M. Ali, A. Aseffa, S. Baker, R. F. Breiman, M. Bjerregaard-Andersen, J. D. Clemens, J. A. Crump, L. M. Cruz Espinoza, J. F. Deerin, N. Gasmelseed, A. G. Sow, J. Im, K. H. Keddy, L. Cosmas, J. May, C. G. Meyer, E. D. Mintz, J. M. Montgomery, B. Olack, G. D. Pak, U. Panzner, S. E. Park, R. Rakotozandrindrainy, H. Schutt-Gerowitt, A. B. Soura, M. R. Warren, T. F. Wierzba, and F. Marks, The Typhoid Fever Surveillance in Africa Program (Tsap): Clinical, Diagnostic, and Epidemiological Methodologies, Clin Infect Dis, 62 Suppl 1 (2016), S9-S16. Vongphoumy, P. Chanthilat, P. Vilayvong, and J. Blessmann, Prospective, Consecutive Case Series of 158 Snakebite Patients Treated at Savannakhet Provincial Hospital, Lao People s Democratic Republic with High Incidence of Anaphylactic Shock to Horse Derived F(Ab )2 Antivenom, Toxicon, 117 (2016), Y. Wai-Lok, U. Lambertz, L. Colineau, P. Pescher, A. MacDonald, D. Zander, S. Retzlaff, J. Eick, N. E. Reiner, J. Clos, and G. F. Spath, Phenotypic Characterization of a Leishmania Donovani Cyclophyilin 40 Null Mutant, J Eukaryot Microbiol, 63 (2016), P. Warnke, A. Devide, M. Weise, H. Frickmann, N. G. Schwarz, H. Schaffler, P. Ottl, and A. Podbielski, Utilizing Moist or Dry Swabs for the Sampling of Nasal Mrsa Carriers? An in Vivo and in Vitro Study, PLoS ONE, 11 (2016), e S. Winkler, A. Pollreisz, M. Georgopoulos, Z. Bago-Horvath, H. Auer, K. K. To, J. Krucken, S. Poppert, and J. Walochnik, Candidatus Dirofilaria Hongkongensis as Causative Agent of Human Ocular Filariosis after Travel to India, Emerg Infect Dis, 23 (2017), J. Wittsiepe, T. Feldt, H. Till, G. Burchard, M. Wilhelm, and J. N. Fobil, Pilot Study on the Internal Exposure to Heavy Metals of Informal-Level Electronic Waste Workers in Agbogbloshie, Accra, Ghana, Environ Sci Pollut Res Int, 24 (2017), G. Wong, X. Qiu, M. A. de La Vega, L. Fernando, H. Wei, A. Bello, H. Fausther-Bovendo, J. Audet, A. Kroeker, R. Kozak, K. Tran, S. He, K. Tierney, G. Soule, E. Moffat, S. Gunther, G. F. Gao, J. Strong, C. Embury-Hyatt, and G. Kobinger, Pathogenicity Comparison between the Kikwit and Makona Ebola Virus Variants in Rhesus Macaques, J Infect Dis, 214 (2016), S281-S89. M. Wouthuyzen-Bakker, M. Knoester, A. P. van den Berg, C. H. GeurtsvanKessel, M. P. Koopmans, C. Van Leer-Buter, B. Oude Velthuis, S. D. Pas, W. L. Ruijs, J. Schmidt- Chanasit, S. G. Vreden, T. S. van der Werf, C. B. Reusken, and W. F. Bierman, Yellow Fever in a Traveller Returning from Suriname to the Netherlands, March 2017, Euro Surveill, 22 (2017). D. D. Yar, S. P. Salifu, S. N. Darko, A. A. Annan, A. A. Gyimah, K. O. Buabeng, and E. Owusu-Dabo, Genotypic Characterisation of Human Papillomavirus Infections among Persons Living with Hiv Infection; a Case-Control Study in Kumasi, Ghana, Trop Med Int Health, 21 (2016), Buchkapitel und Monographien N.W. Brattig, Utzinger J, Bergquist R, Chimbari M, Zinsstag J; Ecohealth: An African Perspective, in Acta Tropica Special Issues; 2017, Vol. 175 G. D. Burchard, Berufsbedingter Auslandsaufenthalt - Infektionsprophylaxe, in Handbuch der Betriebsärztlichen Praxis, ed. by F. Hofmann. Ecomed, 2017, pp G. D. Burchard, Infektionsschutz in der Reisemedizin, in Handbuch der Infektionskrankheiten. Epidemiologie, Diagnostik, Therapie, Prophylaxe, Gesetzliche Grundlagen., ed. by F. Homann. Ecomed, 2017, pp G. D. Burchard and M. Grobusch, Central Africa, in Infectious Diseases, a Geographical Guide, ed. by E. Petersen. Wiley Blackwell, 2017, pp S. Duraffour, O. Ferraris, and C. Peyrefitte, Cowpox and Monkeypox, in Traité Emc De Maladies InfectieusesElsevier Masson SAS, D. Erpenbeck, T. Bergen, T. Wittenberg, E. Tannich, C. Wegner, C. Münzenmayer, and M. Benz, Basic Statistics of Sift Features for Texture Analysis, in Bildverarbeitung für die Medizin 2016 (Berlin, Heidelberg: Springer, 2016), pp V. Heussler, T. Spielmann, F. Frischknecht, and T. Gilberger, Plasmodium, in Molecular Parasitology: Protozoan Parasites and Their Molecules, ed. by J. Walochnik and M. Duchene. Springer, 2016, pp Weitere Publikationen G. D. Burchard Wichtige Importierte Erkrankung: Mit Malaria muss sich jeder Arzt auskennen, Pädiatrie hautnah, 28 (2016), S. Krappe, M. Benz, A. Gryanik, E. Tannich, C. Wegner, M. Stamminger, T. Wittenberg, and C. Münzenmayer, Automated Plasmodia Recognition in Microscopic Images for Diagnosis of Malaria Using Convolutional Neural Networks, SPIE Medical Imaging. International Society for Optics and Photonics (2017), B-00B. H. Prange and G. Burchard, Akute Demyelinisierende Enzephalomyelitis (Adem) Nach Schutzimpfungen?, Arzneimittelverordnung in der Praxis, 4 (2017), J. Schmidt-Chanasit and B. Schumacher, Reisewarnung Wegen Zika-Viren, MMW Fortschr Med, 158 (2016), 8. J. Tiedke und J. Schmidt-Chanasit, Dengue-Fieber, Blutbild, 31 (2017), 1-4. Masterarbeiten Arne Alder, Funktionelle Charakterisierung invasionsbeteiligter Proteine in Plasmodium falciparum (Welch, 1897) (2016) Johanna Becker, Identification of new parasitophorous vacuole proteins in the human malaria parasite Plasmodium falciparum (2016) Veronika Brinschwitz, Expression and purification of the SFTS-virus L-protein and its segments (2017) Auriane Carcone, Induction of PD-L1 on DEC205+ dendritic cells during Malaria does not lead to impaired CD8+ T cells stimulatory capacit (2017) Ombrett Colasanti, A role for escort and autophagy during mycobacterial cell-to-cell transmission (2016) Sarah Elbaz, Analyse der Hepatomazelllinie Hepa 1-6 CR1 hinsichtlich Stimulationsfähigkeit und Zellproliferation (2016) Finn Fürstenwerth, Interaction of human brain endothelial cells (HBEC-5i) and Plasmodium falciparum under heat stress conditions (2017) Marie Groneberg, E. histolytica abhängige Immunmodulation von Monozyten und Makrophagen (2017) Liza Heine, Empfänglichkeit von verschiedenen Makrophagen-Populationen für die Infektion mit Rickettsia typhi (2016) Stefan Hoenow, Untersuchungen zur Funktion von IL-22 in der experimentellen Malaria (2016) Lea Kaminski, Untersuchung der suppressiven Eigenschaften von PD-1+CD4+ T-Lymphozyten des Menschen (2017) Bastian Kruse, Untersuchungen zur Funktion von CD160 im Verlauf der experimentellen Malaria (2017) Dirk Lercher, Die Lokalisation putativer Pathogenitätsfaktoren in Entamoeba histolytica (Schaudinn, 1903) (2017) Imke Liebold, Untersuchung zur Induktion von regulatorischen T-Zellen durch Plasmodien-Antigene auf infizierten Erythrozyten (2016) Thorben Matthies, Strukturelle und biochemische Charakterisierung der Alkoholdehydrogenase EHI_ aus Entamoeba histolytica (SCHAUDINN, 1903) (2017) Dissertationen Annemieke Abel, Untersuchung koinhibitorischer Moleküle in der humanen Malaria (2016) Hassan Al-Emran, Molecular Epidemiology of Invasive Salmonella enterica in sub-sahara Africa ( 2016) Ludger Allering, Detection of Usutu virus infection in a healthy blood donor from south-west Germany, 2012 (2017) Emmanuela M. Anandarajah, Characterization of excretory/secretory proteins from intestinal nematodes affecting the mucosal immune system (2016) Heidi Auerswald, Analyse der humoralen, neutralisierenden Immunantwort nach natürlichen Infektionen mit Dengueviren (2016) Katharina Bartsch, Genetische und biochemische Analyse der Hsp90-ATPase- Aktivität (Aha1) aus Leishmania donovani (Ross, 1903) (2017) Jakob Birnbaum, A novel genetic systemfor the functional analysis of essential proteins of the human malaria parasite Plasmodium falciparum (2017) Alexandra Blancke Soares, Identification of trafficking determinants in novel PNEPs of the human malaria parasite Plasmodium falciparum (2016) Jessica Börstler, Arboviruses in Germany: geographical distribution and the interaction between mosquitoes and vertebrates (2016) Yannik Brenz, Dictyostelium discoideum als Francisella-Infektionsmodell unter der Verwendung von F. noatunensis susp. Noatunensis (2016) Dana Ditgen, Characterization of candidate immunomodulatory excretory/secretory proteins of gut-dwelling nematodes (2016) Dimitri Engel, Reconstruction of the evolutionary history and dispersal of Usutu virus, a neglected emerging arbovirus in Europe and Africa (2017) Helena Fehling, Analyse der Unterschiede pathogener und apathogener Entamoeba histolytica (SCHAUDINN, 1903) Klone in der Parasit-Wirt Interaktion (2016) Clemens Frank, Spatial heterogeneity of malaria