DRK-Blutspendedienst Baden-Württemberg Hessen gemeinnützige GmbH Institut Ulm

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1 DRK-Blutspendedienst Baden-Württemberg Hessen gemeinnützige GmbH Institut Ulm Medizinisches Versorgungszentrum DRK-Blutspendedienst Ulm gemeinnützige GmbH Institut für Klinische Transfusionsmedizin und Immungenetik Ulm gemeinnützige GmbH Laborleistungen Tel: (0731) Helmholtzstraße 10 Fax: (0731) Ulm Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 1 von 45

2 DRK-Blutspendedienst Baden-Württemberg Hessen gemeinnützige GmbH Institut Ulm Institut für Klinische Transfusionsmedizin und Immungenetik Ulm gemeinnützige GmbH Medizinisches Versorgungszentrum DRK-Blutspendedienst Ulm gemeinnützige GmbH Zertifiziert nach DIN EN ISO 9001 und DIN EN ISO akkreditiert nach DIN EN ISO und DIN EN ISO (Abstammungsgutachten) sowie akkreditiert durch die European Federation for Immunogenetics und Joint Accreditation Committee-ISCT & EBMT Allgemeine Hinweise: Lagerung und Transport der Proben ist zu beachten. Eingesandtes Material kann bei unbeschrifteten Proben und falschem Abnahmematerial nicht bearbeitet werden. Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 2 von 45

3 Inhaltsverzeichnis Allgemeine Hinweise Klinische Chemie Alanin-Aminotransferase (ALT)/Syn. Glutamat-Pyruvat-Transaminase (GPT) Alkalische Phosphatase (AP) Aspartat-Aminotransferase (AST) bzw. Glutamat-Oxalacetat-Transaminase (GOT). 12 Cholinesterase (CHE) C-reaktives Protein (CRP) Eiweiß (Protein) Elektrolyte (Na, K, Ca) Elektrophorese-Serumprotein Ferritin Freies Hämoglobin Gamma-Glutamyl-Transferase (GGT) Gesamtbilirubin Glukose Harnsäure Immunglobulin A (IgA) Immunglobulin G (IgG) Immunglobulin M (IgM) Kreatinin Lactat-Dehydrogenase (LDH) Magnesium Transferrin Löslicher Transferrin-Rezeptor (stfr) Gerinnung Thromboplastinzeit (TPZ, Quick-Wert) Thrombinzeit (TZ) Aktivierte partielle Thromboplastinzeit (PTT) Fibrinogen Infektionsserologie CMV-IgG-Antikörper (Anti-CMV-IgG) CMV-IgM-Antikörper (Anti-CMV-IgM) Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 3 von 45

4 Hepatitis-B-Virus-Core-Antikörper (Anti-HBc) Hepatitis-B-Surface-Antigen (HBs-Ag) Hepatitis-B-Surface-Antikörper (Anti-HBs) Hepatitis-C-Virus- (HCV) Antikörper (Anti-HCV) Human-Immunodeficiency-Virus-Typ-1/2-Antikörper (Anti-HIV-1/2) und p24-ag Lues-Antikörper (Syphilis TP) Molekulare Virusdiagnostik CMV-DNA HAV-RNA HBV-DNA HCV-RNA HIV-RNA Parvo-B19-DNA West Nile Virus (WNV) Bakteriologie Mikrobiologische Kontrolle Bakterieller Schnelltest Mikrobiologische Testung mittels PCR Blutgruppenserologie und Immunhämatologie Vollständige Blutgruppenbestimmung (AB0, Rhesusfaktor, Antikörpersuchtest) Semiquantitative Antigendichtebestimmung Quantitative Antigendichtebestimmung Bestimmung spezieller Blutgruppenantigene Verträglichkeitsprobe (Kreuzprobe) Antikörper-Identifizierung Antikörpertiter Kontrolle des Antikörpertiters Isoagglutinin-Titer Direkter Antiglobulintest Direkter Antiglobulintest bei Neugeborenen Aufgegliederter direkter Antiglobulintest (IgG/C3d) Aufgegliederter direkter Antiglobulintest (einschl. IgA und IgM) Hitzeresistenztest Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 4 von 45

5 Untersuchungen bei V. a. Autoimmunhämolyse Untersuchungen bei V. a. Autoimmunhämolyse bei negativem direkten Antiglobulintest Untersuchungen bei V. a medikamenteninduzierte Autoimmunhämolyse Donath-Landsteiner-Antikörper T-Aktivierung oder positiver direkter Antiglobulintest bei bakteriellen Infekten Verlaufsuntersuchung bei Autoimmunhämolyse Abklärung von Transfusionreaktionen Kryoglobuline Kälteagglutinine Bestimmung von Erythrozytenpopulationen nach allogener KM- / Blutstammzelltransplantation (Geltechnik) Bestimmung von Erythrozytenpopulationen nach KMT (mikroskop. Immunfluoreszenz) Bestimmung von Erythrozytenpopulationen nach KMT (differenzielle Agglutination) 30 Bestimmung von Erythrozytenpopulationen nach KMT (Durchflusszytometrie) Nachweis adsorbierter Blutgruppensubstanzen Untersuchung auf Partial D DNA-Typisierung von fetalen Blutgruppenantigenen aus Fruchtwasser DNA-Typisierung von Blutgruppenantigenen nach Vortransfusion oder Autoimmunhämolyse Charakterisierung von RHD Allelen Charakterisierung von RHCE Allelen DNA-Typisierung seltener Antigene Genotypisierung (Bestimmung der Zygotie) Identifizierung von Antikörpern gegen hochfrequente Antigene Nachweis gebundener spezifischer Antikörper Antigentypisierung nach Chloroquinelution Hämatologie Blutbild (elektronisch) Hb-Messung Differentialblutbild (manuell) Viabilität Bestrahlung von Zellen Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 5 von 45

