PATENTSCHRIFT. Int CI.5: C 12 N 15/00

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1 Europäisches Patentamt European Patent Office Office europeen des brevets Veröffentlichungsnummer: B1 EUROPÄISCHE PATENTSCHRIFT (45) Veröffentlichungstag der Patentschrift: Anmeldenummer: Int CI.5: C 12 N 15/00 (22) Anmeldetag: (54) Hybridplasmide mit einem Streptomyceten- und einem Escherichia coli-replicon. Priorität: DE (43) Veröffentlichungstag der Anmeldung: Patentblatt 85/42 (45) Bekanntmachung des Hinweises auf die Patenterteilung: Patentblatt 90/31 Benannte Vertragsstaaten: AT BE CH DE FR GB IT LI LU NL Entgegenhaltungen: EP-A EP-A EP-A EP-A EP-A JOURNAL OF BACTERIOLOGY, Band 146, Nr. 1, April 1981, Seiten ; J.L. SCHOTTEL et al.: "Cloning and expression in Streptomyces lividans of antibiotic resistance genes derived from Escherichia coli" CURR. TOP. MICROBIOL. IMMUNOL, Band 96, 1982, Seiten 69-95; K.F. CHATER et al.: "Gene cloning in streptomyces" Patentinhaber: HOECHST AKTIENGESELLSCHAFT Postfach D-6230 Frankfurt am Main 80 (DE) Erfinder: Wohlleben, Wolfgang, Dr. Schongauerstrasse 14 D-4800 Bielefeld 1 (DE) Erfinder: Muth, Günter Mergenthaler Weg 8 D-4800 Bielefeld 1 (DE) Erfinder: Pühler, Alfred, Prof. Dr. Am Waldschlösschen 2 D-4800 Bielefeld 15 (DE) Anmerkung: Innerhalb von neun Monaten nach der Bekanntmachung des Hinweises auf die Erteilung des europäischen Patents im Europäischen Patentblatt kann jedermann beim Europäischen Patentamt gegen das erteilte europäische Patent Einspruch einlegen. Der Einspruch ist schriftlich einzureichen und zu begründen. Er gilt erst als eingelegt, wenn die Einspruchsgebühr entrichtet worden ist (Art. 99(1) Europäisches Patentübereinkommen). Courier Press, Leamington Spa, England.

2 DBbcnremung Die Erfindung betrifft eine Gruppe von mindestens zwei in Streptomyceten kompatiblen Pendelvektoren mit einem E. coli-replicon und unterschiedlichen sich von den Plasmiden psg2, psg5 (erhältlich aus Streptomyces ghanaensis DSM 2932) und psvh1 ableitenden Streptomyceten-Replicons, wobei sich vorzugsweise das E. coli-replicon von einem Plasmid der Reihe pbr322, pacyc177 oder pacyc184 ableitet. Die Erfindung betrifft weiterhin die Verwendung von mindestens zweien der Replicons aus der Gruppe der Streptomyceten-Plasmide psg2, psg5 (erhältlich aus Streptomyces ghanaensis DSM 2932) und psvh1 zur Konstruktion von untereinander kompatiblen Pendelvektoren mit einem E. coli- Replikon. Das Streptomyceten-Plasmid psg2 ist aus der EP A und das Streptomyceten-Plasmid psvh1 aus der EP A bekannt. Das Streptomyceten-Plasmid psg5 ist Gegenstand der am gleichen Tag eingereichten europäischen Anmeldung (EP A ). Es ist durch die Figur 1 charakterisiert. Die erfindungsgemäßen Pendelvektoren entstehen durch Fusion vom co//'-plasmiden und den genannten Streptomyceten-Plasmiden und replizieren deshalb sowohl in coli als auch in Streptomyceten autonom. Weiterhin enthalten die erfindungsgemäßen Pendelvektoren Marker, vorzugsweise Resistenzgene, die eine Selektion in Streptomyceten und/oder in co//ermöglichen. Diese Pendelvektoren erlauben dadurch die Anwendung erprobter gentechnischer Methoden in coli, den Rücktransfer nach Streptomyceten und die Untersuchung und Nutzung manipulierter Gene in Streptomyceten. Weitere Aspekte und bevorzugte Ausgestaltungen der Erfindung werden im folgenden näher erläutert. Als Ausgangsplasmide für den co//-anteil dienen bekannte co//'-plasmide, vorzugsweise die aus der Literatur bekannten Plasmide pbr322 und pbr325 (Bolivar et al., Gene 2 (1977) 95; Bolivar, Gene 4 (1978) 121) und insbesondere die Plasmide der pac-reihe, pacyc177 und pacyc184 (Chang et al., J. Bactenol. 734 (1978) 1141). Diese pac-plasmide eignen sich auf Grund ihrer geringen Größe von 4,0 bzw. 4,3 kb hervorragend zur Fusion mit Streptomyceten-Plasmiden. In den erfindungsgemäßen Pendelvektoren können die co//'-dna-sequenzen unverändert vorliegen oder aber modifiziert sein, beispielsweise durch Einbau von Fremdgenen oder Regulationssequenzen. So kann durch Einbau weiterer co//-resistenzgene, beispielsweise durch Einbau eines Mndlll-Fragments aus dem Transposon Tn5 (Jorgensen et al., Mol. gen. Genet. 777 (1977) 65), das ein Gen für Neomycin/ Kanamycin-Resistenz trägt, in die /7//7dlll-Schnittstelle von pacyc184 ein geeignetes Ausgangsplasmid gewonnen werden, das die Bezeichnung pacyc184n (Tab. 3) erhielt. Selbstverständlich eignen sich für die erfindungsgemäßen Pendelvektoren auch in anderer Weise modifizierte co//-plasmide, in denen das ursprüngliche co//'-replikationssystem erhalten bleibt. Als derart modifizierte co//-plasmide gelten auch solche, in die ein weiteres co//'-replikon inseriert ist, beispielsweise eines der vorstehend genannten Plasmide der pac-reihe. Vorteilhaft für die Konstruktion der Pendelvektoren sind modifizierte co//-plasmide mit Resistenzgenen, die in Streptomyceten arbeiten. Diese Streptomyceten-Resistenzgene können auch in ein bereits modifiziertes co//'-plasmid eingesetzt werden, beispielsweise kann in das Plasmid pbr325d (Tab. 1) die Thiostrepton-Resistenz aus dem Streptomyceten-Plasmid plj6 (Thompson et al., Nature 286 (1980) 525) kloniert werden. Man erhält so ein modifiziertes co//-plasmid, psle140 genannt, das zur Konstruktion der erfindungsgemäßen Pendelvektoren verwendet werden kann. Als weitere Beispiele zur Modifizierung der co//-plasmide mit Streptomyceten-Resistenzgenen seien genannt: Das Plasmid psle11, in das das Neomycin-Resistenzgen aus dem Streptomyceten-Plasmid PJJ211 (Kieser et al., Mol. gen. Genet. 755(1982) 223) kloniert wurde, sowie die Plasmide psle40 und 401, die das Thiostrepton-Resistenzgen aus dem Streptomyceten-Plasmid plj6 tragen. In der folgenden Tabelle 1 sind erfindungsgemäß verwendbare Vektoren aufgeführt, die durch Einbau von Resistenzgenen aus Streptomyceten-Plasmiden erhalten werden und zur Konstruktion von Pendelvektoren dienen können:

