Gattung. Art. M. hominis

Transkript

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4 Gattung Mycoplasma Art M. pneumonie M. hominis Ureaplasma U. urealyticum

5 Grösse: 0,1 0,3 μm Medmicro ch37

6 ELMI Bergey s Fig. 10.4

7 Elektronmikroskop

8 ELMI Bergey s Fig. 10.1

9 Mycoplasma Transformation: filamentöse Formen Kokken/Ketteformen Phasenkontrast Mikroskop; shots: 2-5,5 min. Bergey s Fig. 10.2

10 Grösse: 0,1 0,3 μm Medmicro ch37

11 Kolonien: 0,1 0,2 mm Spiegeleiförmige Kolonien www-instruct.nmu.edu,

12 Epizelluläre Bakterien Medmicro ch37

13 FIGURE 37-4 Pathogenesis and disease sites of infection by M pneumoniae and U urealyticum. Medmicro ch37

14 Primär Atypische Pneumonie Epididymitis Infektionen: Respirationstrakt Urogenitaltrakt

15 Menschen adaptierte: in Mycoplasma und Ureaplasma Genus sind 16 species Pathogen: 6 species Hahn: Tab Mycoplasma pneumoniae: Obere Respirationstrakt, Primär Atypische Pneumonie (PAP), Erythema Mycoplasma hominis: Pyelonephritis, Epididymitis, Endometritis, PID, Frühgeburt M. fermentans: Rheumatoid Arthritis M. genitalium: NGU (non-gonorrheal urethritis), arthritis M. penetrans: Immunsupprimierte Ureaplasma urealyticum: NGU, Cervicitis, Endometritis, Abort, Frühgeburt, Steinbildung in UT, Neugeborenen: Pneumonie, Meningitis, Sepsis

16 Diagnose: Antigen- und Antikörpernachweis (ELISA, Western-blot) PCR Therapie: Doxycyclin (Fluoroquinolone, Makrolide) Zellkultur Kontamination

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18 Chlamydiaceae Chlamydophila z z Taxonomy hp Chlamydia hp hp hp

19 Genus Art Chlamydia C. trachomatis Serotyp A-C Serotyp D-K Serotyp L1-L3 Chlamydophila C. pneumoniae C. psittaci

20 Definition: Gram-negative (LPS + peptidoglykan), obligat intracelluläre Bakterien, Energie- (ATP) -parasiten, Extrazelluläre Intrazelluläre Form

21 Grösse: 0,3 0,5 μm Elementarkörperchen Einschlusskörperchen Obligat intrazelluläre Vermehrung Initialkörperchen Retikulärzelle (RB)

22 Generationszeit: Stunden

23 Elektronmikroskop, EB und RB

24 Fig Chlamydia. Direct immunofluorescence elementary bodies of C. trachomatis, which appear as bright green dots. By courtesy of Dr. G.L. Ridgeway.

25 Fig. 7.8 Chlamydia. Tissue culture of C. trachomatis in McCoy cells of mouse. Dark field Giemsa. Intracytoplasmic inclusion bodies are yellow. Iodine stain inclusion bodies

26 Geschichte C. trachomatis 1907 Prowazek, Halberstädter C. psittaci 1930 Bedson 1957 embrioniertes Hühnerei 1965 Zellkultur C. pneumoniae 1989 Grayston

27 pathmicro.med.sc.edu Pathogenese, Infektion

28 FIGURE 39-1 Clinical manifestations of chlamydial infections. Medmicro ch39

29 Erkrankungen C. trachomatis: Serotypen A, B, Ba, C: Trachom D-K: Okulo-genitale Infektionen, Pneumonie in Neugeborenen L1-L3: Lymphogranuloma venereum (LGV) Zielzelle: Epithel-, Lymphoidzelle

30 C. trachomatis (A-C) TRACHOM Follikuläre Keratokonjunktivitis (Erblindung!) Übertragung: direkt Kontakt Schmierinfektion Prophylaxe: persönliche Hygiene Therapie: lokale, mit Tetracycline