6 Gewinnung, Manipulation und Charakterisierung von Stammzellen und anderen speziellen Zellpräparationen Durchflusszytometrie (FACS-Analyse) Paroxysmale-nächtliche-Hämoglobinurie- (PNH) Diagnostik Chimärismusanalyse mit Granulozyten / Lymphozyten aus Blut und Knochenmark nach allogener Knochenmark-/Blutstammzelltransplantation Präparation von autologen und allogenen Knochenmarktransplantaten Präparation von autologen und allogenen Blutstammzelltransplantaten Präparation von Spenderlymphozyten zur Immuntherapie Herstellung von dendritischen Zellen Kryokonservierung von peripheren Blutstammzell- und Knochenmarktransplantaten, Erythrozyten, Thrombozyten, Lymphozyten und dendritischen Zellen Fluoreszenzaktivierte Hochgeschwindigkeitszellsortierung (FACS) Transplantationsimmunologie HLA-Klasse-I-Antikörperscreening mittels LCT HLA-Klasse-I-Antikörperdifferenzierung mittels LCT HLA-Klasse-I-Antikörperscreening mittels Festphasentechnik HLA-Klasse-II-Antikörperscreening mittels Festphasentechnik HLA-Klasse-I-Antikörperdifferenzierung mittels Festphasentechnik HLA-Klasse-II-Antikörperdifferenzierung mittels Festphasentechnik CD30-Antikörperbestimmung mittels ELISA HLA-Crossmatch (serologische Verträglichkeitsprobe im HLA-System) Serologische Bestimmung der HLA-Klasse-I-Merkmale (A / B) Bestimmung des HLA-B27-Merkmals Molekularbiologische Bestimmung der HLA-Klasse-I-Merkmale (A, B, C) Molekularbiologische Bestimmung der HLA-Klasse-II-Merkmale (DRB1, DQB1, DPB1 + DQA) Bestimmung von Zytokin-, Chemokin- und anderen Genpolymorphismen (IL1, IL1R, IL2, IL4, IL4R, IL6, IL10, IL12, -IFN, TGF, TNF, ICAM-1, CD28, CTLA4, CCR2, CCR5) Bestimmung von Killerzellen-Immunglobulin-ähnlicher Rezeptor- (KIR) Genpolymorphismen CCR-Genotypisierung HA-1-Genotypisierung Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 6 von 45

7 Molekulare Diagnostik und molekulare Therapie; Abstammungsgenetik Chimärismusanalyse mit Granulozyten / Lymphozyten / Lymphozytensubpopulationen nach allogener Knochenmark-/Blutstammzelltransplantation Kolonienbildung von hämatopoetischen Progenitorzellen Molekulargenetische Abklärung von Immundefekten Molekulargenetische Abklärung von Erythrozytosen Molekulargenetische Abklärung von Anämien Abstammungsgenetische Untersuchung Leitung Medizinische Geschäftsführung (IKT Ulm und MVZ Ulm) Prof. Dr. med. Hubert Schrezenmeier Sekretariat Tel.: (0731) Angela Jacobs Fax: (0731) a.jacobs@blutspende.de Kaufmännische Geschäftsführung (IKT Ulm und MVZ Ulm) Wolfgang Rüstig Geschäftsführung DRK-Blutspendedienst (Institut Ulm) Dr. Peter Mein, Wolfgang Rüstig, Prof. Dr. med. Erhard Seifried Ärztlicher Direktor (IKT Ulm) Prof. Dr. med. Hubert Schrezenmeier Ärztlicher Leiter (Institut Ulm) Prof. Dr. med. Hubert Schrezenmeier Ärztlicher Leiter (MVZ Ulm) Dr. med. Peter Schauwecker Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 7 von 45

8 Klinische Chemie, Infektionsserologie, molekulare Virusdiagnostik und Bakteriologie Abteilungsleiter Tel.: (0731) Dr. biol. hum Uschi Mayr-Wohlfart Fax: (0731) Klinische Chemie und Gerinnung Tel.: (0731) Dr. med. Markus Anliker Tel.: (0731) (Labor) Fax: (0731) Molekulare Virusdiagnostik / Infektionsserologie Tel.: (0731) Dr. biol. hum. Uschi Mayr-Wohlfart Fax: (0731) u.mayr-wohlfart@blutspende.de e.weber@blutspende.de Dr. med. Markus Anliker Tel.: (0731) m.anliker@blutspende.de Infektionsserologie Tel.: (0731) Conny Neuber Fax: (0731) c.neuber@blutspende.de Blutgruppenserologie und Immunhämatologie Abteilungsleiter Tel.: (0731) Dr. med. Christof Weinstock Fax: (0731) c.weinstock@blutspende.de Immunhämatologie Tel.: (0731) Eva Hochgeladen Fax: (0731) e.hochgeladen@blutspende.de Referenzlabor Tel.: (0731) Sabine Kaiser Fax: (0731) s.kaiser@blutspende.de Laborbereich Klinik Tel.: (0731) oder Lydia Göbel (0731) Fax: (0731) , Depot-ulm@blutspende.de Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 8 von 45

9 Blutspender, Apherese und Hämotherapie Abteilungsleiter Tel.: (0731) Dr. med. Sixten Körper Fax: (0731) Blutspende / Plasmapherese Christa Stadler, Ärztin Tel.: (0731) Fax: (0731) c.stadler@blutspende.de Zytapherese / Eigenblut Dr. med. Peter Reinhardt Tel.: (0731) Fax: (0731) p.reinhardt@blutspende.de Hämatologisches Labor / Zytapherese Eva Gerstner Tel.: (0731) Katrin Flor Fax: (0731) k.flor@blutspende.de Dr. med. Sixten Körper Tel.: (0731) s.koerper@blutspende.de Blutspendeteams Beate Klinger Tel: (0731) Fax: (0731) b.klinger@blutspende.de Ambulante Transfusion Christine Kroll Tel.: (0731) Tel.: (0731) Fax: (0731) c.kroll@blutspende.de Produktion und Stammzelllabor Abteilungsleiter Dr. med. Peter Schauwecker Tel: (0731) Fax: (0731) p.schauwecker@blutspende.de Kryokonservierung Dr. med. Peter Schauwecker Tel: (0731) Fax: (0731) p.schauwecker@blutspende.de Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 9 von 45

