In situ Hybridisierung

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1 In situ Hybridisierung eine Methode zum direkten und spezifischen Nachweis von Nukleinsäuren (DNA und RNA) in Gewebe, Zellen, Zellkompartimenten und Chromosomen

2 Was kann damit erreicht werden? direkte Lokalisation von Genen und anderen DNA-Sequenzen in Chromosomen direkter Nachweis von RNA (und damit Genexpression) in Geweben und Zellen Nachweis von Krankheitserregern (z. B. Viren) in Geweben und Zellen Identifizierung von Chromosomen durch spezifische Anfärbung ( painting )

3 Voraussetzungen: gute Chromosomen- oder Gewebspräparate markierte DNA/RNA ( z. B. radioaktiv oder mit Fluoreszenzfarbstoffen) Nukleinsäure im Gewebe muss noch erhalten sein DNA muss denaturiert sein histologische Strukturen dürfen nicht zerstört sein

4 Markierung: die Markierung erfolgt im Allgemeinen durch Einbau modifizierter (deoxy)- Nukleotide direkte Markierung durch chemische Kopplung möglich

5 Markierung: radioaktiv: H3, S35, P32, C14 Nachteil: Nachweise nur mittelbar durch Überziehen mit Film möglich Vorteil: durch Wahl der Expositionszeit kann die Nachweisempfindlichkeit bestimmt werden

6 In situ Hybridisierung mit radioaktiv markierter Satelliten DNA

7 Markierung: nicht-radioaktiv: z. B. Biotin oder Digoxigenin Nachteil: begrenzte Nachweisempfindlichkeit Vorteil: direkte Nachweismöglichkeit z. B. durch Antikörper

8 Fluoreszenz in situ Hybridisierung schnell empfindlich FISH direkter Nachweis der markierten Sonde nur mit relativ teurem Fluoreszenzmikroskop möglich

9 Markierung durch Einbau modifizierter dntps: mit Biotin

10 Markierung durch Einbau modifizierter dntps: Digoxigenin

11 Markierung: Fluoreszenzmarkierung: z. B. Fluorescein, Rhodamin, Cy5, Cy3, Alexa Nachteil: begrenzte Nachweisempfindlichkeit Vorteil: unmittelbar durch Fluoreszenzmikroskopie nachweisbar

12 Cyanin-5 und Cyanin 3

13 Labeling dyes and their properties The two most common flour dyes used are: Cyanine3 (cy3, absorption = 554, emission = 568) Cyanine5 (cy5, absorption = 650, emission = 672) But Alexa dyes are also becoming popular

14 Alexa Fluoreszenzfarbstoffe

15 Alexa-Farbstoffe in situ

16 Cyanine dye spectra excitation and emission Excitation Emission Excitation Emission

17 Alexa-Farben

18 Alexa-Farben

19 typische FISH ( Sandwich -Methode:

20 Fluorescein

21 Fluoresceinisothiocyanat (FITC)

22 Statt Fluoreszenz: Nachweis durch Farbreaktion mit gekoppelten Enzymen

23 Nachweis mit Gold-Streptavidin

24 FISH von Satelliten DNA an menschliche Chromosomen

25

26

27

28 Chromosomen- Painting

29 Chromosomen-Painting

30 Individueller Chromosomennachweis

31 Differentielles Painting zur Chromosomendiagnostik

32 Triple colour hybridization chromosome 15, 8 and 5

33 Chromosome painting zum Nachweis von Translokationen

34 Automatische Identifizierung einzelner Chromosomen z.b. zur Geschlechtsbestimmung

35 Chromosomen-Painting bei Drosophila

36 Hochauflösende FISH: Organisation der Centromere

37 Human chromosome 21

38 Nachweis einer Vireninfektion: in situ Hybridisierung mit RNA

39 Nachweis einer Vireninfektion

40 Nachweis von HPV 16 in Condylom-Zellen

41 RNA-Nachweis in Drosophila- Embryo

42 Hunchback und Krüppel

43 DNA-Lokalisation durch situ Hybrisidisierung an Riesenchromosomen Chromosomenpräparate sind leicht herzustellen Chromosomen sind für Anfänger leicht mikroskopisch zu analysieren Chromosomen zeigen strukturell interessante Details Nachweisempfindlichkeit ist mind. um Faktor 1000 höher als bei normalen Metaphase-C. Es handelt sich um Interphase-C., d. h. die Gene sind aktiv

44 Riesenchromosomen: Kernfäden entdeckt 1881 von Balbiani an Chironomus Larven Balbiani 1881

45 Polytänchromosomen sind riesig

46 Aufbau von Polytänchromosomen Puff Asynapsis Interbanden/ Banden

47 Polytänchromosomen bestehen aus vielen Chromatiden und zwei homologen Chromosomen Banden Interbanden

48 Chromsomen eines F1-Hybrids aus C. thummi x C. piger

49 Riesen-/Polytänchromosomen mit Balbiani-Ringen

50 Differenzielle Färbung zeigt aktive Gene Methylgrün(DNA blau)/pyronin (RNA rot)

51 Chromosomen mutationen sind leicht zu erkennen: z. B. Inversionsheterozygote

52 Drosophila melanogaster Polytänchromosomen

53 In situ Hybridiserung ( FISH )

54 Herstellung der Chromosomenpräparate: Präparate von Riesenchromosomen aus Speicheldrüsen von Dipterenlarven unser Organismus: Chironomus/Zuckmücken auch bekannt unter rote Mückenlarven (für Aquarienfreunde beliebtes Fishfutter)

55 Chironomus thummi- Imago:

56 Chironomus thummi: Lebenszyklus

57 Quetschpräparate : Speicheldrüse identifizieren und auf Objektträger bringen ein Tropfen 40-50%iger Essigsäure auftropfen Deckglas auflegen Deckglas leicht anpressen unter Mikroskop kontrollieren

58 Chironomus thummi: die Speicheldrüsen

59 Chironomus thummi: Präparation der Speicheldrüsen

60 Ablauf der Chromosomenpräparation Chironomus Larve auf Eis(wasser) betäuben Larve auf Objektträger mit Präpariernadeln dekapitieren Entweder rutschen Speicheldrüsen spontan aus dem Larvenkörper oder durch leichten Druck mit der Nadel herausdrücken Drüsen liegen paarig links und rechts des Vorderdarms Auftropfen von Essigsäure hilft beim Identifizieren der Drüsen Reste der Larve von den Drüsen und vom Objektträger entfernen Drüsen leicht mit Präpariernadeln in Essigsäure zerzupfen (nicht eintrocknen lassen!) Deckglas auflegen und andrücken; dabei werden Drüsenzellen gequetscht ( Quetschpräparate ); Zellen und Zellkerne platzen dabei und Chromsomen werden gestreckt Ergebnis unter Mikroskop kontrollieren Bei Erfolg (gute Chromosomen) Präparat mit Deckglas nach unten auf Trockeneis einfrieren Deckglas mit Skalpell/Rasierklinge absprengen und Objektträger unverzüglich in Isopropanol/Ethanol stellen

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