in Ghana a cross-sectional study on the association between urbanicity and the acquisition of immunity (2016) Lilli Gerstenmaier, Untersuchungen der molekularen Mechanismen des Austritts von intrazellulären Bakterien am Beispiel des Mycobakterium Marinum Dictyostelium discoideum Modellsystem (2016) Kristin Moderzynski, Characterization of T-cell-mediated immune response to Rickettsia typhi infection in mice (2016) Stefanie Papp, Charakterisierung angeborener Immunmechanismen und immunpathologischer Defekte in der Rickettsia typhi-infektion (Wolbach und Todd, 1920) in der Maus (Mus musculus, Linnaeus, 1758) Martina Reitz, Funktion und Regulation von Mastzellen bei der Immunantwort der Maus (Mus musculus; Linnaeus, 1758) auf den Darmparasiten Strongyloides ratti (Sandground, 1925) (2016) Paula Ruibal, Relationship between HLA and T cell responses to Ebola virus (2017) Nariman Shahhosseini, Mosquito surveillance in Iran and Germany reveals new insights into arbovirus ecology and evolution (2017) Peter Sothmann, Urbanicity and Paediatric Bacteraemia in Ghana A Case-Control Study within a Rural-Urban Transition Zone (2016) Christina Strauß, Genetic fine mapping and functional analysis of a chromosomal region associated with resistance against severe malaria in humans (2017) Paloma Tejera Nevado, A Cluster of Antimony Resistance Genes on Chromosome 34 of Leishmania infantum and Their Properties (2016) Inga Toborg, Auswirkung einer Infektion mit Strongyloides ratti auf eine durch Indomethacin induzierte Darmentzündung bei Ratten (2016) Ann-Katrin Ullrich, Characterisation of trafficking signals shared by different types of exported proteins in the human malaria parasite Plasmodium falciparum (2016) E. A. Yu, M. Akormedi, E. Asampong, C. G. Meyer, and J. N. Fobil, Informal Processing of Electronic Waste at Agbogbloshie, Ghana: Workers Knowledge About Associated Health Hazards and Alternative Livelihoods, Glob Health Promot 24 (2017), U. Ziegler, C. Fast, M. Eiden, S. Bock, C. Schulze, D. Hoeper, A. Ochs, P. Schlieben, M. Keller, D. E. Zielke, R. Luehken, D. Cadar, D. Walther, J. Schmidt-Chanasit, and M. H. Groschup, Evidence for an Independent Third Usutu Virus Introduction into Germany, Vet Microbiol, 192 (2016), J. Tiedke und J. Schmidt-Chanasit, Zika ein weiteres Virus auf Weltreise, Diagnostik im Dialog, 50 (2016), J. Tiedke und J. Schmidt-Chanasit, Zika-Virus Eine Zoonose auf dem Vormarsch, labor&more, 7 (2016), Melina Mühlenpfordt, Evaluation of protective, immunological and cytotoxic properties of synthetic immune-stimulatory molecules for the treatment of intracellular Leishmania major infection (2016) Sonja Obersteller, Establishment of CHO cell lines expressing human endothelial receptors for the analysis of the cytoadhesion of Plasmdium infected erythrocytes (2017) Elena Riel, Mutagenic Analyses of the Miltefosine Transporter in Leishmania donovani (Ross, 1903) (2017) Leonie Hecht, Biogenesis of the parasitophorous vacuole membrane (PVM) and regulation of its major component, the early transcribed membrane proteins (ETRAMPs) of Plasmodium falciparum (Welch, 1897) blood stages (2016) Philipp Klein, Artemether-Lumefantrin und Artesunat plus Amodiaquin zur Behandlung kindlicher Malaria tropica in Ghana: eine Effizienzstudie (2016) Ralf Krumkamp, Management of childhood infections in rural Ghana Filling information gaps (2016) Annette Beatrix Schlosser, Die Rolle der C-Typ-Lektin-Rezeptoren während der Immunantwort gegen parasitäre Nematoden (2107) Mayke Leggewie, Susceptibility of Culex species native to Germany for West Nile virus and the role of Wolbachia in virus-vector interaction (2016) Sabine Schmidt, Identification of essential parasite-specific genes in the human malaria parasite Plasmodium falciparum (2017) Marius Schmitt, Localization of Plasmodium vivax (Grassi and Feletti, 1890) VIR proteins by means of Plasmodium falciparum (Welch, 1897) transgenic cell lines (2016) Stefanie Lilla, Einfluss der negativen T-Zell-Kostimulation auf diecd8+ T-Zell-vermittelte Immunantwort in der experimentellen Infektion mit Orientia tsutsugamushi (2016) Pedro Lubiana, Charakterisierung der Interaktion zwischen Plasmodium infizierten Erythrozyten und humanen Endothelrezeptoren (2017) Maximilian Schulz, Characterisation of Recombinant Arenaviruses (2017) Jan Stäcker, Characterisation of a new Maurer s clefts phenotype in the human malaria parasite Plasmodium falciparum (Welch, 1897) (2017) Sarah Steinfurth, Studien zur Identifizierung der Plasmodium falciparum erythrocyte membrane protein 1 (PfEMP1) Bindungsdomänen für die Endothelrezeptoren CD9 und P-Selektin (2016) Nadine Stetter, Impact of HVEM expression (Herpesvirus Entry Mediator; CD270) on the functionality of T cells in experimental Malaria (2016) Mona Tabel, PD-L1 als suppressiver Faktor für Malaria spezifische CD8+ T-Zellen (2017) Anja Stefanie Lüdtke, Die Rolle der Dendritischen Zellen während der Ebola Virus Immunantwort und Pathogenese (2016) Paolo Mésen Ramírez, Characterization of the protein export steps at the parasitehost cell interface of the human malaria parasite Plasmodium falciparum (Welch, 1897) (2016) Nahla Metwally, Analyses of the transcriptome profilesof Plasmodium falciparum infected erythrocytes selected for binding to the human endothelial receptors (ICAM- 1, P-selectin, E-selectin, CD9 and CD151) (2016) Martin Meyer, Identifikation neuer Pathogenitätsfaktoren durch Überexpression differentiell exprimierter Gene in pathogenen und nicht-pathogenen Entamoeba histolytica (SCHAUDINN, 1903) Klonen (2016) Benthe Winkelmann, Funktionelle Charakterisierung von Basalkomplex-Proteinen im Malariaparasiten Plasmodium falciarum (Welch, 1897) (2016) Marlow Zimmermann, The effects of synchronized mass administration of antimalarial drugs A mathematical model (2016)

63 LEHRVERANSTALTUNGEN DES BNITM AN DER UNIVERSITÄT HAMBURG Fachbereich Medizin WS SS Wahlfach Tropen- und Reisemedizin; 12 Wochen* Egbert Tannich, Marylyn Addo Einführung in die Tropenmedizin/ Grundlagen der Tropenmedizin; Seminar, 1 SWS Rolf Horstmann, Christian Timmann, Jürgen May Humangenetik von Infektionen und anderen Volkskrankheiten; Seminar, 2 SWS Rolf Horstmann, Thorsten Thye, Christian Timmann Epidemiologie und Kontrolle der Tropenkrankheiten; 2 SWS Jürgen May, Norbert Schwarz, Ralf Krumkamp, Daniel Eibach, Benedikt Hogan Epidemiologie globale Infektionen; Seminar, 1 SWS Jürgen May, Norbert Schwarz, Ralf Krumkamp, Daniel Eibach, Denise Dekker Einführung in die Parasitologie; 2 SWS Egbert Tannich, Anna Bachmann, Iris Bruchhaus, Joachim Clos, Tobias Spielmann Aktuelle Ergebnisse der parasitologischen Grundlagenforschung; Seminar; 2 SWS Egbert Tannich und MitarbeiterInnen Aktuelle Probleme in der Parasitologie; Seminar; 1 SWS Egbert Tannich, Iris Bruchhaus Immunologisches Praktikum und Literaturseminar; Seminar und Praktikum, 2 SWS Thomas Jacobs Aktuelle Probleme der Immunologie; Seminar, 2 SWS Thomas Jacobs Systematische Einteilung und Physiologie der pathogenen und arzneistoffproduzierenden Organismen; 1 SWS Norbert Brattig, Peter Heisig x x x x x x x x x x x x x x x x Fachbereich Biologie und Chemie WS SS Molekulare Parasitologie; Vorlesung, 2 SWS Iris Bruchhaus Molekulare Parasitologie; Praktikum, 6 SWS Iris Bruchhauss Spezielle Virologie; Vorlesung, 2 SWS Stephan Günther Grundlagen der zellulären und molekularen Immunologie; Vorlesung, 2 SWS Minka Breloer Neue Ergebnisse der Immunologie; Seminar, 3 Std Block Minka Breloer Immunologische Arbeitstechniken, Praktikum, 6 Std Block Minka Breloer Immunologisches Praktikum und Literaturseminar; Blockveranstaltung, 6 SWS, 4 Wochen Minka Breloer, Thomas Jacobs, Bernhard Fleischer und MitarbeiterInnens Zellbiologie; Vorlesung, 2 SWS Tim Gilberger Zellbiologie; Seminar, 2 SWS Tim Gilberger Infektionsbiologie; Seminar, 2 SWS Tim Gilberger Organisationsformen im Tierreich; Praktikum, 6 SWS Minka Breloer und Mitarbeiter(innen) der Universität Hamburg x x x x x x x x x x *Wahlfach Tropen- und Reisemedizin für Studierende der Medizin der Universität Hamburg Tutoren Prof. Dr. Marylyn Addo (Tutorin für klinische Tropenmedizin) Prof. Dr. Egbert Tannich (Tutor für theoretische Tropenmedizin) Wahlfach Tropen- und Reisemedizin Medizinstudenten/innen, die ein besonderes Interesse an der Tropen- und Reisemedizin zeigen, sollen durch Angebot des Wahlfaches die Möglichkeit erhalten, einen Schwerpunkt in ihrer Ausbildung zu setzen. Deshalb wird dieses Wahlfach seit einigen Jahren in Zusammenarbeit mit dem UKE für maximal sechs ausgewählte Medizinstudenten/ innen angeboten. Das Fach Tropen- und Reisemedizin eignet sich ganz besonders für einen fächerübergreifenden Unterricht, da es sich nicht auf ein Organ bezieht, sondern Tropenkrankheiten alle Organsysteme betreffen können da Tropenmedizin ein typisches Querschnittsfach ist, das neben der internistischen Ausbildung auch theoretische, diagnostische, mikrobiologische und chirurgische Aspekte beinhaltet da nicht nur Aspekte der kurativen Medizin sondern auch des Öffentlichen Gesundheitswesens vermittelt werden können. Der Kurs dauert 12 Wochen und findet zweimal jährlich ab Oktober bzw. Januar statt. Bekanntgabe und Anmeldung auf den Seiten der Medizinischen Fakultät der Universität Hamburg unter