10 Knochenmark- und Stammzellpräparation Birgit Maccari Tel.: (0731) Fax: (0731) Durchflusszytometrie Claudia Fischer Tel.: (0731) Fax: (0731) Chimärismusanalyse Jana Schnaubert, Ärztin Tel : (0731) /6868 Prof Dr. med. Bernd Jahrsdörfer Fax : (0731) j.schnaubert@blutspende.de Produktion / Vollblut Udo Schäfer Tel.: (0731) Fax: (0731) u.schäfer@blutspende.de Transplantationsimmunologie / Abstammungsgenetik Abteilungsleiter Tel.: (0731) PD Dr. med. Joannis Mytilineos Fax: (0731) j.mytilineos@blutspende.de HLA-Labor Dr. med. Daniel Fürst Tel.: (0731) Fax: (0731) d.fuerst@blutspende.de Dr. med. Markus Anliker Tel.: (0731) m.anliker@blutspende.de Claudia Flach Tel.: (0731) Fax: (0731) c.flach@blutspende.de Molekulare Diagnostik und molekulare Therapie Abteilungsleiter Tel.: (0731) /642 Dr. med. Klaus Schwarz Fax: (0731) klaus.schwarz@uni-ulm.de Molekulare Diagnostik/Sequenzierungen Dr. rer. nat. Myriam Lorenz Tel.: (0731) Fax: (0731) molekulare-diagnostik@blutspende.de Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 10 von 45

11 Dr. med. Peter Schauwecker Tel: (0731) Abstammungsgenetik Regina Geyer Tel.: (0731) Fax: (0731) Zellsorter Dr. rer. medic. Markus Rojewski Tel: (0731) Fax: (0731) Qualitätssicherung Qualitätssicherungsbeauftragte Tel.: (0731) Dr. biol. hum. Uschi Mayr-Wohlfart Fax: (0731) QM-Operatorin Tel.: (0731) Alexandra Rädel Fax: (0731) Ausgabe Ausgabe und Probenannahme Klinik Tel.: (0731) oder Lydia Göbel (0731) Fax: (0731) , Ausgabe und Probenannahme Institut Tel.: (0731) oder -534 Stephan Kluge Fax: (0731) Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 11 von 45

12 Klinische Chemie Alanin-Aminotransferase (ALT)/Syn. Glutamat-Pyruvat-Transaminase (GPT) Optimierte Standardmethode IFCC 1 ml Serum/Heparin- oder EDTA-Plasma Indikation: Screening von Blutspenderproben auf Leberzellschädigung Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum kann bei +2 bis +8 C 7 Tage gelagert werden. Normalwerte: Frauen: < 34 U/l Männer: < 45 U/l Alkalische Phosphatase (AP) Kinetische Messung 1 ml Serum/Heparinplasma Indikation: Screening auf hepatobiliäre- und ossäre Erkrankungen Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum kann bei +2 bis +8 C 7 Tage gelagert werden. Normalwerte: altersabhängig Aspartat-Aminotransferase (AST) bzw. Glutamat-Oxalacetat-Transaminase (GOT) optimierte Standardmethode IFCC 1 ml Serum/ Heparin- oder EDTA-Plasma Indikation: Erkrankungen der Leber und der Gallenwege, Herzinfarkt, Skelett-/Muskelschäden Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum kann bei +2 bis +8 C 7 Tage gelagert werden. Normalwerte: Frauen: < 31 U/l Männer: < 35 U/l Cholinesterase (CHE) Kinetische Messung 1 ml Serum/ Heparin- oder EDTA-Plasma Indikation: Verdacht auf Leberparenchymschaden mit eingeschränkter Funktionsleistung des Organs, Screening nach Alkylphosphatvergiftung Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum kann bei +2 bis +8 C bis zu einem Jahr gelagert werden. Normalwerte: Frauen: U/l Männer: U/l Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 12 von 45

13 C-reaktives Protein (CRP) Indikation: Immunturbidimetrie 1 ml Serum/ Heparin- oder EDTA-Plasma Nachweis einer akuten Infektion sowie Überwachung entzündlicher Prozesse wie akute rheumatische und gastrointestinale Krankheiten Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum kann bei +2 bis +8 C bis zu 2 Monaten gelagert werden. Normalwerte: < 5 mg/l Eiweiß (Protein) Biuret 1 ml Serum/EDTA-Plasma oder Lithium-Heparin-Plasma Indikation: Screening der Blutspender (Plasmaspender) Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum ist bei +2 bis +8 C bis zu 1 Monat haltbar. Normalwerte: g/l Elektrolyte (Na, K, Ca) Ionenselektive Elektroden (LEA-Analyzer, Fa. Nova) 1,2 ml Lithium-Heparinblut (S-Monovette) Indikation: Zellseparator-Spender mit G-CSF-Stimulation Lagerung und Transport: Bei Raumtemperatur innerhalb von zwei Stunden Bestimmungen Natrium Kalium Calzium Normalwerte mmol/l 3,5 5,0 mmol/l 1,0 1,3 mmol/l Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 13 von 45