3 Modifiziertes co//-plasmid E. coli- Replikon TABELLE 1 : Streptomyceten- Klonier- fragment mit stelle Resistenz Resistenz des modifizierten E. co//-piasmids Fig. psle11 pbr325 BamH\ 6,2 kb Bcl\- Fragment von plj211 (Neor) Apr, Cmr, Tcs 10 psle40 pbr325 BamHl 1,1 kb Bcl\- Fragment aus plj6 (Thior) Apr, Cmr, Tcs 15 psle401 pbr325 Bcl\ 1,1 kb Bcl\- Fragment aus plj6 (Thior) Apr, Cmr, Tcr 20 psle140 pbr325d* BamH\ 1,1 kb Bcl\- Fragment aus plj6 (Thior) Apr, Cms, Tcs * pbr325d: pbr325 mit deletiertem kleinem fcori/w/ndlll-fragment In der folgenden Tabelle 2 sind erfindungsgemäße Fusionspiasmide genannt: TABELLE 2: E. coli Streptomyceten- Schnitt- Fusions- Restriktionsl Plasmid plasmid stelle plasmid des Fusionspl. PBR325 psg2 Psti psge1 6 psge pbr325 psvh1 Psti psve1 8 psve2 9 PBR322 psvh1 Psti psve21 10 pbr325 psvh1 BamH\ psveni 4 11 pacyc177 psvh1 Pst\ psve PACYC184 psg5 EcoRI psge55 13 Diese Plasmide dienen einerseits zur vereinfachten Streptomyceten-DNA-Gewinnung aus E. coli, da sie in E. coli stabil sind und in der hohen Kopienzahl des co//-plasmids vorliegen. Andererseits sind sie als Vorstufen zur Konstruktion von Pendelvektoren geeignet. Die Tabelle 3 nennt erfindungsgemäße Pendelvektoren, die aus modifizierten. co//'-plasmiden (Tabelle 1) erhalten wurden und die auf dem co//'-replicon pbr325 basieren: TABELLE 3: Streptomyceten- Modifiziertes Restriktionsplasmid co//-plasmid Pendelvektor karte (Figur) PSVH1 psle40 psw (Pst\) {Psti) (19,5 kb) PSG5 psle11 psw ( cori) ( cori) (24,3 kb) PSG2 psle40 psw154p 16* (partiell Psti) (Psti) (20,7 kb) * nicht komplett hinsichtlich des psle40-anteils, siehe Fig. 3. 3

4 HP B1 rur jeuen renaeiveiaor sma verschiedene Pusionierungsmöglichkeiten der Ausgangsplasmide gegeben. In Figur 16 sind 4 Varianten dargestellt. Bevorzugt angewandt wurde die Variante psw154p2-2. Die erfindungsgemäßen Pendelvektoren mit co//-replica der pbr-reihe sind in coli in jedem Fall stabil; Deletionen im Streptomyceten-Plasmidanteil sind nicht beobachtet worden. In Streptomyces 5 exprimieren psw254, psw311 und psw154p die jeweilige Resistenz (Thiostrepton- bzw. Neomycinresistenz). Die Plasmide können nach S. lividans transformiert werden: ein Beweis dafür, daß die Replikationsgene nicht spezifisch für den ursprünglichen Wirt sind. Aufgrund der Kopienzahl (etwa 10) und der Kompatibilität des Replikons untereinander und mit plj101 und SLP1-2 (US-Patentschrift ) sind die Pendelvektoren geeignet, bestehende Vektorsysteme so zu erweitern, daß komplexe w Biosynthesewege schrittweise in Streptomyces kloniert werden können. In Tabelle 4 sind modifizierte Plasmide der pac-reihe aufgeführt, die Resistenzgene zur Selektion in Streptomyceten tragen und die als Vorstufen zur Konstruktion von Pendelvektoren verwendet werden können: '5 TABELLE 4: Resistenzverhalten Moniertes des modifi- 20 Fur Klonierung Fragment mit Modifiziertes zierten Plasmid der verwendete Streptomyceten- Plasmid der pac- Plasmids in RestriktionspAC-Reihe Schnittstelle Resistenzgen Reihe coli karte (Figur) pacyci 84 N BamHl 3,3 kb BamH\- psle10 Kmr, Cm' Fragment aus plj2 (Neor) PACYC184 BamHl wie oben psle16 Cmr 18 w pacyc184 BamHl 6,9 kb BamHl- psle21 Cmr 19 Fragment aus plj6 (Thior) PACYC184 Bell 1,1kbfic/l- psle41 Cmr, Tcr Fragment aus plj6 (Thior) '0 UIILBI verwenuung aer in i adeue 4 genannten modifizierten Plasmide der pac-reihe können u.a. die in der Tabelle 5 aufgeführten Pendelvektoren konstruiert werden:

5 EP B1 TABELLE 5: Restriktions- Modifiziertes Strepto- karte des 5 Plasmid der myceten- Pendelvektors pac-reihe Restriktion plasmid Restriktion Pendel vektor (Figur) psle10 EcoRI psg5 EcoRI psw to psle16 HindW psg2 HindWl psw psle21 HindWl psg2 HindWl psw psle41 BamHl psg2 Bell psw144bc 24* 15 partiell psle41 BamHl psg2 Bglll psw144bg 25* partiell 20 psle41 BamHl psg2 Bglll psw1 26 psle41 BamHl psvh1 Bglll psw244bg 27* partiell 25 psle41 BamHl psvh1 Bell psw psle41 EcoRI psg5 EcoRI psw344e psle41 BamHl psg5 Bell psw344b 30 * nicht komplett hinsichtlich des psle41 -Anteils, s. Fig. 20. Für jeden Pendelvektor sind verschiedene Fusionierungsmöglichkeiten der Ausgangsplasmide gegeben. In den Figuren sind die Varianten dargestellt. 35 Besonders bevorzugte Pendelvektoren sind die Plasmide der Figuren 25 und 27, und zwar jeweils insbesondere diejenige Variante, bei der die Insertion psle41 mit der Ziffer 1 bezeichnet ist (Figur 27a), sowie die Plasmide der Figuren 26, 28 und 29. Es ist selbstverständich auch möglich, den Streptomycetenplasmid-Anteil der erfindungsgemäßen Vektoren zu modifizieren, indem beispielsweise nicht-essentielle Regionen eliminiert werden. So wurde 40 gefunden, daß beim Plasmid psg5 die Replikationsregion auf dem größten ÄamHI-Fragment (4,45 kb) liegt, und zwar in dem Bereich von 1 bis 3 kb entsprechend Figur 1. Zur Konstruktion von Vektoren, die in Streptomyceten replizieren, genügt somit diese "essentielle Region". Zur Konstruktion eines "Minimalreplicons" bietet sich z.b. das genannte 4,45 kb lange BamHl- Fragment an. Zirkularisiert man dieses Fragment, so erhält man ein Plasmid, das durch singuläre 45 Schnittstellen für Bell, SpM, BamHl, EcoHl und Xhol ausgezeichnet ist. Für die vier letztgenannten Schnittstellen ist gezeigt, daß sie für Klonierungen zur Verfügung stehen. Darüberhinaus liegen auf diesem Fragment noch Schnittstellen für Pvull (bei 12,6, 3,2 und 3,6 kb gemäß Figur 1), die außerhalb der "essentiellen Region" liegen und somit für Klonierungen oder weitere Verkürzung(en) zur Verfügung stehen. Es wurden weiterhin Schnittstellen für Ssfll (bei 0,6, 1,8 und 3,65 kb gemäß Figur 1) gefunden, von 50 denen die mittlere vermutlich in der "essentiellen Region" liegt. Außerdem sind mindestens fünft Sa/I- Schnittstellen vorhanden. Wird beispielsweise das Plasmid psle41 (Figur 20) mit BamHl geöffnet und mit dem 4,45 kbßamhi- Fragment von psg5 ligiert, so resultiert das Hybridplasmid pgm101 (Figur 31, in der im Replicon nur drei Sa/I-Schnittstellen kartiert sind). Dieses Plasmid verfügt u.a. über singuläre Schnittstellen für Hindlll und 55 Xhol in nichtessentiellen Regionen. Zur Selektion stehen die Marker Chloramphenicol-Resistenz (in E. coli) und Thiostrepton-Resistenz (in Streptomyces) zur Verfügung. Die Molekülgröße beträgt 9,9 kb. Eliminiert man aus pgm101 das 1 kb /y//?dlll-x/7ol-fragment und inseriert statt dessen das 1,6 kb M'ndlll-X/iol-Fragment von Tn5, das das ap/7ll-resistenzgen für Neomycin trägt, so entsteht das Hybridplasmid pgm102 (Figur 32, in der im Replicon nur drei Sa/I-Schnittstellen kartiert sind). Dieses 6o repliziert in. coli und S. lividans. Zur Selektion in coli stehen die Chloramphenicol- und die Neomycinresistenz, in S. lividans die Thiostrepton- und die Neomycinresistenz zur Verfügung. Zur Klonierung können in coli die singulären Schnittstellen für EcoRI (Inaktivierung der Chloramphenicol- Resistenz) und Bglll (Inaktivierung der Neomycin-Resistenz), in Streptomyceten die für corv (Inaktivierung der Thiostrepton-Resistenz) und ebenfalls Bglll dienen, außerdem die singulären 65 Schnittstellen für Hindlll un Xhol. 5