64 INSTITUTSSEMINARE Dr. Gianni Lo Lacono Public Health England, Didcot, Oxon, UK Natura non facit saltus. and mathematicians shouldn t either. Two coherent mathematical models for Lassa fever and Rift Valley Fever (25. Oktober 2016) Dr. Gisa Gerolds Twincore, Hannover, Germany Pathogen Entry and Innate Immunity in the Liver: Interplay of Hepatitis C Virus, Arenaviruses and Plasmodium (7. November 2016) Dr. Jens Bernhard Bosse Heinrich-Pette-Institut, Leibniz-Institut für Experimentelle Virologie, Hamburg, Germany Viral DynOmics: Towards realtime imaging of viral transport processes in whole cells (22. November 2016) Dr. Josh Beck Washington University School of Medicine, St. Louis, USA Interrogating PTEX function in P. falciparum effector export (30. November 2016) Prof. Stephanie Blandin Institute for Molecular and Cellular Biology, University of Strasbourg, France Targeting mosquito/parasite redox equilibrium to control malaria transmission (12. Januar 2017) Dr. Moritz Treeck Crick Institute, London, UK Remote control: How intracellular parasites control proteins beyond their own boundaries (14. Februar 2017) Dr. Daniel Velez National Autonomous University of Mexico, Mexico City, Mexico TbBRF1: an usual transcription factor for an unusual parasite (17. März 2017) Dr. Natalie Spillman University of Melbourne, Melbourne, Australia Understanding artemisinin action in Plasmodium falciparum (24. Mai 2017) Prof. Dr. Jörg Overmann Leibniz-Institut DSMZ, Braunschweig, Germany Microbiological Research Under the Nagoya Protocol: Facts and Fiction (21. Juni 2017) Prof. Dr. John Parkinson University of Toronto and Sick Kids Hospital, Toronto, Canada Computational Systems Biology of the Apicomplexa (28. Juni 2017) Dr. Beate Henrichfreise University of Bonn, Institute for Pharmaceutical Microbiology, Bonn, Germany Chlamydial pathogens: mechanisms of persistent infections and epidemiology in Africa vs. Europe (11. Juli 2017) Dr. Sabine Dittrich FIND, Genf, Schweiz Non-malarial febrile illness (NMFI) in Asia as story of beast and man (5. September 2017) Dr. Linda Brunotte Westfälische Wilhelms-Universität Münster, Institut für Virologie, Münster, Germany Dual-use Research of Concern (DURC) und Bildung einer Kommission für Ethik sicherheits-relevanter Forschung (KEF) (19. September 2017) Prof. Dr. Stefan Bonn Zentrum für Molekulare Neurobiologie (ZMNH), Institut für Medizinische Systembiologie, Hamburg, Germany Finding and understanding (infective) diseases using systems biology (14. November 2017) AKTIVITÄTEN DER MITARBEITER*INNEN Dr. Anna Bachmann Molecular Parasitology Department Teaching University of Hamburg, Department for Biology Dr. Jörg Blessmann Epidemiology Section Prizes Preis für exzellente Posterpräsentation, International Society of Toxicology at World Congress, Haikou, Hainan, China (10/2017) Teaching BNITM, Refresherkurs PD Dr. Norbert Brattig Clinical Research Section Offices and Posts Editor, Acta Tropica (since 2007) Editorial Board, The Open Tropical Medicine Journal (since 2007) Editorial Board, Asian Pacific Journal of Tropical Medicine (since 2007) Editorial Board, Medicina Universitaria (since 2011) Reviewer, Acta Tropica, Trop. Med. Int. Health Organizer and Chairman Organizer Editor Meeting Elsevier, Swiss TPH, Basel, Schweiz (02/2016) Organizer Editor Meeting Elsevier, Swiss TPH, Basel, Schweiz (09/2017) Organizer Scientific Meeting Development of a Strongyloides Rapid Diagnostic Test, Swiss TPH, Basel, Schweiz (02/2016, 09/2017) Teaching BNITM, Diplomkurs Tropenmedizin BNITM, Refresherkurs BNITM, Kurs Medizin in den Tropen University of Hamburg, Department of Chemistry / Pharmacy PD Dr. Minka Breloer Molecular Bioloy and Immunology Section Invited Speaker University of Edinburgh, UK (12/2016) Paul-Ehrlich-Institut, Göttingen (05/2017) Herbsttagung der Deutschen Gesellschaft für Immunologie (DGfI), Hamburg (09/2017) Tierärztliche Hochschule Hannover (11/2017) Teaching University of Hamburg, Department for Biology BNITM, Diplomkurs Tropenmedizin Prof. Dr. Iris Bruchhaus Molecular Parasitology Department Offices and Posts BNITM, Kuratorium (since 2008) BNITM, Ombudsman (since 2003) BNITM, Strahlenschutzbeauftragte (since 2000) Invited Speaker Hygiene-Institut Wien (01/2016) Newcastle University, Newcastle upon Tyne, England (09/2017) Organizer and Chairman Chairman, 27th Annual Meeting of the German Society for Parasitology, Göttingen (03/2016) Anaerobic protists: Integrating parasitology with mucosal microbiota and immunology, Newcastle University, Newcastle upon Tyne, England (08/09/2017) Teaching University of Hamburg, Department of Biology / Chemistry BNITM, Diplomkurs Tropenmedizin LCI Graduate School Prof. Dr. Gerd Burchard Clinical Research Section Offices and Posts Außerordentliches Mitglied, Arzneimittelkommission der Deutschen Ärzteschaft (since 1994) Mitglied, Wissenschaftlicher Beirat, Deutsche Akademie für Flug- und Reisemedizin ( ) Vorsitzender, Deutsche Gesellschaft für Tropenmedizin und internationale Gesundheit (DTG) ( ) Leiter des Ausschusses Leitlinienentwicklung, Deutsche Gesellschaft für Tropenmedizin und international Gesundheit (DTG) ( ) Mitglied des Ausschusses Reisemedizin, Deutsche Gesellschaft für Tropenmedizin und international Gesundheit (DTG) (since 2005) Editorial Board, Journal of Travel Medicine ( ) Mitglied der Expertengruppe Off-Label Innere Medizin, Bundesinstitut für Arzneimittel und Medizinprodukte (BfArM) ( ) Mitglied, Ethikkommission der Ärztekammer Hamburg (since 2013) Mitglied, Ausschuss für medizinische Ausstattung in der Seeschifffahrt, Hamburg (since 2014) Mitglied, Ständige Impfkommission am Robert-Koch-Institut (STIKO) (since 2017) Invited Speaker Aktuelles zu Impfungen in der ärztlichen Praxis. Fortbildung ÄrzteNetz Hamburg, Agaplesion Diakonieklinikum Hamburg. 3. Februar 2016, Hamburg Flüchtlingsmedizin müssen wir mit neuen Erregern rechnen? Internistisches Kolloquium. Krankenhaus Reinbek St. Adolf-Stift. 10. Februar 2016 Impfungen bei Patienten mit Antizytokin-Therapie. Tag der Reisegesundheit, Bernhard-Nocht-Institut für Tropenmedizin. 27. Februar 2016, Hamburg Update Malaria und Reiseimpfungen und FSME. III. Symposium für Impf- und Reisemedizin in Hamburg. Bernhard-Nocht-Institut für Tropenmedizin, 16. April 2016, Hamburg Ethische Grundlagen. Prüfarztkurs nach AMG. Clinial Trial Center North in Kooperation mit der Universitären Bildungsakademie. 29. April 2016, Hamburg Die Leber in den Ferien. Lebertage Hamburg, ifi-institut für Interdisziplinäre Medizin. 27. Mai 2016, Hamburg Malariaprophylaxe. Basis Seminar Reisemedizinische Gesundheitsberatung, Universitätsklinikum Hamburg-Eppendorf. 28. Mai 2016, Hamburg Malaria Behandlung, Diagnostik, Prophylaxe. Auffrischkurs Reisemedizin für Ärztinnen und Ärzte, Niedersächsisches Landesgesundheitsamt, 4. Juni 2016, Hannover Reisevorbereitungen. Kurs der Akademie für Infektionsmedizin Infektiologie Kompakt. 13. Kongress für Infektionskrankheiten und Tropenmedizin, 18. Juni 2016, Würzburg Intestinale Parasitenerkrankungen. Infektiologie-Kursus der Akademie für Infektionsmedizin e.v. Deutsches Gesellschaft für Infektiologie. 