14 Elektrophorese-Serumprotein Indikation: Elektrophoretische Trennung der Serumproteine auf Cellulose-Acetat- Träger (CAF-Elektrophorese) 1 ml Serum Diagnose von akuten und chronischen Entzündungsreaktionen, monoklonale Gammopathien, pathologischer Ausfall von Laborbasisuntersuchungen, Differentialdiagnose der Dysproteinämie Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum kann bei +4 bis +8 C maximal 3 Tage gelagert werden. Fraktion Normalwerte Albumin 55,3 68,9 % α 1 1,6 5,8 % α 2 5,9 11,1 % β 7,9 13,9 % γ 11,4 18,2 % Ferritin Indikation: 2-Schritt-Chemilumineszenz-Mikropartikelimmunoassay (CMIA) 1 ml Serum/EDTA-Plasma Screening der Blutspender, Screening bei chronischer Erythrozytensubstitution, Differentialdiagnose bei Anämie und Polyglobulie Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum kann bei +2 bis +8 C 7 Tage gelagert werden. Normalwerte: Frauen: 6,9-282,5 ng/ml (prämenopausal) Frauen: 14,0-233,1 ng/ml (postmenopausal) Männer: 18,7-323,0 ng/ml (18 30 Jahre) Männer: 16,4-293,9 ng/ml (31 60 Jahre) Freies Hämoglobin Photometrisch 1 ml Plasma / Serum / Waschüberstände von tiefgefrorenen Erythrozytenkonzentraten nach dem Auftauen Indikation: Ausschluss einer Hämolyse bei Blutpräpraten Lagerung und Transport: Maximal 24 Std. zwischen +4 C bis +8 C, Überstände von abzentrifuierten Proben max. 3 Tage zwischen +4 C bis +8 C. Normalwerte: im Plasma <5 mg/dl im Serum < 20 mg/dl im letzten Waschüberstand bei Erythrozytenkonzentraten: Hämolyserate < 0,8 % Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 14 von 45

15 Gamma-Glutamyl-Transferase (GGT) Kinetische Messung 1 ml Serum/Heparin-Plasma Indikation: Verdacht auf Leber- und Gallenwegserkrankungen Differentialdiagnose: Leber- und Gallenwegserkrankungen Kontrolle des chronischen Alkoholismus Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum kann bei +4 bis +8 C 7 Tage gelagert werden. Normalwerte: Frauen: < 38 U/l Männer: < 55 U/l Gesamtbilirubin Photometrische Messung 1 ml Serum/Heparin-Plasma Indikation: Diagnose des Ikterus Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum kann bei +2 bis +8 C 7 Tage gelagert werden. Normalwert: 3,4 20,5 µmol/l Glukose Indikation: Enzymatisch 1 ml Serum/Heparin-Plasma Beurteilung des Kohlenhydratstoffwechsels Suchtest auf Diabetes mellitus Lagerung und Transport: Nach Entnahme max. 1 h bei Raumtemperatur und von zellulären Bestandteilen trennen, Serum maxi. 3 Tage, zwischen +4 C bis +8 C Normwalwert: 3,9 5,8 mmol/l nüchtern Harnsäure Enzymatisch 1 ml Serum/Heparin-Plasma Indikation: Ausschluß von Gicht, Kontrolle der Zytostatikabehandlung, Nierenfunktion Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum kann bei +2 bis +8 C 7 Tage gelagert werden. Normalwerte: Frauen: µmol/l Männer: µmol/l Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 15 von 45

16 Immunglobulin A (IgA) Immunturbidimetrie 1 ml Serum/Heparin- oder EDTA-Plasma Indikation: Differentialdiagnose des Immungloblinmangels Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum kann bei +2 bis +8 C bis zu 8 Monate gelagert werden. Normalwert: Frauen: 0,65 4,21 g/l Männer: 0,63 4,84 g/l Immunglobulin G (IgG) Immunturbidimetrie 1 ml Serum/Heparin- oder EDTA-Plasma Indikation: Differentialdiagnose des Immungloblinmangels Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum kann bei +2 bis +8 C bis zu 2 Monate gelagert werden. Normalwert: Frauen: 5,52 16,31 g/l Männer: 5,4 18,22 g/l Immunglobulin M (IgM) Immunturbidimetrie 1 ml Serum/Heparin- oder EDTA-Plasma Indikation: Differentialdiagnose des Immungloblinmangels Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum kann bei +2 bis +8 C bis zu 4 Monate gelagert werden. Normalwert: Frauen: 0,33 2,93 g/l Männer: 0,22 2,40 g/l Kreatinin Enzymatischer Farbtest 1 ml Serum/Heparin-Plasma Indikation: Screening der Nierenfunktion Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum kann bei +2 bis +8 C 7 Tage gelagert werden. Normalwerte: Frauen: µmol/l Männer: µmol/l Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 16 von 45

17 Lactat-Dehydrogenase (LDH) Indikation: optimierter Test nach IFCC 1 ml Serum/Heparin- oder EDTA-Plasma Verdacht auf hämolytische Anämie, Diagnostik von Organschäden Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum kann bei +2 bis +8 C 4 Tage gelagert werden. Normalwerte: U/l Magnesium Indikation: Enzymatisch 1 ml Serum/Plasma (kein EDTA-Plasma!) Screening von Blutspendern mit G-CSF-Stimulation, ambulante Anämiepatienten zur Therapieüberwachung Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum bleibt bei +2 bis +8 C bis zu 7 Tage stabil. Normalwerte: 0,66 1,07 mmol/l Transferrin Indikation: Immunturbidimetrie 1 ml Serum/Heparin- oder EDTA-Plasma Screening auf Hämochromatose und Diagnostik bei Eisenverteilungsstörungen Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum bleibt bei +2 bis +8 C bis zu 3 Tage stabil. Normalwert: Frauen: 1,80 3,82 g/l Männer: 1,74 3,64 g/l Löslicher Transferrin-Rezeptor (stfr) Turbidimetrie 1 ml Serum/Lithium-Heparin-Plasma Indikation: Beurteilung des Eisenhaushalts bei Anämiepatienten Lagerung und Transport: Das nach ausreichender Zentrifugation gewonnene Plasma oder Serum kann bei +2 bis +8 C 7 Tage gelagert werden. Normalwert: 0,90 2,30 mg/l Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 17 von 45