6 uie enmuungsgemaisen renaeivektoren mit einem pac-replicon sind in E coli in jedem Fall stabil. Deletionen im Streptomyceten-Plasmidteil sind in coli nicht beobachtet worden. Die in Streptomycesarten ausführlich getesteten Vektoren (insbesondere psw344e, psw1 und psw244bg) sind in den untersuchten Stämmen (u.a. S. lividans, S. geysirensis, S. ghanaensis und S. venezuelae) stabil und 5 exprimieren die Streptomyceten-Resistenzgene. Die entscheidenden Vorteile dieser Vektoren sind: 1. Der Wirtsbereich umfaßtauch Stämme (z.b. S. ghanaensis), die von bisher bekannten Vektoren nicht transformiert werden können. 2. Die Kopienzahl liegt mit etwa 10 in einer Größenordnung, die die bisher bekannten Vektoren nicht w abdecken. Die Kopienzahl anderer Streptomyceten-Plasmide und deren Derivate werden mit 1 (SCP2*, europäische Patentanmeldung mit der Veröffentlichungsnummer ), 3 5 (SLP1.2) und mit 20 Kopien/ Zelle (z.b. für plj101 u.a., Kieser, a.a.o.) angegeben. 3. Die Plasmide psvh1, psg2 und psg5 sowie deren Derivate gehören zu unterschiedlichen Kompatibilitätsklassen. Zudem sind sie mit pljioi- und SLP1.2-Replikons kompatibel. Somit ist es möglich, '5 parallel unterschiedliche Gene auf verschiedenen Replikons in einer Zelle zu untersuchen, und zwar jeweils in ausgesuchter Kopienzahl.,Q Auf Grund ihrer vorteilhaften Eigenschaften eignen sich die erfindungsgemäßen Pendelvektoren nicht nur zur Untersuchung von Genen und zur Kartierung von Replikons (beispielsweise durch Transposon- Mutagenese in coli), sondern auch zur Veränderung und zum Transfer von Genen. Die Arbeitsweise ist allgemein bekannt und beispielsweise in den vorstehend genannten Patentdokumenten, den US- Patentschriften , , , , , , und sowie in dem Lehrbuch von Maniatis et al., Molecular Cloning, Cold Spring Harbor 1982, beschrieben. Die hrtindung betrifft somit auch die Verwendung der erfindungsgemäßen Pendelvektoren zur Expression von hremdgenen in Streptomyceten. In den folgenden Beispielen wird die Erfindung näher erläutert. Zunächst wird die Isolierung des Plasmids psg5 beschrieben: Zur Kultivierung des Stammes S. ghanaensis DSM 2932 für eine anschließende Lyse sind Medien folqende geeignet: Lysemedium A Lysemedium B Lysemedium C Glucose 10 g Yeast extr. 3 g CASO-Bouillon (5 Pepton 4g Pepton 5g (Merck #5459) 30 g Yeast extr. 4g Malzextr. 3g Glycin 10 g KH2P04 2 g Glucose 10 g H20 1 K2HP04 4 g Sucrose 340 g MgS04 0,5 g Glycin 5 g,5 G ycin 10 g MgCI2 6H20 1g H20 11 H B...CM, uuu im cnenmeyerkomen weraen ca. 100 ml Nährmedium mit einer homogenisierten o Einzelkolonie beimpft und 2 3 Tage bei 30 C im Rundschüttler (120 rpm) inkubiert. Ca. 50 ml einer 3 Tage alten, homogenisierten Flüssigkultur werden in JA-20 Bechern einer Beckman- Kuhlzentrifuge J21C geerntet (10 min, rpm, 25 C) und einmal in TESu (10 mm Tris HCl, 1 mm EDTA (ph 8), 10% Sucrose), gewaschen. 2 g Zellen werden in 5 ml Lysozymlösung resuspendiert (0,3 M Sucrose 25 mm Tns-HCI (ph 8), 25 mm EDTA (ph 8), 4 mg/ml Lysozym) und bei 37 C im Rundschüttler (100 rpm) 5 'nkubiert. Nach min sind die Zellen protoplastiert. Durch Zugabe von 2,5 ml Lysemix (0,3 M 2 NaOH, /0 Natrium-Dodecylsulfat) und sofortiges kräftiges Mischen erfolgt die Auflösung der Zellmembran und eine Denaturierung der DNA. Eine 10 minütige Hitzebehandlung (70 C) komplettiert die Lyse und Denaturierung. Bei Raumtemperatur werden 800 ul saure Phenol/Chloroform-Lösung zugegeben Herstellung der sauren Phenol/Chloroform-Lösung: 500 ml Chloroform, 200 ml H20, 500 g Phenol, 0,5 g j Hydroxychinolm mischen und untere Phase benutzen), um die Proteine zu denaturieren und die DNA zu renaturieren. Das Gemisch wird ca. 20 sec in einem Schüttler ( Vortex) durchmischt und dann in der Kuhlzentrifuge pelletiert (15 min, rpm, 4 C). 7 ml des plasmidhaltigen Überstands werden dann in der Ultrazentrifuge weitergereinigt: 7 g CsCI, 7 ml Lysat und 0,2 ml Ethidiumbromidlösung (30 mg/ml) werden gemischt und in einer Ultrazentrifuge? (»Kontron TGA50) 48 h bei rpm (20 C) zentrifugiert. Die Plasmidbande wird nach UV-Bestrahlung