2. Juli 2016, Hamburg Ethische Grundlagen. Prüfarztkurs nach MPG. Clinical Trial Center North, Universitätsklinikum Hamburg-Eppendorf, 30. August 2016, Hamburg Risiko Malaria und Update Malaria Prophylaxeempfehlungen. Reisemedizin für niedergelassene Ärzte. Jahrestagung der Deutschen Gesellschaft für Tropenmedizin und Internationale Gesundheit e.v. 8. Oktober 2016, Bonn Fallbeispiele: Reiserückkehrer, Gesundheitsberatung vor der Reise. Basis-Seminar Reisemedizinische Gesundheitsberatung, Universitätsklinik Hamburg-Eppendorf, 12. November 2016, Hamburg Malariaprophylaxe 2017; Reisemedizinische Impfungen was gibt es Neues; Aktuelle Daten zu importierten Erkrankungen. 9. Deutsches Infektiologie-Update. Ifi-Institut für Interdisziplinäre Medizin. 4. Dezember 2016, Hamburg Tropenerkrankungen: womit muss ich 2017 in Deutschland rechnen? 106. Kasseler Gastroenterologen-Gespräch. Klinikum Kassel. 11. Januar 2017, Kassel Screening-Empfehlungen bei Flüchtlingen. Kurs Flüchtlingsmedizin, Bernhard-Nocht-Institut für Tropenmedizin. 14. bis 15. Januar 2017, Hamburg Update Malariaprophylaxe. Tag der Reisegesundheit. Bernhard-Nocht- Institut für Tropenmedizin. 18. Februar 2017, Hamburg Tropenerkrankungen: womit muss ich 2017 in Deutschland rechnen? Update Medizin. Fortbildung Labor Dr. Heidrich & Kollegen. 25. Februar 2017, Hamburg Virale hämorrhagische Fieber - eine Gefahr für Beschäftigte im Gesundheitsdienst? Seminar Infektionskrankheiten Jahrestagung der Deutschen Gesellschaft für Arbeitsmedizin und Umwelmedizin, , Hamburg Fieber bei Tropenrückkehrern und Migranten Differenzialdiagnosen und Management. 3. Dortmunder Tag der Krankenhaushygiene. Institut für Krankenhaushygiene und klinische Mikrobiologie, 26. April 2017, Dortmund Reisen ins Ausland und ihre Mitbringsel. Lebertage Hamburg, ifi-institut für Interdisziplinäre Medizin. 12. Mai 2017, Hamburg Diarrrhoe bei Reiserückkehrern Was ist wirklich relevant? 7. Kammersymposium der Ärztekammer Nordrhein. 10. Juni 2017, Düsseldorf Seltene importierte pulmonale Infektionen. Akademie für Infektionsmedizin ev. Infektiologie Kursus, 30. Juni. 2017, Hamburg Ethische Grundlagen. Prüfarztkurs nach AMG. Clinical Trial Center North, Universitätsklinikum Hamburg-Eppendorf, 12. September 2017, Hamburg Reisemedizin. Akademie für Infektionsmedizin e.v. Vortrag im Rahmen der gemeinsamen Jahrestagung der DGI und DZIF. 30. September 2017, Hamburg Ethische Grundlagen. Grundlagenkurs nach AMG. Clinical Trial Center North, Universitätsklinikum Hamburg-Eppendorf, 21. November 2017, Hamburg Differenzialdiagnose zerbrale Raumforderung durch Helminthen. Auffrischkurs Tropenmedizin. Bernhard-Nocht-Institut für Tropenmedizin, 25. November 2017, Hamburg Update Parasitologie neue Entwicklungen 2017 mit Relevanz für die Patientenversorgung. 10. Deutsches Infektiologie-Update. Ifi-Institut für Interdisziplinäre Medizin. 2. Dezember 2017, Hamburg Malariaprophylaxe 2017; Reisemedizinische Impfungen was gibt es Neues; Aktuelle Daten zu importierten Erkrankungen. Refresherkurs Reisemedizin, 10. Deutsches Infektiologie-Update. Ifi-Institut für Interdisziplinäre Medizin. 3. Dezember 2017, Hamburg Teaching BNITM, Diplomkurs Tropenmedizin BNITM, Kurs Medizin in den Tropen Kurs für medizinisches Fachpersonal zur Vorbereitung von Einsätzen Bundeswehrkrankenhaus Hamburg, Fachbereich Tropenmedizin, Lehrgang Einsatzvorbereitung Infektions-, Tropen- und Präventivmedizin (2016 und 2017) Medical Parasitology. Summer School for Young Parasitologists. Bernhard-Nocht-Institut für Tropenmedizin. 9. August 2016, Hamburg Bacterial diseases. Core Course Tropical Medicine and Public Health, Institute of Tropical Medicine and International Health, Berlin ( ) Migrant health: what is the role of the tropical medicine specialist? Diploma Course Tropical Medicine and Hygiene. Center for International Health, Universität München. 18. Oktober 2017, München PD Dr. Joachim Clos Molecular Parasitology Department Head, Research Group Clos (Leishmaniasis) Invited Speaker Institut für Zoologie der Universität Würzburg (06/2017) Teaching University of Hamburg, Department of Biology / Chemistry Dr. Denise Dekker Infection Epidemiology Department Invited Speaker Workshop, DZIF Autumnschool 2016, Lübeck (09/2016) Teaching NIMR, Tansania ESTHER, KATH, Kumasi BNITM, Diplomkurs Tropenmedizin Dr. Sophie Duraffour Virology Department Invited Speaker WHO Informal Consultation on options to improve regulatory preparedness to address public health emergencies, WHO, Geneva, Schweiz (05/2017) WHO International Meetings Ebola virus persistence studies and implications on public health recommendations, WHO, Monrovia, Liberia (06/2017) Irrua Specialist Teaching Hospital in collaboration with Nigeria Centre for Disease Control, Nigeria (05/2017) Dr. Daniel Eibach Infection Epidemiology Department Offices and Posts Mitglied des Kompetenzteams Antibiotikaforschung, -entwicklung und -versorgung ; Pharmadialog der Bundesregierung Invited Speaker Landesärztekammer Thüringen, Erfurt (06/2016) Junior Scientist Zoonoses Meeting, Göttingen (06/2016) Teaching Universitätsklinikum Eppendorf GIBACHT Iranian-German Summer School on field Epidemiology NIMR, Tansania

65 Dr. Petra Emmerich-Paloh Virology Department Invited Speaker 3rd Force Health Protection Congress, Bundeswehrkrankenhaus Hamburg (09/2016) Teaching BNITM, Refresherkurs Universität Rostock, Medizin Universität Rostock, Medizinische Biotechnologie Prof. Dr. Bernhard Fleischer Immunology Department Offices and Posts Schriftführer und Schatzmeister, Deutsche Gesellschaft für Tropenmedizin und Internationale Gesundheit (since 2014) Mitglied, Auswahlkommission Afrika, DAAD, Bonn (since 2010) Mitglied, Wissenschaftlicher Beirat, Forschungszentrum Borstel (since 2011) Mitglied, Wissenschaftlicher Beirat, Hans-Knöll-Institut Jena (since 2011) Mitglied, Kuratorium der Stiftung Diagnostik hilft (since 2015) Editor-in -Chief, Medical Microbiology and Immunology (since 1990) Member, Editorial Board, Asian-Pacfic Journal of Tropical Medicine (since 2005) Invited Speaker Institute of Hygiene and Applied Immunology, Medical University Vienna, Austria (01/2017) EFIS-EJI South-East European School in Immunology, Durres, Albanien (10/2016) Summer School Immunogambia, MRC, The Gambia (11/2016) EFIS-EJI South-East European School in Immunology, Lviv, Ukraine (09/2017) Institut of Immunology, University of Isfahan, Iran (08/2017) GIBACHT Summer School, Kampala, Uganda (09/2017) Organizer and Chairman Chairman, Grantees-Meeting, Volkswagen-Stiftung, Arusha, Tansania (11/2016) Organizer, EFIS-EJI South East European School of Immunology, Durres, Albanien (10/2016) Organizer, EFIS-EJI South East European School of Immunology, Lviv, Ukraine (9/2017) Kongresspräsident, 46. Jahrestagung der Deutschen Gesellschaft für Immunologie, Hamburg (09/2016) Teaching BNITM, Refresherkurs BNITM, Diplomkurs Tropenmedizin Prof. Dr. Rolf Garms Molecular Parasitology Department Offices and Posts Member, Onchocerciasis Elimination Expert Advisory Committee, Kampala, Uganda (since 2008) Teaching BNITM, Diplomkurs Tropenmedizin BNITM, Tropenkurs für medizinisches Fachpersonal 124 Prof. Dr. Tim-Wolf Gilberger Cellular Parasitology Department Head, Research Group Gilberger (Malaria) Offices and Posts CSSB, University of Hamburg, Mitglied des Direktoriums, (since 2014) BNITM, Stellvertr. Vorstandsmitglied, BNITM (since 2015) BNITM, UKE, Mitglied, W3-Berufungskommission Epidemiologie (2016) EMBL, Mitglied, EMBL-Search Commitee Groupleader Mechanism in Infection Biology (2016) Invited Speaker 26th Indian Parasitology Meeting, University of Varanasi, Indien (01/2016) Life Sciences on DESY Campus, Hamburg (06/2016) Teaching University of Hamburg, Department of Biology Prof. Dr. Stephan Günther Head, Virology Department Offices and Posts Member, Scientific Council, Laboratoire P4 Inserm Jean Mérieux, Lyon, France (since 2012) Member, Scientific Advisory Board, EU Project PREDEMICS ( ) Member, Ad Hoc Advisory Group for the WHO R & D Blueprint-Platforms to support development and production of health technologies for priority infectious diseases with epidemic potential, WHO Geneva (2016) Member, Scientific Advisory Group for the Blueprint on R & D Preparedness, WHO Geneva (since 2016) Invited Speaker 2nd Rapid Microbial NGS and Bioinformatics: Translation into Practice, Hamburg (06/2016) Keystone Symposia on Molecular and Cellular Biology Hemorrhagic Fever Viruses, Santa Fé, New Mexico, USA (12/2016) Central European Institut of Technology (CEITEC MU), Masaryk University, Brno, Tschechische Republik (09/2016) Institute of Virology, University of Basel, Schweiz (11/2016) Second Inter-Academic Scientific Symposium Emerging Zoonoses at the Slovenian Academy of sciences and Arts (SAZU), Ljubljana, Slowenien (10/2016) 4th Antivirals Congress 2016, Sitges, Barcelona, Spanien (09/2016) Mini-Symposium Emerging Viral Infections From Arenaviruses to Zika Laboratory of Virology, NIH, Hamilton, Mt, USA (12/2016) WHO Informal Consultation on options to improve regulatory preparedness to address public health emergencies, WHO Geneva (05/2017) WHO International Meeting Ebola virus persistence studies and implications on public health recommendations, WHO, Monrovia, Liberia (06/2017) Irrua Specialist Teaching Hospital in collaboration with Nigeria Centre for Disease Control (05/2017) Organizer and Chairman Organizer, EVIDENT Meeting, Oxford, UK (01/2016) Organizer, EVIDENT Final Meeting, Brussels, Belgien (10/2016) Teaching University of Hamburg, Department of Chemistry Dr. Anna Heitmann Molecular Parasitology Department Offices and Posts BNITM, Fachkundige Person für S3-Insektarium Invited Speaker Keystone Symposia, Durban, Südafrika (09/2017) Teaching LCI Graduate School Dr. Benedikt Hogan Epidemiology Section Invited Speaker Workshop, DZIF Autumnschool 2016, Lübeck (09/2016) DTG Conference, DZIF Malaria Session, Bonn (09/2017) Annual DZIF Malaria Meeting, Köln (11/2016) Teaching Freie Universität Berlin Prof. Dr. Rolf Horstmann Clinical Research Section Head, Molecular Medicine Department Chairman, Board of Directors, BNITM Offices and Posts Speaker, Hamburg-Lübeck-Borstel-Riems SIte, German Center for Infection Research (DZIF) (since 2012) Deputy Chair, Internal Advisory Board, German Center for Infection Research (DZIF) (since 2012) Member, Council ( Zukunftsrat ), Federal Ministry of Education and Research Member of the Scientific Advisory Board (ex officio), Robert-Koch- Institut (since 2008) Member of the Scientific Advisory Board, Leibniz Institute for Prevention Research and Epidemiology (since 2016) Invited Speaker LCI Symposium Evolution of Infection, BNITM, Hamburg (01/2017) Organizer and Chairman Chairman, Joint Biennial Meeting of the German Society for Infectiology and the German Center for Infection Research, Hamburg, 2017 PD Dr. Thomas Jacobs Molecular Bioloy and Immunology Section Head, Research Group Jacobs (Protozoan-Immunology) Offices and Posts BNITM, Kuratorium (since 2014) Invited Speaker LCI Symposium Vaccines, BNITM, Hamburg (01/2016) Organizer and Chairman Organizer, Chairman, Symposium T cell activation: From antigens to pathogens, BNITM, Hamburg (12/2016) Chairman, Scientific Committee, 46th Annual Meetings German Society for Immunology, Hamburg (09/2016) Teaching University of Hamburg, Department of Biology University of Hamburg, Faculty of Medicine Dr. Benno Kreuels Infection Epidemiology Department Offices and Posts Mitglied, Kommission Nachwuchsgruppe DTG (since 2014) Mitglied, Kommission Leitlinien DTG (since 2015) Mitglied, Ständiger Arbeitskreis der Kompetenz- und Behandlungszentren für hochkontagiöse und lebensdrohliche Erkrankungen (STAKOB) (since 2014) Invited Speaker 3. HZI-DZIF-Sommerschule, Schloss Buchenau (06/2016) Organizer and Chairman Co-Chair, Jahrestagung der Deutschen Gesellschaft für Tropenmedizin und Internationale Gesundheit (10/2016) Teaching Universitätsklinikum Hamburg-Eppendorf College of Medicine, Blantyre, Malawi Dr. Ralf Krumkamp Infection Epidemiology Department Offices and Posts Sprecher, Deutsche Gesellschaft für Epidemiologie AG Infektionsepidemiologie (since 2014) Organizer and Chairman Chairman, Session Infektionsepidemiologie, 10. Jahrestagung der Deutschen Gesellschaft für Epidemiologie (09/2015) Teaching BNITM, Tropenkurs für medizinisches Fachpersonal BNITM, Diplomkurs Tropenmedizin BNITM, Refresherkurs KCCR, Basics in Epidemiology Dr. Eva Lorenz Epidemiology Section Prizes GMDS-Förderpreis 2017 für die beste Dissertation im Fachbereich Epidemiologie, Deutsche Gesellschaft für Medizinische Informatik, Biometrie und Epidemiologie (09/2017) Stefan-Weiland-Preis 2017, Deutsche Gesellschaft für Medizinische Informatik, Biometrie und Epidemiologie (09/2017) PD Dr. Hanna Lotter Molecular Parasitology Department Offices and Posts BNITM, Stellv. Tierhausleitung (since 2009) Mitglied der Kommission für Tierversuche, Behörde für Gesundheit und Verbraucherschutz, Hamburg (since 2014) Mitglied des Tierschutzbeirates der Hansestadt Hamburg (since 2015) Invited Speaker Helmholtz Institut für pharmazeutische Forschung Saarland (HIPS) (07/2016) Teaching University of Hamburg, Department of Biology / Chemistry LCI Graduate School Prof. Dr. Jürgen May Epidemiology Section Head, Research Group May (Infection Epidemiology) Offices and Posts Mitglied, Runder Tisch der Bundesregierung zur Internationalisierung in Bildung, Forschung und Wissenschaft, Bundesregierung, BMBF, BMG (since 2017) Mitglied, Global Outbreak Alert and Response Network (GOARN), WHO, Geneva, Schweiz (since 2016) Mitglied, Schnell einsetzbare Expertengruppe bei Gesundheitsgefährdungen (SEEG), BMZ, Berlin (since 2016) Sprecher und Vorstandsmitglied, Deutsches Netzwerk gegen vernachlässigte Tropenkrankheiten (DNTDs) ( ) Stellv. Vorstandsmitglied, Deutsche Gesellschaft für Tropenmedizin und Internationale Gesundheit (since 2012) Koordinator, Translational Infrastructure African Partner Sites (TI APS), DZIF (seit 2012) Vorsitzender, Kommission Forschung in den Tropen, BNITM (since 2008) Mitglied, Scientific Advisory Board, Kumasi Centre for Collaborative Research (KCCR) (since 2008) Editorial Board, Tropical Medicine & International Health (since 2006) Stellv. Vorsitzender, Arbeitskreis Malaria-Therapie der Sektion Antiparasitäre Chemotherapie der Paul-Ehrlich-Gesellschaft (since 2003) Invited Speaker Auswärtiges Amt, Berlin (04/2016) GET Consortium, 3rd African Conference on Infectious Diseases and Biosecurity (08/2017) Symposium Global Health Hot Topics for the Future, School of Public Health, University of Bielefeld (10/2017) Organizer and Chairman Wiss. Komm., Co-Chairman, DZIF TTU Malaria, Meeting 2016, Köln Jahrestagung der Deutschen Gesellschaft für Tropenmedizin und Internationale Gesundheit (10/2016) Teaching University of Hamburg University of Apllied Sciences (HAW) BNITM, Diplomkurs Tropenmedizin BNITM, Tropenkurs für medizinisches Fachpersonal BNITM, Refresherkurs BNITM, Kurs Flüchtlingsmedizin BNITM, 2. Symposium Impf- / Reisemedizin Dr. Eva Mertens Infection Epidemiology Department Teaching GIBACHT BNITM, Tropenkurs für medizinisches Fachpersonal BNITM, Refresherkurs NIMR, Tansania Dr. Lisa Oestereich Virology Department Invited Speaker Keystone Symposia on Molecular and Cellular Biology Hemorrhagic Fever Viruses, Santa Fé, New Mexico, USA (12/2016) 4th Antivirals Congress 2016, Sitges, Barcelona, Spanien (09/2016) Mini-Symposium Emerging Viral Infections From Arenaviruses to Zika, Laboratory of Virology, NIH, Hamilton, Mt., USA (12/2016) Irrua Specialist Teaching Hospital in collaboration with Nigeria Centre for Disease Control, Nigeria (05/2017) Dr. Anke Osterloh Molecular Biology and Immunology Section Immunology Department Organizer and Chairman BNITM, Symposium T cell activation: From antigens to pathogens, Organizer, Chairman, Hamburg (12/2016) Teaching University of Hamburg, Department of Biology Dr. Sophia Reindl Virology Department Invited Speaker Oloberto Sánchez Ramos, Faculdad de Ciences Biológicas, Universidad de Cncépcion, Chile (05/2016) EMBL, Hamburg (05/2016) CSSB, Opening Symposium, (11/2017) Prof. Dr. Jonas Schmidt-Chanasit Virology Department Head, Research Group Schmidt-Chanasit (Arbovirology) Offices and Posts Beirat, National Forschungsplattform Zoonosen, Berlin (since 2015) Beirat, Emerging Viral Diseases-Expert Laboratory Network (EVD LabNet) (since 2016) Invited Speaker Gesellschaft für Virologie, Münster (04/2016) ECCMID, Amsterdam, Niederlande (04/2016) ISS, Rom, Italien (04/2016) Biosicherheitskonferenz, München (04/2016) Auswärtiges Amt, Berlin (04/2016) Spanish Society for Virology, Cadiz, Spanien (06/2017) The Entomological Society of China, Nanjing, China (05/2017) DAAD, Hanoi, Vietnam (04/2017) Interpharm, Bonn (04/2017) ITB, Berlin (03/2017) Teaching University of Hamburg, Department of Biology Prof. Dr. Esther Schnettler Molecular Parasitology Department Head, Research Group Schnettler (Molecular Entomology) Offices and Posts Editorial Board, Journal of General Virology (since 2015) Editorial Board, Special Collection Arboviruses and their vectors, Journal of General Virology (since 2017) Invited Speaker Tierärztliche Hochschule Hannover (10/2017) Organizer and Chairman Organizer and Chairman, 2nd International Meeting Arboviruses and their Vectors, Glasgow (09/2017) Teaching BNITM, Diplomkurs Tropenmedizin 125