18 Gerinnung Thromboplastinzeit (TPZ, Quick-Wert) Nephelometrie 1 ml Citrat-Plasma Indikation: Hämostase-Störung Lagerung und Transport: Sofort nach Entnahme zentrifugieren und Citrat-Plasma tiefgefroren bei -20 C lagern Normalwert: % Thrombinzeit (TZ) Nephelometrie 1 ml Citrat-Plasma Indikation: Hämostase-Störung Lagerung und Transport: Sofort nach Entnahme zentrifugieren und Citrat-Plasma tiefgefroren bei -20 C lagern Normalwert: Sekunden Aktivierte partielle Thromboplastinzeit (PTT) Nephelometrie 1 ml Citrat-Plasma Indikation: Hämostase-Störung Lagerung und Transport: Sofort nach Entnahme zentrifugieren und Citrat-Plasma tiefgefroren bei -20 C lagern Normalwert: Sekunden Fibrinogen Nephelometrie nach Clauss 1 ml Citrat-Plasma Indikation: Hämostase-Störung Lagerung und Transport: Sofort nach Entnahme zentrifugieren und Citrat-Plasma tiefgefroren bei -20 C lagern Normalwert: 1,8-4,5 g/l Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 18 von 45

19 Infektionsserologie CMV-IgG-Antikörper (Anti-CMV-IgG) 2-Schritt-Chemilumineszenz-Mikropartikelimmunoassay (CMIA) 1 ml Serum oder EDTA-Plasma Indikation: Screening von Blutspender- und Patientenproben mit unbekanntem Antikörperstatus Lagerung und Transport: Maximal 7 Tage, zwischen +2 C bis +8 C CMV-IgM-Antikörper (Anti-CMV-IgM) 2-Schritt-Chemilumineszenz-Mikropartikelimmunoassay (CMIA) 1 ml Serum oder EDTA-Plasma Indikation: Screening von Blutspender- und Patientenproben mit unbekanntem Antikörperstatus Lagerung und Transport: Maximal 7 Tage, zwischen +2 C bis +8 C Hepatitis-B-Virus-Core-Antikörper (Anti-HBc) 2-Schritt-Chemilumineszenz-Mikropartikelimmunoassay (CMIA) 1 ml Serum oder EDTA-Plasma Indikation: Nachweis einer (durchgemachten) Hepatitis-B-Virus-Infektion Lagerung und Transport: Maximal 7 Tage, zwischen +2 C bis +8 C Hepatitis-B-Surface-Antigen (HBs-Ag) 1-Schritt-Chemilumineszenz-Mikropartikelimmunoassay (CMIA) 1 ml Serum oder Plasma Indikation: Nachweis einer Hepatitis-B-Virus-Infektion Lagerung und Transport: Maximal 7 Tage, zwischen +2 C bis +8 C Hepatitis-B-Surface-Antikörper (Anti-HBs) 2-Schritt-Chemilumineszenz-Mikropartikelimmunoassay (CMIA) 1 ml Serum oder Plasma Indikation: Nachweis des Immunitätsstatus gegen Hepatitis-B-Virus, Kontrolle des Impfstatus (>100 IU/l = Impfschutz vorhanden) Lagerung und Transport: Maximal 7 Tage, zwischen +2 C bis +8 C Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 19 von 45

20 Hepatitis-C-Virus- (HCV) Antikörper (Anti-HCV) 2-Schritt-Chemilumineszenz-Mikropartikelimmunoassay (CMIA) 1 ml Serum oder EDTA-Plasma Indikation: Nachweis einer Hepatitis-C-Virus-Infektion Lagerung und Transport: Maximal 7 Tage, zwischen +2 C bis +8 C Human-Immunodeficiency-Virus-Typ-1/2-Antikörper (Anti-HIV-1/2) und p24-ag 2-Schritt-Chemilumineszenz-Mikropartikelimmunoassay (CMIA) 1 ml Serum oder EDTA-Plasma Indikation: Nachweis einer HI-Virus-Infektion der Typen 1 und 2 Lagerung und Transport: Maximal 7 Tage, zwischen +2 C bis +8 C Lues-Antikörper (Syphilis TP) 2-Schritt-Chemilumineszenz-Mikropartikelimmunoassay (CMIA) 1 ml Serum oder EDTA-Plasma Indikation: Screening auf eine Lues-Infektion Lagerung und Transport: Maximal 7 Tage bei +2 C bis +8 C Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 20 von 45

21 Molekulare Virusdiagnostik CMV-DNA PCR-Realtime-Detektion mit Light Cycler artus CMV-LC-PCR-Kit, Fa. Qiagen, Hamburg CE-zertifiziert, Nr Analysegerät: LightCycler TM, Roche Diagnostics 1 ml Vollblut Indikation: Nachweis von CMV-Sequenzen in Nabelschnurblut Nachweisgrenze: 116 Kopien/ml Lagerung und Transport: Vollblut maximal 48 Stunden bei +4 C bis max. Raumtemperatur HAV-RNA RT-PCR, Realtime-Detektion mit TaqMan-Hybridisierungssonden, kompetitive interne Kontrollsequenz, DRK-HAV-PB19-PCR-Kit, CE-zertifiziert CE DE CA24/20381/007 Analysegerät: ABI Prism 7500 Sequence Detection System EDTA-Vollblut oder Plasma, Menge nach Absprache Indikation: Screening von Blutspendeproben auf HAV-Sequenzen Cut-off: 5 x 10 4 IU/ml Spenderplasma Nachweisgrenze: 62 IU/ml Lagerung und Transport: Vollblut maximal 48 Stunden (abzentrifugiert max. 56 Stunden) bei +4 C bis max. Raumtemperatur; abgetrenntes Plasma maximal 7 Tage HBV-DNA RT-PCR, Realtime-Detektion mit TaqMan-Hybridisierungssonden, kompetitive interne Kontrollsequenz, DRK-HBV-PCR-Kit, CE-zertifiziert, CE DE01 Analysegerät: ABI Prism 7500 Sequence Detection System EDTA-Vollblut oder Plasma, Menge nach Absprache Indikation: Screening von Blutspendeproben auf HBV-Sequenzen Nachweisgrenze: 58 IU/ml Vollblut Lagerung und Transport: Vollblut maximal 48 Stunden (abzentrifugiert max. 56 Stunden) bei +4 C bis max. Raumtemperatur; abgetrenntes Plasma maximal 7 Tage Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 21 von 45