31 W619 Trachoma early lesions: follicles

32 W620 Trachoma entropion and trichiasis

33 W621 Trachoma late corneal scarring and trichiasis

34 Trachom Seit Altertum bekannt (China, Egypt), auch heute ist die häufigste Ursache der Erblindung Weltweit 160 Millionen neue Infektionen 500 Millionen Erkrankten, 6-8 Millionen Blinden WHO Program: Eliminierung von Trachom bis 2020

35 Trachom WHO

36 C. trachomatis (D-K) Okulo-genitale Infektionen Einschlusskörperchenkonjunktivitis Schwimmbadkonjuktivitis Infektionen des Urogenitaltraktes als STD NGU, Epidydimitis, Prostatitis u.a. Cervicitis, Endometritis, Adnexitis, PID u.a. Schwangere: in 20% ist nachweisbar Retardation, AB, Intrauterin Tod, Frühgeburt, Placenta Insufficienz Neugeboreneninfektionen: Konjunktivitis, Pneumonie

37 Konjuktivitis

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39 Fig Chlamydia ophthalmia neonatorum. This is now the most common form of neonatal conjunctivitis. By courtesy of Dr. G. Ridgeway.

40 Fig Chlamydia conjunctivitis. Intracytoplasmic inclusion bodies in an epithelial cell from a neonates eye. By courtesy of Dr. G. Ridgeway.

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42 Urethritis Cervicitis

43 C. trachomatis D-K cervicitis

44 W187 C. trachomatis Cervicitis mucopurulent discharge + oedema

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46 Fig. 7.9 Chlamydia urethritis. Meatitis with non-purulent urethral discharge.

47 W186 Chlamydia trachomatis Urethritis

48 Fig Chlamydia urethritis. Urethral discharge showing typical large intracytoplasmic inclusion body. Wright s stain. By courtesy of Dr. J. Clay.

49 2 pohár próba Jobb: zavaros/gennyes Bal: áttetsző

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51 PID

52 PID

53 PID - Adhäsionen

54 Reiter Syndrom: Arthritis Konjunktivitis Urethritis

55 C. trachomatis (L1-L3) Lymphogranuloma venereum Sexuelle Übertragung Papula Ulzeration Bubonen

56 Chlamydophila C. pneumoniae Obligat human pathogen Interstitielle Pneumonie C. psittaci Zoonose (Vögel)

57 Erkrankungen Chlamydophila pneumoniae: Tracheitis, Bronchitis, atypische Pneumonie Übertragung: aerogen Chlamydophila psittaci: Psittakose: atypische Pneumonie Übertragung: aerogen, kontakt Zielzellen: Macrophagen, Lungenparenchym

58 links Interstitielle Pneumonie

59 Diagnose: Direkter Nachweis Mikroskopische Nachweis von Einschlusskörperchen (direkt IF, Giemsa Färbung; Typ A-C: Halberstädter-Prowazek Körperchen, Typ L1-L3: Donovan Körperchen) PCR Kultivierung: Zellkultur, bebrütetes Hühnerei Serologie: Antikörpernachweis IgM, IgA, IgG (Pneumonie, Reiter-Syndrom) Therapie Doxycyclin, alternative: Makrolide Prophylaxe Expositionsprophylaxe (Hygiene, Kondom, Vogelkontrolle)

60 ELISA: Antikörpernachweis Direkt IF

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62 Rickettsien = Rickettsia Gruppe Gattungen Rickettsia Orientia Ehrlichia Anaplasma Coxiella

63 Morpholgie: nm! (0,3-0,6 μm), Gram negativ. Giemsa, Gimenez Färbung Obligat intrazelluläre Parasiten (Zellkultur) Klinikum: Fieber, Exanthem, Petechien, Vasculitis Zoonosen Ausnahme: Flecktyphus Rickettsia prowazekii Übertragung: VEKTOREN (Läuse, Flöhe, Zecken, Milben) Diagnose: Serologie Antikörpernachweis