66 PD Dr. Norbert Schwarz Infection Epidemiology Department Offices and Posts Mitglied, Personalrat BNITM (since 2012) Invited Speaker Deutschland-Konferenz der UAEM (11/2016) Teaching BNITM, Diplomkurs Tropenmedizin BNITM, Kurs medizinisches Fachpersonal, BNITM Universitätsklinikum Hamburg-Eppendorf University of Applied Sciences Hamburg HAW, Hamburg GIBACHT Einführungskurs German Partnership Programme for Excellence in Biological and Health Security, Auswärtiges Amt Iranian-German Summer School on field Epidemiology Dr. Tobias Spielmann Molecular Parasitology Department Head, Research Group Spielmann (Malaria) Offices and Posts Editor, PLoS ONE (since 2011) Editor, Molecular and Biochemical Parasitology (since 2013) Faculty of 1000 ( ) Deputy Director, CSSB, Hamburg Invited Speaker Symposium in Honor of Klaus Lingelbach, University of Marburg (11/2016) University of Heidelberg (11/2016) Emerging Science Convention, DESY, Hamburg (11/2016) University of Genf, Geneva, Schweiz (05/2017) University of Saarbrücken (06/2017) Swiss TPH, Basel, Schweiz (09/2017) Inivited Seminar, Glasgow, Scotland (10/2017) Robert-Koch-Institut, Wernigerode (12/2017) Organizer and Chairman Chairman, SPP 1580 Conference, Glashütten (04/2017) Teaching University of Hamburg Prof. Dr. Egbert Tannich Molecular Biology and immunology Section Head, Molecular Parasitology Department Offices and Posts Editorial Board Member, Molecular and Biochemical Parasitology (since 1994) Editorial Board Member, Parasitology International (since 1998) Beirat, Qualitätssicherungskommission der DGHM: Bereich Ringversuche Parasitologie) (since 2003) Beirat, Deutsche Gesellschaft für Tropenmedizin und Internationale Gesundheit (since 2005) Fachberater, Institut für Standardisierung und Dokumentation im Medizinischen Laboratorium (since 2005) Ringversuchsleiter, Institut für Standardisierung und Dokumentation im Medizinischen Laboratorium (since 2005) Fachberater, Bundesärztekammer (since 2009) Fachberater, BG Chemie, Heidelberg (since 2011) Vorsitzender, Deutsche Gesellschaft für Parasitologie (since 2013) Fachberater, KfW Entwicklungsbank (since 2014) Mitglied, Nationale Expertenkommission Stechmücken als Überträger von Krankheitserregern (since 2016) Invited Speaker Cost-Meeting, Robert-Koch-Institut, Berlin (06/2016) Landesumweltamt Hessen, Wiesbaden (06/2016) NEI-Treffen, Helmholtz-Zentrum für Infektionsforschung, Braunschweig (09/2016) Bundeswehrkrankenhaus, Hamburg (11/2016) Medizinische Hochschule Hannover (02/2017) Bundeswehrkrankenhaus Hamburg (02/2017, 07/2017, 09/2017) INSTAND, Düsseldorf (03/2017) Umweltbundesamt, Berlin (03/2017) National Symposium on Zoonoses Research, Zoonoseplattform, Berlin (10/2017) DVTA, Dresden (11/2017) BNITM, Refresherkurs (11/2017) Organizer and Chairman Scientific Committee, Chairman, 27. Jahrestagung der DGP, Göttingen (03/2016) Scientific Committee, Chairman, 25. Jahrestagung der DTG, Bonn (10/2016) Scientific Committee, Chairman, 6th European Congress of Virology, Hamburg (10/2016) Teaching University of Hamburg, Faculty of Medicine BNITM, Diplomkurs Tropenmedizin Prof. Dr. Dennis Tappe Clinical Research Section Head, Research Group Tappe (Zoonoses) Offices and Posts Stellv. Leitung, Arbeitsgemeinschaft Helminthen, Paul-Ehrlich- Gesellschaft (PEG), Frankfurt/Main (since 2014) Invited Speaker 14. Symposium Impf- und Reisemedizin, Frankfurt am Main (03/2016) 26th ECCMID, Amsterdam, Niederlande (04/2016) 15th Medical Biodefense Conference, München (04/2016) 16. Kongress für Infektiologie und Tropenmedizin (KIT 2016), Würzburg (06/2016) Paul-Ehrlich-Institut, Langen (09/2016) Geneva Symposium on Emerging Viral Diseases, Geneva, Schweiz (11/2016) XXII. Symposium Reise- und Impfmedizin Internationale Gesundheit -, Auswärtiges Amt, Berlin (04/2017) REMMDI Regensburg (04/2017) Bundesinstitut für Risikobewertung, Berlin (09/2017) Riemser Diagnostik-Tage, Friedrich-Loeffler-Institut, Insel Riems (11/2017) Teaching BNITM, Diplomkurs Tropenmedizin BNITM, Tropenkurs für medizinisches Fachpersonal BNITM, Refresherkurs BNITM, Tag der Reisegesundheit University of Würzburg, Faculty of Medicine Dr. Thorsten Thye Clinical Research Section Offices and Posts Assoc. Editor, Tropical Medicine and International Health Teaching University of Hamburg, Faculty of Medicine BNITM, Bioinformatic Service Dr. Christian Timmann Clinical Research Section Teaching University of Hamburg, Medizin BNITM, Diplomkurs Tropenmedizin BNITM, Refresherkurs BNITM, Kurs Flüchtlingsmedizin BNITM, Kurs für medizinisches Fachpersonal Medienresonanz 2016 insgesamt >1.200 Meldungen Print, HF, TV >3.000 Meldungen Online Februar 2016 Zika wird von der WHO als Notfall auf globaler Ebene ausgerufen Am BNITM startet das Projekt CuLiFo des BMEL März 2016 Möglicher Dengue-Impfstoff kommt auf den Markt Bestattungsmitarbeiter stecktich mit Lassa-Fieber an 686 Publikumszeitschriften & Zeitungen Fachzeitschriften Nachrichtenagenturen TV Oktober 2016 Usutu-Ausbruch in Deutschland und angrenzenden Ländern BNITM in den Medien

67 Klinisches Labor Virologie Parasiten, spez. Bakterien Untersuchungen je Quartal 1_2013 2_2013 3_2013 4_2013 1_2014 2_2014 3_2014 4_2014 1_2015 2_2015 3_2015 4_2015 1_2016 2_2016 3_2016 Zika-Epidemie in Lateinamerika CHRONIK Stephan Albani, MdB Januar 2016 Anfang 2016 breiten sich Zika-Infektionen, die im März 2015 erstmals in Brasilien beobachtet und im BNITM diagnostiziert wurden, über ganz Lateinamerika aus. Als WHO Kollaborations- Zentrum für Arboviren testet das BNITM täglich bis zu einhundert eingesandte Proben. 25. Januar 2016 Stephan Albani, MdB, der im deutschen Bundestag als Experte für armutsbedingte Erkrankungen gilt, informiert sich über die Arbeit des Instituts LCI Symposium Vaccines 27. bis 29. Januar 2016 Rund 120 internationale Infektionsforscher kommen auf dem LCI Symposium Vaccines zusammen. Am Vorabend findet eine öffentliche Podiumsdiskussion zum Thema Masern, Grippe, Ebola Sinn und Unsinn rund ums Impfen im Lichthof der Staats- und Universitätsbibliothek Hamburg statt. 06. Februar 2016 Dr. Stephan Schöps, Generaloberstabsarzt und kommissarischer Kommandeur der Gesundheitseinrichtungen der Bundeswehr kommt zum Dienstaufsichtsbesuch an den Fachbereich Tropenmedizin der Bundeswehr in das Instititut. Zusammen mit Generalarzt Dr. Joachim Hoitz absolviert er ein mehrtägiges Präsentationsprogramm. Dr. Stephan Schöps 01. bis 19. Februar 2016 Im Kurs Medizin in den Tropen für medizinisches Fachpersonal bilden sich 24 Teilnehmerinnen und Teilnehmer in Tropenmedizin, Public Health und Gesundheitsmanagement fort. 15. Februar 2016 Birgit Müller verlässt die Verwaltung der Medizinischen Fakultät der Universität Hamburg und wird neue kaufmännische Geschäftsführerin des Instituts. Sie löst Udo Gawenda ab, der nach 10-jähriger Tätigkeit am Institut in die Hamburger Finanzbehörde zurückkehrt. 22. Februar 2016 Frau Dr. Maria Flachsbarth, Staatssekretärin im Bundesministerium für Ernährung und Landwirtschaft (BMEL), eröffnet im Institut feierlich die neuen Verbundprojekte CuliMo und Culi- Fo, in denen die saisonale, klimaabhängige Verbreitung und genetische Birgit Müller Variabilität einheimischer Stechmücken erforscht werden und insbesondere auch deren Fähigkeit, Infektionserreger zu übertragen. 