22 HCV-RNA RT-PCR, Realtime-Detektion mit TaqMan Hybridisierungssonden, kompetitive interne Kontrollsequenz DRK-HCV-PCR-Kit, CE-zertifiziert, CE DE02 Analysegerät: ABI Prism 7500 Sequence Detection System EDTA-Vollblut oder Plasma, Menge nach Absprache Indikation: Screening von Blutspendeproben auf HCV-Sequenzen Nachweisgrenze: 652 IU/ml Spenderplasma Lagerung und Transport: Vollblut maximal 48 Stunden (abzentrifugiert max. 56 Stunden) bei +4 C bis max. Raumtemperatur; abgetrenntes Plasma maximal 7 Tage HIV-RNA RT-PCR, Realtime-Detektion mit TaqMan-Hybridisierungssonden, kompetitive interne Kontrollsequenz DRK-HIV-1-PCR-Kit, CE-zertifiziert, CE DE03 Analysegerät: ABI Prism 7500 Sequence Detection System EDTA-Vollblut oder Plasma, Menge nach Absprache Indikation: Screening von Blutspendeproben auf HIV1-RNA-Sequenzen Nachweisgrenze: 855 IU/ml Spenderplasma Lagerung und Transport: Vollblut maximal 48 Stunden (abzentrifugiert max. 56 Stunden) bei +4 C bis max. Raumtemperatur); abgetrenntes Plasma max. 7 Tage Parvo-B19-DNA RT-PCR, Realtime-Detektion mit TaqMan-Hybridisierungssonden, kompetitive interne Kontrollsequenz DRK-HAV-PB19-PCR-Kit, CE-zertifiziert, CE DE CA24/20381/007 Analysegerät: ABI Prism 7500 Sequence Detection System EDTA-Vollblut oder Plasma, Menge nach Absprache Indikation: Screening von Blutspendeproben auf Parvo-B19-Sequenzen Cut off: 1 x 10 5 IU/ml Spenderplasma Nachweisgrenze: 411 IU/ml Spenderplasma Lagerung und Transport: Vollblut maximal 48 Stunden (abzentrifugiert max. 56 Stunden) bei +4 C bis max. Raumtemperatur; abgetrenntes Plasma maximal 7 Tage Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 22 von 45

23 West Nile Virus (WNV) PCR Realtime-Detektion mit Light Cycler artus WNV-LC RT-PCR-Kit, Fa. Qiagen, Hamburg CE-zertifiziert Analysegerät: LightCycler, Roche Diagnostics mindestens 500 µl EDTA-Plasma oder ACD-Plasma Indikation: Nachweis von WNV-Sequenzen in Spenderplasma Nachweisgrenze: 1028 cop/ml Spenderplasma Lagerung und Transport: Vollblut maximal 48 Stunden (abzentrifugiert max. 56 Stunden) bei +4 C bis max. Raumtemperatur; abgetrenntes Plasma maximal 7 Tage Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 23 von 45

24 Bakteriologie Mikrobiologische Kontrolle Automatische kontinuierliche Wachstumskontrolle in Flüssigmedium (aerob und anaerob) Analysegerät: BacT/Alert Analysesystem, biomerieux, Inc 2 x 10 ml Medium (Zellkonzentrat, Plasma, Spülflüssigkeit, Inkubationslösung) Indikation: Nachweis von aeroben oder anaeroben Mikroorganismen Bebrütungstemperatur: C Dauer: 7 bis 14 Tage Lagerung und Transport: bei Raumtemperatur Bakterieller Schnelltest Schnelltestmethode auf bakterielle Kontamination durch FACS Analyse Analysegerät: BactiFlow ALS, AES Chemunex GmbH 1 ml Medium (Thrombozytenkonzentrate, Plasma) Indikation: Nachweis von lebenden Mikroorganismen (Gesamtkeimzahl) Dauer: ca. 3 Stunden Lagerung und Transport: bei Raumtemperatur Mikrobiologische Testung mittels PCR Analysegerät: Indikation: Nachweisgrenze: RT-PCR, Realtime-Detektion mit TaqMan-Hybridisierungssonden, kompetititve interne Kontrollsequenz, 16s DNA-PCR DRK BAK PCR Kit V.1.0, CE-zertifiziert DE CA 24/20381/008 ABI Prism 7300 Sequence Detection System Thrombozytenkonzentrat, Menge nach Absprache Mikrobiologisches Screening von Thrombozytenkonzentraten zur Laufzeitverlängerung 10 CFU/Beutel (0,03 CFU/ml bezogen auf das Endprodukt) nach einer Mindestinkubationszeit von 48 Stunden nach Abnahme. Lagerung: der TK-Konzentrate bei 20 C +/- 2 C Probenahme erfolgt frühestens 48 Stunden nach Entnahme, Testung am selben Tag Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 24 von 45