7 über Fluoreszenz sichtbar gemacht und mit der Spritze entnommen. Die Lösung wird entfärbt und dialysiert und steht dann für weitere Untersuchungen zur Verfügung. Sie enthält ca. 1 ug Plasmid-DNA/20 ul Lösung. 5 Beispiel 1: Herstellung des Plasmids psle40 (als Beispiel eines modifizierten Plasmids der pbr-reihe): pbr325-dna kann aus plasmidtragenden Zellen nach den bekannten Verfahren (Maniatis et al.) gewonnen werden. Das Plasmid plj6 kann aus Streptomyces lividans TC14 mit den bekannten Streptomyceten-Techniken isoliert werden (siehe Isolierung von psg5, psg2 oder z.b. Thompson et al., 10 Nature 286 (1980) 525 oder US-Patentschrift ). Zur Klonierung wird das Plasmid pbr325 mit dem Restriktionsenzym BamHl linearisiert. 1 ug DNA wird im Spaltungspuffer (50 mm Tris HCl, ph 8,0, 10 mm MgCI2, 50 mm NaCI) in Gegenwart von* 1 unit BamHl (Hersteller: BRL, Neu Isenburg) 1 h bei 37 C inkubiert. Die Reaktion wird durch Phenolisierung (Maniatis et al.) gestoppt und die DNA durch Ethanolfällung gereinigt. Zur Gewinnung des DNA-Fragments, das die 75 Thiostreptonresistenz trägt, wrid plj6-dna mit Bell geschnitten (Verfahren wie oben, mit der Änderung Bell statt BamHl, Inkubation 50 C statt 37 C). Eine anschließende Behandlung von pbr325 mit alkalischer Phosphatase (aus Kälberdarm, Hersteller: Boehringer Mannheim) entfernt die 5'-Phosphatenden der DNA und verhindert die Religierung von pbr325 (Maniatis et al.). Die beiden DNA-Proben (im Spaltungspuffer) werden gemischt (0,1 ug pbr325 und 1 ug plj6) und auf 70 C erhitzt, um H-Brücken zu öffnen. Durch 20 Zugabe von Mercaptoethanol (Endkonz. 10 mm) und ATP (0,1 mm) werden die Reaktionsbedingungen eingestellt. Die DNA wird in Gegenwart von 1 unit T4-DNA-Ligase (Boehringer Mannheim) bei 4 C für 12 h inkubiert. Mit dem DNA-Gemisch wird coli transformiert (Maniatis et al.) und die Zellen auf Chloramphenicolresistenz und Tetracyclinsensitivität selektioniert. Einzelkolonien werden einer Schnellyse (T. Eckhardt, Plasmid 1 (1978) 584) zur Größenbestimmung 25 unterworfen. Es ist bekannt, daß das Thiostreptonresistenzgen auf einem 1,1 kb langen Bcll-Fragment des plj6-plasmids lokalisiert ist (Kieser et al., Mol. Gen. Genet. 755 (1982) 223), d.h. im Agarosegel wird ein Plasmid der Größe 6,9 kb (pbr325 5,8 kb+thiostrepton-resistenzgen (Thior) 1,1 kb) gesucht. Aus Zellen, die ein Plasmid der geforderten Länge tragen, wird DNA isoliert (s. oben) und durch eine Restriktionsanalyse geklärt, ob das richtige DNA-Fragment inseriert ist. Restriktionsschnittstellen des 30 Fragments sind bekannt (Kieser et al.), so daß die erfolgreiche Klonierung verfiziert werden kann. Beispiel 2: Herstellung des Pendelvektors psw311. Das Plasmid psle11 kann aus coli nach den bekannten Verfahren (Maniatis et al.) gewonnen 35 werden. Das Plasmid psg5 wird aus S. ghanaensis isoliert wie oben beschrieben. Zur Klonierung werden beide Plasmide parallel mit EcoRI linearisiert. 1 ug DNA wird im Spaltungspuffer in Gegenwart von 1 unit cori (Hersteller: Boehringer Mannheim) 1 h bei 37 C inkubiert. Die Reaktion wird durch Phenolisierung gestoppt, die DNA durch Ethanolfällung gereinigt (Maniatis et al.). psle11-dna wird zweckmäßigerweise noch mit alkalischer Phosphatase behandelt, um die 40 Religierung zu unterbinden (Maniatis et al.). Die DNA-Proben (im Spaltungspuffer) werden dann gemischt (0,2 ug psle11, 1 ug psg5), auf 70 C erhitzt und durch Zugabe von Mercaptoethanol (Endkonz. 10 mm) und ATP (0,1 mm) auf die Ligase- Reaktionsbedingungen eingestellt. In Gegenwart von 1 unit T4-DNA-Ligase (Boehringer Mannheim) wird das Gemisch 12 h bei 4 C inkubiert. 45 Anschließend wird das Gemisch nach coli transformiert (Maniatis et al.) und auf Kolonien mit Ampicillinresistenz und Chloramphenicolsensitivität selektioniert. Kolonien mit entsprechendem Resistenzmuster werden einer Schnellyse zur Größenbestimmung unterworfen. Aus Zellen, die ein Plasmid der geforderten Länge (24,3 kb) enthalten, wird Plasmid-DNA isoliert und durch Restriktionsanalyse geklärt, ob der gewünschte Pendelvektor psw311 vorliegt. 50 In analoger Weise können die in der Tabelle 3 genannten Hybridplasmide hergestellt werden. Beispiel 3: Herstellung des Plasmids psle41 (als Beispiel eines modifizierten Plasmids der pac-reihe): Konstruktion von psle41 55 pacyc184-dna kann aus plasmidtragenden Zellen nach den bekannten Verfahren (Maniatis et al.) gewonnen werden. Wildtyp- co/7-zellen besitzen allerdings eine Dam-Methylase, die die DNA so modifizieren, daß die erforderliche Restriktion mit Bell nicht möglich ist. Zur DNA-Isolierung wird in diesem Falle also eine DatrT-Mutante von coli verwendet. Das Plasmid plj6 kann aus Streptomyces lividans TCI4 nach den bekannten Streptomyceten-Techniken 60 isoliert werden (siehe oben). Zur Klonierung wird das Plasmid pacyc184 mit dem Restriktionsenzym Bell linearisiert. 1 ug DNA wird im Spaltungspuffer in Gegenwart von 1 unitßc/l (Hersteller: BRL, Neu-Isenburg) 1 h bei 50 C inkubiert. Die Reaktion wird durch Phenolisierung gestoppt und die DNA durch Ethanolfällung gereinigt. Eine anschließende Behandlung mit alkalischer Phosphatase (aus Kälberdarm, Hersteller: 65 Boehringer Mannheim) entfernt die 5'-Phosphatenden der DNA und verhindert die Religierung von 7