25. Februar 2016 Der Präsident der Leibniz-Gemeinschaft, Prof. Dr. Matthias Kleiner, besichtigt im Rahmen eines Antrittsbesuchs das BNITM. Prof. Horstmann stellt ihm Infrastrukturen und Forschungsschwerpunkte des Instituts vor. 01. April 2016 Dr. Esther Schnettler wird aus Glasgow auf eine W2-Professur für Medizinische Entomologie der MIN-Fakultät der Universität Hamburg berufen. Vom BNITM wird sie mit einer Arbeitsgruppe ausgestattet, die gefördert durch das Deutsche Zentrum für Infektionsforschung (DZIF) Abwehrreaktionen und Vektorkompetenz von Insekten untersucht. BMEL-Staatssekretärin Dr. Flachsbarth eröffnet Mückenforschung 01. April bis 24. Juni 2016 Im zwölfwöchigen Diplomkurs Tropenmedizin bereiten sich 37 Ärztinnen und Ärzte sowie Biologinnen und Biologen aus Deutschland und Österreich auf eine Tätigkeit in Entwicklungsländern vor. 28. Juni Schülerinnen und Schüler erhalten beim Boys & Girls Day einen Einblick in die Forschung des Instituts. Sie werden in den Laboratorien von 17 Wissenschaftlerinnen und Wissenschaftlern betreut. Juni und Juli 2016 Für die Dokumentation Mückenforschung am Hamburger Tropeninstitut begleiten Filmteams des NDR Prof. Jonas Schmidt-Chanasit und seine Arbeitsgruppe bei ihren Untersuchungen zur Rolle von Stechmücken bei der Übertragung von Virusinfektionen in Deutschland. Prof. Kleiner und Prof. Horstmann 09. Juni 2016 Beim alljährlichen Sportfest messen sich Teams aus Mitgliedern des Instituts, der Bundeswehr und von Teilnehmerinnen und Teilnehmern des Diplomkurses Tropenmedizin im Rasenvolleyball. In den Pausen wird Gegrilltes gereicht. 24. Juni 2016 Dr. rer. nat. Lisa Oestereich (Abt. Virologie) und Dr. med. Maja Nielsen (AG May) erhalten den mit dotierten Promotionspreis der Vereinigung der Freunde des Tropeninstituts. Dr. Oestereich entwickelte ein Mausmodell für Lassa-Fieber, Dr. Nielsen untersuchte lebensbedrohliche bakterielle Blutinfektionen bei afrikanischen Kleinkindern. Im Anschluss treffen sich aktuelle und ehemalige Mitarbeiter und Mitarbeiterinnen des Instituts, Mitglieder des Fördervereins, Diplomkursabsolventen sowie ehemalige Kursisten zum alljährlichen Sommerfest. Kurs Medizin in den Tropen Dr. Esther Schnettler Diplomkurs Tropenmedizin Girls & Boys Day Filmteam im BNITM

68 Dr. Lisa Oestereich (Abt. Virologie) Dr. Maja Nielsen (AG May) 27. August bis 15. September 2016 Zusammen mit der Tehran University of Medical Sciences, der Hamburger Hochschule für Angewandte Wissenschaften und dem Universitätsklinikum Hamburg-Eppendorf organisiert das BNITM in Teheran einen Kurs über Epidemiologie und Infektionsschutz für internationale Mediziner und Wissenschaftler. Der Kurs wird 2017 erneut veranstaltet. 01. Oktober 2016 Die Sektionen Parasitologie und Immunologie und Virologie werden zu Molekularbiologie und Immunologie zusammengelegt, die Epidemiologie wird als eigenständige Sektion etabliert und vervollständigt zusammen mit Klinischer Forschung das Konzept der drei Säulen von erregerorientierter, patientenorientierter und populationsbasierter Forschung am Institut. Besuch aus Teheran 10. Oktober 2016 Hamburgs Erster Bürgermeister Olaf Scholz besucht das Institut, besichtigt Hochsicherheitslabor und Insektenzucht und diskutiert mit dem Vorstand eingehend die Möglichkeiten eines Ausbaus der Infektionsforschung in Hamburg. 10. bis 14. Oktober 2016 Der Bundeswehr-Fachbereich Tropenmedizin veranstaltete unter Federführung des NATO Centre of Excellence for Military Medicine (MilMedCoE) vom den internationalen Lehrgang Management of Infectious Diseases during Missions, an dem 20 Sanitätsoffiziere aus 8 Nationen teilnahmen. Lehrgangsinhalte waren die Sensibilisierung für tropische Infektionskrankheiten, deren Bedeutung für militärische Auslandseinsätze in Gebieten mit eingeschränkter lokaler Gesundheitsversorgung, und eine Einführung in die Grundlagen der Präventivmedizin und den Infektionsschutz. Prof. Horstmann und Olaf Scholz, erster Bürgermeister der Freien und Hansestadt Hamburg 19. Oktober 2016 Zur Eröffnung des 6. European Congress of Virology (ECV) in Hamburg besichtigen die Teilnehmerinnen und Teilnehmer in kleinen Gruppen Institute die sich mit Virusforschung befassen. Darunter das gestgebende Heinrich-Pette-Institut und das BNITM. 09. bis 10. November 2016 Wie alle sieben Jahre wird das Institut als Mitglied der Leibniz-Gemeinschaft evaluiert. Eine 20-köpfige Bewertungsgruppe beleuchtet zwei Tage lang jeden Winkel des Instituts. Kleingruppe des ECV besichtigt das BNITM Abschied von Prof. Fleischer Ornigramm des BNITM Bürgermeister Olaf Scholz besichtigt das BNITM Mitglieder der Leibniz-Gemeinschaft evaluieren das BNITM Lehrgang Bundeswehr/NATO 20. bis 25. November 2016 Prof. Horstmann ist eingeladen, eine Delegation der Hamburger Behörde für Wirtschaft, Verkehr und Innovation unter Leitung von Staatsrat Dr. Bösinger auf eine Reise nach Sao Paulo und Rio de Janeiro zu begleiten. In der Wirtschaftsbehörde regt sich Interesse an einer Verwertung der Diagnostik des BNITM. 01. Dezember 2016 Mit einem Symposium T cell activation: From antigens to pathogens feiert das Institut den Abschied von Prof. Bernhard Fleischer, der 24 Jahre am BNITM arbeitete davon 12 Jahre als Direktor. Unter den Teilnehmenden sind zahlreiche ehemalige Kolleginnen und Kollegen sowie Freunde von Bernhard Fleischer. 01. Januar 2017 Priv.-Doz. Dr. Dennis Tappe wird nach internationaler Ausschreibung zum Arbeitsgruppenleiter ernannt. Unter dem Titel Zoonosen wird seine AG insbesondere den Nachweis von Infektionserregern in Geweben verbessern und im Rahmen des Nationalen Referenzzentrums Ausbrüche von Infektionskrankheiten untersuchen. 19. bis 20. Januar 2017 Zum Thema Evolution and Infection tauschen sich 150 internationale Wissenschaftlerinnen und Wissenschaftler auf dem diesjährige LCI-Symposium aus, das alljährlich gemeinsam mit FZB und HPI im historischen Hörsaal des BNITM veranstaltet wird. 30. Januar bis 17. Februar 2017 Mit einem dreiwöchigen Kurs Medizin in den Tropen werden 35 Angehörige des medizinischen Fachpersonals auf Arbeiten in Entwicklungsländern vorbereitet. 23. Februar 2017 Im Rahmen der Internationalen Biologie Olympiade, die vom Leibniz-Institut für die Pädagogik der Naturwissenschaften und Mathematik ausgerichtet wird, werden 45 Schülerinnen und Schüler zur Belohnung für ihre erfolgreiche Teilnahme sowie 15 Lehrkräfte über die Arbeit des Instituts informiert. 28. Februar 2017 Die Stadt Nagasaki plant den Bau eines Hochsicherheitslabors. Hierfür informiert sich eine 24-köpfige japanische Delegation über Ausstattung und Betrieb des Labors am BNITM. März 2017 Prof. Dr. Jürgen May wird nach internationaler Ausschreibung von der Medizinischen Fakultät der Universität Hamburg auf eine W3-Professur Epidemiologie der Tropenkrankheiten berufen und vom Kuratorium des BNITM zum Leiter der Abteilung Infektionsepidemiologie bestellt. Prof. Horstmann mit einer Hamburger Delegation auf Brasilienreise Arbeitsgruppe Zoonosen unter Leitung von Dr. Tappe Prof. Dr. Jürgen May

69 LCI-Symposium Evolution and Infection Kurs Medizin in den Tropen Erfolgreiche Absolventen der Biologie Olympiade Japanische Delegation inspiziert Hochsicherheitslabor 03. April bis 30. Juni 2017 Im dreimonatigen Diplomkursus Tropenmedizin werden 38 Ärztinnen und Ärzte aus Deutschland, Österreich und der Schweiz in allen Aspekten der ärztlichen Versorgung von armutsbedingten Erkrankungen fortgebildet. April 2017 Forschungsstipendiaten der Alexandervon-Humboldt-Stiftung am BNITM: Dr. Vanessa Adaui aus Peru wird in der AG Clos die Biologie von Leishmanien mittels der CRISPR-Cas9-Technik untersuchen und Dr. Rafael de Freitas e Silva aus Brasilien in der AG Jacobs die Immunantwort gegen Leishmanien. 22. April 2017 Für die Verwendung fundierter Daten und gegen Fake News demonstrieren auf dem March for Science rund Personen in Hamburg, etwa in Deutschland und weltweit Hunderttausende. Die LCI-Institute BNITM, HPI und FZB sind offizielle Unterstützer und mit ca. 50 Mitarbeiterinnen und Mitarbeitern vertreten. 27. April 2017 Am Girls & Boys Day lernen 34 Schülerinnen und Schüler im Alter von 10 bis 14 Jahren das Institut kennen. Sie werden von insgesamt 18 Patinnen und Paten aus der Epidemiologie, Immunologie, Parasitologie, Virologie und Zellbiologie betreut. 19. Mai 2017 Die internationalen Teilnehmer und Teilnehmerinnen der Follow-Up Conference on German-African Cooperation Projects in Infectiology der DFG besuchen das Institut. 30. Mai 2017 Im Rahmen der Aktion Leibniz im Bundestag diskutieren Dr. Dennis Tappe und Prof. Jürgen May mit einzelnen Bundestagabgeordneten in Berlin. 05. bis 28. Juni 2017 BNITM und die Hamburger Hochschule für angewandte Wissenschaften veranstalten einen vierwöchigen Sommerkurs Education And Research oriented Training in Health Sciences (EARTHS). 