25 Blutgruppenserologie und Immunhämatologie Vollständige Blutgruppenbestimmung (AB0, Rhesusfaktor, Antikörpersuchtest) Hämagglutinationstest 10 ml Venenblut (nativ) / EDTA-Blut Indikation: Serologische Bestimmung der Blutgruppenmerkmale, z. B. bei möglichem Blutbedarf Semiquantitative Antigendichtebestimmung Hämagglutinationstest 10 ml Venenblut (nativ) oder 10 ml EDTA-Blut Indikation: Verdacht auf Abschwächung eines Antigens, z.b. V.a. McLeod-Phänotyp Quantitative Antigendichtebestimmung Durchflusszytometrie 10 ml EDTA-Blut Indikation: Verdacht auf Abschwächung des Antigens D Bestimmung spezieller Blutgruppenantigene Hämagglutinationstest 10 ml Venenblut (nativ) oder 10 ml EDTA-Blut Indikation: Verdacht auf Alloimmunisierung, Verdacht auf "Null-Phänotyp, Bereitstellung kompatibler Präparate Verträglichkeitsprobe (Kreuzprobe) Hämagglutinationstest 10 ml Venenblut (nativ) oder 10 ml EDTA-Blut, 20 ml bei >5 Präparaten oder bekannten serologischen Problemen Indikation: Vor Transfusion Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 25 von 45

26 Antikörper-Identifizierung Hämagglutinationstest 10 ml Venenblut (nativ) oder 10 ml EDTA-Blut Indikation: Identifizierung des Antikörpers bei positivem Antikörpersuchtest Antikörpertiter Hämagglutinationstest 10 ml Venenblut (nativ) oder 10 ml EDTA-Blut Indikation: Bestimmung des Titers eines Antikörpers nach Identifizierung Kontrolle des Antikörpertiters Hämagglutinationstest 10 ml Venenblut (nativ) oder 10 ml EDTA-Blut Indikation: Verlaufskontrolle des Titers eines Antikörpers, z.b. bei Schwangerschaft Isoagglutinin-Titer Hämagglutinationstest 10 ml Venenblut (nativ) oder 10 ml EDTA-Blut Indikation: Bestimmung des Titers der Isoagglutinine, z. B. vor und nach KMT, bei inkompatibler Nierentransplantation Direkter Antiglobulintest Hämagglutinationstest 10 ml EDTA-Blut Indikation: Nachweis von Komplement- oder Immunglobulin-Beladung auf der Erythrozytenoberfläche, z.b. bei V. a. Autoimmunhämolyse oder inkompatible Transfusionen Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 26 von 45

27 Direkter Antiglobulintest bei Neugeborenen Hämagglutinationstest 5 ml Nabelschnurblut Indikation: Nachweis von Komplement- oder Immunglobulin-Beladung auf der Erythrozytenoberfläche, z.b. bei V.a. Erythroblastose Aufgegliederter direkter Antiglobulintest (IgG/C3d) Hämagglutinationstest 10 ml EDTA-Blut Indikation: Spezifischer Nachweis von Komplement oder Immunglobulin G auf der Erythrozytenoberfläche, z. B. bei V. a. Autoimmunhämolyse, inkompatible Transfusionen Aufgegliederter direkter Antiglobulintest (einschl. IgA und IgM) Hämagglutinationstest 10 ml EDTA-Blut Indikation: Spezifischer Nachweis von Immunglobulin M oder Immunglobulin A auf der Erythrozytenoberfläche, z.b. bei V. a. Autoimmunhämolyse Hitzeresistenztest Wärmeexposition, Hämagglutinationstest 10 ml Venenblut (nativ), Indikation: Nachweis von IgG-Isoagglutininen, z.b. bei V.a. AB0-Erythroblastose Untersuchungen bei V. a. Autoimmunhämolyse Hämagglutinationstest, Elutionsverfahren 10 ml Venenblut (nativ) und 10 ml EDTA-Blut Indikation: Nachweis und Charakterisierung von Autoantikörpern bei V. a. Autoimmunhämolyse Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 27 von 45

28 Untersuchungen bei V. a. Autoimmunhämolyse bei negativem direkten Antiglobulintest Hämagglutinationstest, Elutionsverfahren Nach Vereinbarung Indikation: Nachweis und Charakterisierung von Autoantikörpern bei V. a. Autoimmunhämolyse Untersuchungen bei V. a medikamenteninduzierte Autoimmunhämolyse Hämagglutinationstest, Elutionsverfahren 10 ml Venenblut (nativ) und 10 ml EDTA-Blut Indikation: Nachweis und Charakterisierung von medikamentenabhängigen Autoantikörpern (genaue Medikamentenanamnese erforderlich) Donath-Landsteiner-Antikörper Wärmeexposition, Hämagglutinationstest 10 ml Venenblut (nativ), sofort bei 37 C gerinnen lassen und warm trennen Indikation: Nachweis von biphasischen Hämolysinen bei V.a. Autoimmunhämolyse Transport: Aufgetrenntes Material bei Raumtemperatur, Anlieferung innerhalb von 24 Stunden T-Aktivierung oder positiver direkter Antiglobulintest bei bakteriellen Infekten Hämagglutinationstest, z.t. mit Lektinen 10 ml Venenblut (nativ), 5 ml EDTA-Blut Indikation: Nachweis von T-Aktivierung, z.b. bei Clostridieninfektion Verlaufsuntersuchung bei Autoimmunhämolyse Hämagglutinationstest 10 ml Venenblut (nativ), 10 ml EDTA-Blut Indikation: Verlaufskontrolle von Autoantikörpern bei Autoimmunhämolyse Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 28 von 45