8 ^ur Gewinnung des DNA-Fragments, das die Thiostreptonresistenz trägt, wird plj6-dna mit Bcl\ geschnitten (Verfahren s.o.). Die beiden DNA-Proben (im Spaltungspuffer) werden gemischt (0,1 ug pacyc184, 1 pg plj6) und auf 70 C erhitzt, um H-Brücken zu öffnen. Durch Zugabe von Mercaptoethanol (Endkonz. 10 mm) und ATP (0,1 5 mm) werden die Reaktionsbedingungen eingestellt. Die DNA wird in Gegenwart von 1 unit T4-DNA-Ligase (Boehringer Mannheim) bei 4 C für 12 h inkubiert. Mit dem DNA-Gemisch wird coli transformiert (Maniatis et al.) und die Zellen auf Tetracyclin- und Chloramphenicolresistenz selektioniert. Einzelkolonien werden einer Schnellyse zur Größenbestimmung unterworfen. Im Agarosegel wird ein w Plasmid der Größe 5,4 kb (pacyc184 4,3 kb+thior 1,1 kb) gesucht. Aus Zellen, die ein Plasmid der geforderten Länge tragen, wird DNA isoliert (s. oben) und durch eine Restriktionsanalyse geklärt, ob das richtige DNA-Fragment inseriert ist. Die Restriktionsschnitte des Fragments sind bekannt (Kieser et al.), so daß die erfolgreiche Klonierung verifiziert werden kann. 15 Beispiel 4: Herstellung des Plasmids psw344e Das Plasmid psle41 kann aus E. coli nach den bekannten Verfahren (Maniatis et al.) gewonnen werden. Das Plasmid psg5 wird aus S. ghanaensis 2932 isoliert wie oben beschrieben. Zur Klonierung werden beide Plasmide parallel mit EcoRI linearisiert. 1 ug DNA wird im 20 Spaltungspuffer in Gegenwart von 1 unit EcoRI (Hersteller: Boehringer Mannheim) 1 h bei 37 C inkubiert. Die Reaktion wird durch Phenolisierung gestoppt und die DNA durch Ethanolfällung gereinigt. psle41- DNA wird zweckmäßigerweise noch mit alkalischer Phosphatase behandelt, um die Religierung zu unterbinden. Die DNA-Proben (im Spaltungspuffer) werden dann gemischt (0,2 ug psle41, 1 ug psg5), auf 70 C erhitzt und durch Zugabe von Mercaptoethanol (Endkonz. 10 mm) und ATP (0,1 mm) auf die Ligase- 25 Reaktionsbedingungen eingestellt. In Gegenwart von 1 unit T4-DNA-Ligase (Boehringer Mannheim) wird das Gemisch 12 h bei 4 C inkubiert. Anschließend wird das Gemisch nach. coli transformiert (Maniatis et al.) und auf Kolonien mit Tetracyclinresistenz und Chloramphenicolsensitivität selektioniert. Kolonien mit enstprechendem Resistenzmuster werden einer Schnellyse zur Größenbestimmung unterworfen. Aus Zellen, die ein Plasmid der geforderten Länge (18,1 kb) enthalten, wird DNA isoliert und 30 durch Restriktionsanalyse geklärt, ob die DNA das entsprechende Restriktionsmuster liefert, das bei einer Ligierung von psle41 und psg5 gefordert werden muß. In analoger Weise können die in der Tabelle 5 genannten Hybridplasmide hergestellt werden. 35 Beispiel 5: Yerfänrt man gemäß Beispiel 4, ligiert aber das im folgenden beschriebene, mit BamH\ linearisierte "Minimalreplicon" von psg5 mit ßamHI-geschnittenem psle41, so erhält man den Shuttle-Vektor PGM101. Konstruktion eines Minimalreplikons aus psg5 to Das Plasmid psg5 wird aus S. ghanaensis DSM 2932 wie oben beschrieben isoliert. Die Plasmide psle40 und psle41 können aus coli nach den bekannten Verfahren (Maniatis et al.) gewonnen werden. In psle40 bzw. psle41 werden Fragmente von psg5 kloniert, und zwar d.ie Sph\-, BamH\- und BglU- Fragmente in die Sph\-, BamH\- und SamHI-Schnittstelle des psle41 und die Psfl-Fragmente in die Pst\- Schnittstelle des psle40. Zur Klonierung werden beide Plasmide (je ein psle-plasmid und psg5) parallel 15 mit den obengenannten Enzymen linearisiert. Die Reaktion wird durch Phenolisierung gestoppt und die DNA durch Ethanolfällung gereinigt (Maniatis et al.). psle40- und psle41-dna wird zweckmäßigerweise noch mit alkalischer Phosphatase behandelt, um die Religierung zu unterbinden (Maniatis et al.). Die DNA-Proben (im Spaltungspuffer) werden dann gemischt (0,2 ug psle40 bzw. psle41, 1 ug psg5), <o auf 70 C erhitzt und durch Zugabe von Mercaptoethanol (Endkonz. 10 mm) und ATP (0,1 mm) auf die Ligase-Reaktionsbedingungen eingestellt. In Gegenwart von 1 unitt4-dna-ligase (Boehringer Mannheim) wird das Gemisch 12 h bei 4 C inkubiert. Anschließend wird das Gemisch nach coli transformiert (Maniatis et al.) und bei Verwendung von psle41 auf Kolonien mit Chloramphenicolresistenz und Tetracyclinsensitivität selektioniert. psle40-hybride werden auf Chloramphenicolresistenz und ;5 Ampicillinsensitivität getestet. Kolonien mit entsprechendem Resistenmuster werden einer Schnellyse zur Größenbestimmung (T. Eckhardt, Plasmid 1 (1978) 584) unterworfen. Aus Zellen, die ein Plasmid der geforderten Länge enthalten, wird DNA isoliert und durch Restriktionsanalyse geklärt, ob die erwarteten Fusionsplasmide entstanden sind. Diese Plasmide werden mit den üblichen Verfahren nach S. lividans TK 23 transformiert (K. F. Chater, ;o D. A. Hopwood, T. Kieser und C. J. Thompson: Gene Cloning in Streptomyces, Current Topics in Microbiol. and Immunol. 96, (1982)) und auf Thiostreptonresistenz selektioniert. Aus thiostreptonresistenten S. //V/'da/7s-Kolonien isoliert man Plasmid-DNA mit Standardprozeduren (T. Kieser, Factors Affecting the Isolation of ccc DNA from Streptomyces lividans and coli, Plasmid 12, 19 (1984)) und prüft ihre Zusammensetzung. <5 Alle Plasmide, die aus thiostreptonresistenten Kolonien erhalten werden, tragen die Gene des psg5-