25 überwiegend afrikanische Teilnehmende bilden sich u.a. in Didaktik, ethischen Anforderungen und interkulturellen Lehrmethoden fort. 15. bis 17. Juni 2017 Die naturwissenschaftlichen Promovierenden des Instituts haben erstmals eine Klausur organisiert. In Hörnum auf Sylt diskutieren sieben Postdoktoranden, fünfzehn Promovierende und eine Masterstudentin zwei Tage lang über ihre Erfahrungen im Institut und stärken durch teambildende Aktionen ihren Zusammenhalt und Austausch. 21. Juni 2017 Der Gleichstellungsbeauftragten des Instituts, Nicole Gilberger, wird in Berlin feierlich das Zertifikat für das Audit berufundfamilie überreicht, um das Engagement des Instituts für die Stärkung einer familien- und lebensphasenbewussten Personalpolitik zu würdigen. 29. Juni 2017 Mit einer Feierstunde wird das Centre for Structural Systems Biology (CSSB) am Deutschen Elektronensynchrotron (DESY) in Hamburg-Bahrenfeld eröffnet. Das BNITM wird mit seiner Abteilung für Zelluläre Parasitologie unter der Leitung von Prof. Tim Gilberger im CSSB vertreten. Humboldt-Stipendiaten am BNITM 30. Juni 2017 Dr. Lilli Gerstenmeier (AG Hagedorn) und Dr. Paolo Mesén-Ramírez (AG Spielmann) erhalten den mit dotierten Promotionspreis der Vereinigung der Freunde des Tropeninstituts. Dr. Gerstenmeier arbeitete über den Austritt von Mykobakterien aus ihren Wirtszellen, Dr. Mesén-Ramírez über den Protein-Export von Malariaparasiten. Im Anschluss treffen sich aktuelle und ehemalige Mitarbeiter und Mitarbeiterinnen des Instituts, Mitglieder des Fördervereins, Diplomkursabsolventen sowie ehemalige Kursisten zum alljährlichen Sommerfest. Bei strömendem Regen findet die Feier überwiegend im Gebäude statt. 01. Juli 2017 Am Auffrischkurs Tropenmedizin nehmen 110 ehemalige Absolventen des Diplomkurses Tropenmedizin teil. 07. bis 08. Juli 2017 G20: STOP Neglected Tropical Diseases fordert das BNITM auf einem Banner am Institutsgebäude anlässlich des G20-Gipfels in Hamburg. Da sein Gebäude deutlich sichtbar oberhalb des Hamburger Hafens liegt, macht es sich zum Sprachrohr auch für verschiedene nichtstaatliche Organisationen. March for Science 12. Juli 2017 Der Senat der Leibniz-Gemeinschaft teilt seine Stellungnahme zur Evaluierung des Instituts im November 2016 mit. Er empfiehlt, die gemeinsame Förderung des Instituts durch Bund und Länder für weitere sieben Jahre fortzusetzen. Die insgesamt 15 Abteilungen und Arbeitsgruppen werden überwiegend mit sehr gut bewertet, und das Zusammenspiel von Laborforschung, patientenorientierter klinischer Forschung und Feldforschung wird gelobt. 07. bis 11. August 2017 Die 10th Summer School for Young Parasitologists der Deutschen Gesellschaft für Parasitologie bietet 16 Master- und PhD-Studierenden aus Deutschland, England, Frankreich und der Schweiz vor allem praktische Übungen zu Techniken von Zellkulturen, immunbiologischen Arbeiten und bildgebenden Verfahren. Girls & Boys Day Besuch einer deutsch-afrikanischen DFG-Konferenz Transporter EMLab Diplomkurs Tropenmedizin Sommerkurs in Medizinpädagogik 1. Klausur der Promovierenden Zertifikat des Audits berufundfamilie CSSB-Eröffnung

70 Sommerfest, Jahresversammlung und Promotionspreise des Fördervereins Dr. Lilli Gerstenmeier 11. August 2017 Im Rahmen des dritten German-Japanese Science Camps besuchen 26 Schülerinnen und Schüler des Leibniz Institute for Science and Mathematics Education und ihre japanischen Mitstreiter das BNITM und informieren sich über Ausbruchsdynamiken tropischer Infektionserreger sowie zu Invasionsstrategien des Malariaerreger Plasmodium falciparum. 25. August 2017 Eine Choleraepidemie im Jahr 1892, vor 125 Jahren, die in Hamburg nahezu Todesopfer forderte, war Anlass, Bernhard Nocht zum ersten Hafenarzt zu ernennen und 1900 unter seiner Leitung ein Institut für Schiffs- und Tropenkrankheiten zu gründen, heute das Bernhard-Nocht-Institut für Tropenmedizin. Dr. Paolo Mesén-Ramírez September 2017 Auf der zweijährlichen gemeinsamen Tagung des Deutschen Zentrums für Infektionsforschung und der Deutschen Gesellschaft für Infektiologie diskutieren 488 Teilnehmer neue Erkenntnisse der Infektionsforschung in einem Kongresshotel gegenüber dem Institut und in Institutsräumen. 12. Oktober 2017 Wirtschaftssenator Frank Horch lädt dieses Jahr im BNITM zu seinem alljährlichen Empfang des Hamburger konsularische Corps. Das BNI beim HSH Nordbank Run 2017 Transparent beim G20 in Hamburg Sommerkurs für junge Parasitologen Jahrestagung deutscher Infektionsforscher 12. Oktober 2017 Im Rahmen eines Deutschlandbesuchs besucht der deutsche Botschafter bei den Vereinten Nationen, Dr. Christoph Heusgen sowie Kolleginnen und Kollegen aus 18 afrikanischen Staaten das Institut, um den deutschen Beitrag zur Erforschung armutsbedingter Erkrankungen darzustellen und so für Unterstützung eines Antrags Deutschlands auf einen nicht-ständigen Sitz im VN- Sicherheitsrat zu werben. 01. November 2017 Prof. Dr. Marylyn Addo zieht mit ihrer Gruppe vom Universitätsklinikum Hamburg-Eppendorf in Laboratorien des BNITM. Sie führt Impfstudien und klinisch-immunologische Untersuchungen durch. 01. November 2017 Dr. César Muñoz-Fontela wechselt vom Heinrich-Pette-Institut als Arbeitsgruppenleiter zum BNITM. Er untersucht mit seiner Gruppe die Immunantwort auf hämorrhagische Fieberviren. 04. November 2017 Zur 7. Nacht des Wissens hören Gäste im Institut bis Mitternacht Vorträge, mikroskopieren und pipettieren, können afrikanisches Essen kosten und am Glücksrad Preise gewinnen. Insgesamt nehmen 58 Hamburger Forschungseinrichtungen an der Nacht teil, die von mehr als Personen besucht werden. 06. November hochrangige internationale Offiziere eines General-Admiralstabslehrgangs der Führungsakademie der Bundeswehr erhalten einen Einblick in den Fachbereich Tropenmedizin der Bundeswehr am Institut. 14. November 2017 Im Rahmen von Konsultationen mit dem Bundesministerium für Bildung und Forschung besucht eine Delegation des Schweizer Staatssekretariats für Bildung, Forschung und Innovation das Institut. VN-Botschafter Dr. Heusgen mit 18 afrikanischen Kolleginnen und Kollegen 17. November 2017 An den Feierlichkeiten zum 20-jährigen Bestehen des Kumasi Centre for Collaborative Research (KCCR) nehmen neben dem Kanzler der Universität Kumasi und Vorstandsmitgliedern des BNITM u.a. der deutsche Botschafter in Ghana sowie hohe Vertreter der ghanaischen Regierung und des Königs der Ashanti teil. November 2017 Ein European Mobile Laboratory (EMLab) wird auf Ersuchen der WHO bei einem Marburg-Virus-Ausbruch in Uganda eingesetzt. 20. November 2017 Mit einem wissenschaftlichen Symposium würdigt das Institut die Arbeit von Dr. Günther Müller (ehemaliger Mitarbeiter des BNITM) und Prof. Werner Slenczka (Universität Marburg), die 1967 das Marburg-Virus identifizierten, neun Jahre vor Entdeckung des nahe verwandten Ebola-Virus. Nacht des Wissens Admiralstabslehrgang Podiumsdiskussion Infections Jahre KCCR 50 Jahre Entdeckung des Marburg-Virus Abschied von Prof. Horstmann Senator Frank Horch empfängt das Hamburger konsularische Corps 13. Dezember 2017 Mit einer Feierstunde verabschiedet das Institut Prof. Rolf Horstmann, der mit wenigen Unterbrechungen 40 Jahre im BNITM tätig war, in den letzten 10 Jahren als Vorstandsvorsitzender. Weggefährten und Freunde kommentieren seine Arbeit, ergänzt durch ein Streichquartett befreundeter Musiker. 18. Dezember 2017 Christos Stylianides, EU-Kommissar für Humanitäre Hilfe und Krisenmanagement, informiert sich über die Arbeitsweise in einem European Mobile Laboratory (EMLab), welche in einem seminarraum erstmals komplett im Institut aufgebaut wurde. Begleitet wird er von Wissenschaftssenatorin Katharina Fegebank sowie zahlreichen Pressevertretern. EU-Kommissar Christos Stylianides informiert sich über EMLab

71 Impressum Herausgeber Bernhard-Nocht-Institut für Tropenmedizin Stiftung öffentlichen Rechts Bernhard-Nocht-Straße Hamburg Tel.: +49 (0) Fax: +49 (0) Verantwortlich Rolf Horstmann Redaktion Jessica Tiedke Anneke Novak-Funk Bildbearbeitung Klaus Jürries Bildnachweis Die Fotografien und Abbildungen haben Autoren und MitarbeiterInnen des Instituts zur Verfügung gestellt. Alle weiteren Quellenangaben: siehe Vermerke an den Abbildungen. Layout und Druck RESET St. PAULI Druckerei, Hamburg Auflage 800 ISSN?

72