64 Eintrittspforten: Biss von Vektoren Zecken Biss Milbe Biss

65 Pathogenese-1 Medmicro

66 mayer/rick2 Pathogenese-2

67 Orientia tsutsugamushi; Y

68 Erreger und Krankheiten Fleckfiebergruppe (R. prowazekii, R. typhi) Zeckenbissfiebergruppe ( Spotted Fever ) mehrere Arten Tsutsugamushi Fieber (O. tsutsugamushi)

69 Epidemisches Fleckfieber = Typhus exanthematicus Erreger: R. prowazekii

70 Epidemisches Fleckfieber = Typhus exanthematicus Pathogenese Zielzellen: Endothelzellen Vasculitis

71 Epidemisches Fleckfieber = Typhus exanthematicus Vorkommen: Mensch Übertragung: Mensch Kleiderlaus Mensch Pediculus humanus corporis vestimenti

72 Epidemisches Fleckfieber = Typhus exanthematicus

73 Epidemisches Fleckfieber = Typhus exanthematicus Brill-Zinssersche Krankheit: Persistenz in Endothelzellen Rückfall milderes Fleckfieber Diagnose: Antikörpernachweis (Weil-Felix Reaktion: Proteus OX19; KBR, Indirekt IF, ELISA) Direkter Nachweis: direkt IF, PCR Prophylaxe: Entlausung Inaktivierte Vakzine für Risikogruppen Therapie: Doxycyclin Endemisches (murines) Fleckfieber Erreger: R. typhi

74 Zeckenbissfiebergruppe = Spotted fever Tsutsugamushi Fieber (Orientia tsutsugamushi) Zoonose: Reservoir viele Tierarten Vektoren: Zecken, Milben Hahn 23.2; 23.3, Kaiser s 5.13

75 Zeckenbissfiebergruppe = Spotted fever

76 Fig Rocky Mountain spotted fever. Seventh day of illness in a small boy. A moderately severe eruption with macular and petechial elements of various size. By courtesy of Dr. T.F. Sellers, Jr.

77 Fig Rocky Mountain spotted fever. Hand of the same patient (see Fig ) on seventh day of illness. By courtesy of Dr. T.F. Sellers, Jr.

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81 Zoonosen (Nager, Hunde, Pferde) Übertragung durch Zecken Befall von Monozyten, Granulozyten Morulabildung, Granulomatöse Entzündung Erreger Gattung Art Krankheit Ehrlichia E. chaffeensis HME E. ewingii HGE Anaplasma A. phagocytophilum HGA Hahn Tab. 23.2; 23.3

82 Vorkommen HGA Pferde, Hunde HGE Hunde! HME Nager

83 Pathomechanism

84 Pathogenese HME

85 HME

86 HME

87 HME

88 Milz HME Lunge Blutausstrich

89 Pathogenese HGA

90 HGA

91 Diagnose: Direkter Mikroskopische Nachweis Blutausstrich Giemsa Färbung Blut PCR Antikörpernachweis IgM, IgG (indirek IF) Therapie: Tetracycline

92 Therapie und Prophylaxe von Rickettsiosen, Ehrlichiosen (HME), Anaplasmosen (HGA) Doxycycline, Fluoroquinolon, Rifampin

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94 Krankheit: Q-Fieber Zoonose Rinder, Schafe, Ziege, Vögel Übertragung: Aufnahme von resistenten Sporenähnliche Formen (Staub, Aerosol) Zielzelle: Makrophagen, Lungenparenchym, Leber Diagnose: Direkter Nachweis: IF, PCR Antikörpernachweis: KBR, indirekt IF, ELISA Therapie: Doxycyclin, Fluoroquinolone, Rifampin

95 Grösse: 0,2 0,4 1 μm

96 Entwicklungzyklus Bergey s Fig. 9.3

97 L = large; S = small, OM = outer membrane Bergey s Fig. 9.3C-F CM =cytoplasmic membrane; MI = membranous intrusions PS = periplasmic space; En = Endospore

98 Pathogenese mayer

99 FIGURE 38-6 Clinical manifestations of Q fever. Medmicro ch38

100 Atypische Pneumonie

101 Pneumonie Granulom Chronische Verlauf: Endocarditis

102 WHO Bioterrorkategorie B!!!

103 ENDE Korfu, 2006