9 EP B1 Plasmids, die zur Replikation benötigt werden. So läßt sich aus dem Gesamtergebnis ein zweckmäßiges "Minimalreplikon" identifizieren (hier das 4,45 kb ßamHI-Fragment), das durch andere Klonierungsexperimente und durch vergleichende überlappende Klonierung weiter minimiert werden kann. Patentansprüche für die Vertragsstaaten: BE, CH, DE, FR, GB, IT, LI, LU, NL, SE 1. Gruppe von mindestens zwei in Streptomyceten kompatiblen Pendelvektoren mit einem E. coli- Replicon und unterschiedlichen sich von den Plasmiden psg2, psg5 (erhältlich aus Streptomyces ghanaensis DSM 2932) und psvh1 ableitenden Streptomyceten-Replicons. 2. Gruppe nach Anspruch 1, in der das E. coli-replicon sich von einem Plasmid der Reihe pbr322, pacyc177 oder pacyc184 ableitet. 3. Verwendung von mindestens zweien der Replicons aus der Gruppe der Streptomyceten-Plasmide psg2, psg5 (erhältlich aus Streptomyces ghanaensis DSM 2932) und psvh1 zur Konstruktion von untereinander kompatiblen Pendelvektoren mit einem E. coli-replikon. Patentanspruch für den Vertragsstaat: AT Verwendung von mindestens zweien der Replicons aus der Gruppe der Streptomyceten-Plasmide psg2, psg5 (erhältlich aus Streptomyces ghanaensis DSM 2932) und psvhi zur Konstruktion von untereinander kompatiblen Pendelvektoren mit einem E. coli-replikon. Revendications pour les Etats Contractants: BE, CH, DE, FR, GB, IT, LI, LU, NL, SE 1. Groupe d'au moins deux vecteurs navette compatibles dans des Streptomyces, comportant un replicon de E co//'et des replicons distincts de Streptomyces, derives des Plasmides psg2, psg5 (pouvant etre obtenus ä partir de Streptomyces ghanaensis DSM 2932) et psvm. 2. Groupe selon la revendication 1, dans lequel le replicon de E. coli derive d'un Plasmide appartenant ä la serie pbr322, pacyc177 ou pacyc Utilisation d'au moins deux des replicons provenant du groupe des Plasmides de Streptomyces psg2, psg5 (pouvant etre obtenus ä partir de Streptomyces ghanaensis DSM 2932) et psvhi, pour la construction de vecteurs navette compatibles entre eux, comportant un replicon de coli. Revendication pour l'etat Contractant: AT Utilisation d'au moins deux des replicons provenant du groupe des plasmides de Streptomyces psg2, psg5 (pouvant etre obtenus ä partir de Streptomyces ghanaensis DSM 2932) et psvhi, pour la construction de vecteurs navette compatibles entre eux, comportant un replicon de coli. Claims for the Contracting States: BE, CH, DE, FR, GB, IT, LI, LU, NL, SE 1. A group of at least two Shuttle vectors which are compatible in Streptomycetes and have an E. Coli replicon and various Streptomycetes replicons deriving from the plasmids psg2, psg5 (obtainable from Streptomyces ghanaensis DSM 2932) and psvhi. 2. A group as claimed in claim 1, in which the E. coli replicon derives from a plasmid of the series pbr322, pacyc177 or pacyc The use of at least two of the replicons from the group of Streptomycetes plasmids psg2, psg5 (obtainable from Streptomyces ghanaensis DSM 2932) and psvhi for the construction of mutually compatible Shuttle vectors with an E. coli replicon. Claim for the Contracting State: AT The use of at least two of the replicons from the group of Streptomycetes plasmids psg2, psg5 (obtainable from Streptomyces ghanaensis DSM 2932) and psvhi for the construction of mutually compatible Shuttle vectors with an E. coli replicon.

10 EcoRI ,0 Barn H1 12,0 irxholo.io U9EcoRV ~«D\/v\ M 10,65 Barn HI X i 10,3 Pst I / Bei 1 1,«//Pst 11,6 FIG.1 Pstl 2.5 -Sphl2,7 ^5 Bglll 8,75 BamHl ZBSphl/^ss Z5 BamHl 7,1 Bglll BamHl 6,35 1

11 2

12 EcoRI FIG. 4 3

13 ClQl 4

14 5

15 2 1 6

16 7

17 M3gl 0 6,85 8

18 EcoRI 0,0 23-3Pf l*1 BdIWB F I G. 1 5 a APstl2,5 < Sphl2,7 3\.BamHl3,8 19,35 Pstl 19,3 Boml^ 4 V-BamHU Kpnl- 173 Pstl 17,1 BamHl 16,3 Pstl "2 16,0 Barn HI Bglll 7,1 J B a m H l im 6 HI, 37,55 hl 7, Pst 1 10,3 Hindffl / l^9rv Bam H1 10'<65 'EcoRIi2,7 BamHIi2,o EcoRI 0,0 F I G. 1 5 b 23,3 ^ ^ V o,? Bell 1,45 ^ J ^ l Pst >v/XP Pst 12.5 vsphl2,7 \^BamHl3,8 u V-BamHH.6 i8,2bamhi_ i7,9pstpr18 i7.ibamhi-r^ä^. 16,9PstI ysvk^ i6,3kpni^v 15 u.9bamhijfl % U,85PstI 7 C 1 /xbglh9,/,5 Pst 110,3.. n BamHl/ u.<._ i^bcii Hindffl «III ; llecorv BamHl 10, / \H9 EcoR BamHl 12.0 f Barn HI 6,35 BglHZl Barn HI 7,5 ^Sphlze Barn Hl 8,75 9

19 10

20 FIG.19 BdIClal Bcir-BamHI EcoRI FIG. 2 0 Bd 10,75 3, ,75HindIII ^ 3,6 EcoRV 3,4 BamHl 3,2Sphl 11

21 21,4 SphI 2i, 2 Bam HI 20,9PstKjy 20,1 BamHl X21 19,9 Pst I\J&\ i9,3kpni-jv^20 /A19 i7,9bamhi // i78ecorv^f18 m i^hmdlll-^l^n- EcoRI 0,0 Xholo.1 fiel FIG.21a 11,45 Pst 11,6 Pstl 2.5 "SphI 2,7 v.bamhl3,8 4A^BamHl4,6 i7,4bglliy^v ZT Bglllzi 172PstI j^16 8^/0 Barn HI ,25 Pstl^X 1C / ^Sphl7,8 löjxhoi/v15 9!5,85BamHI ^^BamHI^s 7^ 14,65 Bgl IPV 14,3 Hindlll \ \BglU9,45 Pst 110,3 14,30101 EcoRIi27/kEcoRV BamHl 10,6 Barn H1 12,0 / Barn HI 6,35 21,2 BamHl 20,9 Pst in 20,1 BamHl > 19,9Pstl^>/^ i9,3kpni^//i II i7,9bamhi /[ l78ecorv^t18 i7,7hindiii^3 W 2USphI 22,Bcll t ' Ä FIG. 21b -Barn HI 2,05 ^Pstl2,4 xbgl 113,25 X/BamHl3,95 4 \ SphI w Barn HI 5,2 Bglll 5,6 H ^ / Barn HI 6,35 17,2Pstl \\ ; 16,25Pstl^3C 16.1 Xhol / \ 9^ ^BamHl8.i 15,65 BamHl /^BamH18,9 14,65BglIl Hindlll,ßMSZ m T u vphi1 Sph1 10,0 14,3ClQl EcoRIJ^Xhoi2,6y) V Pstli0,2 Bell US Pstm,i 12

22 EP B1 Clal Hindlll BamHl FIG. 2 2 Pst I BamHl Sali EcoRI Xlal 4ind DI Pstl 13

23 2 3 1 Bgl6,85 14

24 15

25 Pst 116, 55 i6,5ecorv HindülQO ^ [i6.i5 Ben HClal0.7] D5,15BclI 5Bcin L i FIG. 2 6 [13.7CIQI] BglII/BamHU25 Eco RV4.45 "Hind III 4.6 ClaU.6 BamHl/ Bglll Sphl9,45 [Bcll8,05] ClalEco RV

26 17

27 BamHI 16,3^ Xhol 17,1- FIG. 2 7 a ^\/Kpnl2,5 Bglll 1^5 ^J]5 Barn H1 1/»,/, Kpnli3,3 [BclH3,25p= psvhi 3A Bglll /BamHl 3,6 ^^V^VHind K 3,95 1 Cla 1 3, J Kpn 112,75^" [CIaHZ.z.5 BamHH2.3^ Xhol 12,2/ Bglll i2/> Kpn In// Claln,65 BamHl 11,1 I >hl8,8 Barn HI /Bglll 9.0 Cmr/7 EcoRI 5,6 ^NBcl v Clal7,05 [Bell 7,4].18

28 14,85 Bglll V 14,15 BamHl/ 13,2Sphl 12,9 BamHl i2,5bglii-a 17,3EcoRV 16,05 BamHl 15,7Pstl\/ / n,75bamhi i74bamhi EcoRI 0.0 io,obamhl VPstl7,9 BamHl 9,2 SphI 6,1 Bdl075 ^EcoRVlB FIG. r i r 2 9 /~Clah(45 M b. ^V^BclUB 2^Jcr \ \ SphI 3,2 \c^bamhl3,4 c/1 vfc^ecorv3,6 V\Hind III 3,75 t"l Cial 3.75 pacyc 184 I /<^EcoRl5.4 6/ Xhol 5,5 s Bd 16,85 Pst 17,0 19

29 20