29 Abklärung von Transfusionreaktionen Hämagglutinationstest, bakteriologische Kultur Vor Transfusion: 10 ml Venenblut (z.b. Rückstellungsprobe der Kreuzprobe), nach Transfusion: 10 ml Venenblut und 5 ml EDTA-Blut; Restmaterial (Beutel) aller transfundierten Präparate (steril) Indikation: Verdacht auf hämolytische Transfusionsreaktion, Ausschluß bakterieller Kontaminationen Transport: Bei 4 C, Anlieferung innerhalb von 24 Stunden Kryoglobuline Kälteexposition, qualitative Beurteilung von Ausfällungen 10 ml Venenblut (nativ), 5 ml EDTA-Blut Indikation: V. a. Kryoglobulinämie Transport: Bei 37 C, Anlieferung möglichst sofort, ggf. abgesert transportieren Kälteagglutinine Kälteexposition, Hämagglutination 10 ml Venenblut (nativ) Indikation: V. a. Kryoglobulinämie Transport: Bei 37 C, Anlieferung möglichst sofort, ggf. abgesert transportieren Bestimmung von Erythrozytenpopulationen nach allogener KM- / Blutstammzelltransplantation (Geltechnik) Hämagglutinationstest 5 ml EDTA-Blut Indikation: Orientierende Quantifizierung unterschiedlicher Erythrozytenpopulationen Bestimmung von Erythrozytenpopulationen nach KMT (mikroskop. Immunfluoreszenz) Immunfluoreszenz 5 ml EDTA-Blut Indikation: Quantifizierung unterschiedlicher Erythrozytenpopulationen (Nachweis Spuren antigen-positiver Erythrozyten im AB0-System) Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 29 von 45

30 Bestimmung von Erythrozytenpopulationen nach KMT (differenzielle Agglutination) Durchflusszytometrie 5 ml EDTA-Blut Indikation: Quantifizierung unterschiedlicher Erythrozytenpopulationen an Hand von Unterschieden im AB0-System Bestimmung von Erythrozytenpopulationen nach KMT (Durchflusszytometrie) Immunfluoreszenz (flowzytometrische Messung) 5 ml EDTA-Blut Indikation: Quantifizierung unterschiedlicher Erythrozytenpopulationen anhand von Unterschieden im Rh-System Nachweis adsorbierter Blutgruppensubstanzen Hämagglutination 5 ml EDTA-Blut Indikation: Nachweis adsorbierter Blutgruppensubstanzen nach minorinkompatibler KMT Untersuchung auf Partial D Hämagglutination 5 ml EDTA-Blut Indikation: Probleme bei D-Typisierung, V. a. Partial D DNA-Typisierung von fetalen Blutgruppenantigenen aus Fruchtwasser Polymerase-Kettenreaktion 5 ml Fruchtwasser Indikation: V. a. Morbus hämolyticus neonatorum Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 30 von 45

31 DNA-Typisierung von Blutgruppenantigenen nach Vortransfusion oder Autoimmunhämolyse Polymerase-Kettenreaktion 5 ml EDTA-Blut Indikation: Ersatz für die serologische Antigenbestimmung bei Vortransfusionen oder stark positivem direktem Antiglobulintest Charakterisierung von RHD Allelen Hämagglutination, Polymerase-Ketten-Reaktion, Sequenzierung 5 ml EDTA-Blut Indikation: Unklares Ergebnis bei serologischer D-Bestimmung; Anti-D-Immunisierung bei D-positiven Personen Charakterisierung von RHCE Allelen Hämagglutination, Polymerase-Ketten-Reaktion, Sequenzierung 5 ml EDTA-Blut Indikation: Unklares Ergebnis bei serologischer Rh-Bestimmung; Alloimmunisierung bei Antigen-positiven Personen DNA-Typisierung seltener Antigene Polymerase-Kettenreaktion 5 ml EDTA-Blut Indikation: Bereitstellung Antigen-negativer Präparate im Colton, Dombrock oder Scianna-System, Kontrolle des Antigenstatus für diese Blutgruppensysteme Genotypisierung (Bestimmung der Zygotie) Polymerase-Kettenreaktion 5 ml EDTA-Blut Indikation: Bestimmung des Genotyps des voraussichtlichen Vaters zur Abschätzung des Wiederholungsrisikos eines Morbus hämolyticus neonatorum Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 31 von 45

32 Identifizierung von Antikörpern gegen hochfrequente Antigene Methode Hämagglutination 20 ml Nativblut, 10 ml EDTA-Blut Indikation: Durchgehend positive Reaktionen bei der Antikörper-Identifizierung mit kommerziellen Identifizierungszellen Nachweis gebundener spezifischer Antikörper Elutionsverfahren (Säureelution), Hämagglutination 20 ml Nativblut, 10 ml EDTA-Blut Indikation: Autoimmunhämolyse, inkompatible Vortransfusion, unklarer positiver Antiglobulintest Antigentypisierung nach Chloroquinelution Elutionsverfahren (Chloroquinelution), Hämagglutination 10 ml EDTA-Blut Indikation: Antigenbestimmung bei positivem direktem Coombstest Autoabsorption Absorptionsverfahren, Hämagglutination 20 ml EDTA-Blut Indikation: Nachweis von Alloantikörpern in Gegenwart von Kälte- bzw. Wärmeautoantikörpern Transport: Bei Raumtemperatur, Lieferung innerhalb von 24 Stunden bei Wärmeautoantikörpern bei 37 C, Anlieferung sofort bei Kälteautoantikörpern Differenzialabsorption Absorptionsverfahren, Hämagglutination 10 ml Nativblut oder 10 ml EDTA-Blut Indikation: Nachweis von Alloantikörpern in Gegenwart von Autoantikörpern oder Antikörpern gegen hochfrequente Antigene, Auflösung von Antikörpergemischen Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 32 von 45

33 Hämatologie Blutbild (elektronisch) Elektronische Zellzählung (CellDyn 3200 Fa. Abbott und XT2000i, Fa. Sysmex) 2 ml EDTA-Blut Cave: Citrat-Blut bei EDTA-Pseudothrombozytopenie Indikation: Blutspenderscreening, Kontrolle hämatologischer Patienten Lagerung und Transport: Bei Raumtemperatur innerhalb von sechs Stunden Bestimmungen Normalwerte Leukozyten 4,0 10,0 x 10 9 /l Granulozyten 1,5 6,5 x 10 9 /l Lymphozyten 1,1 3,4 x 10 9 /l Monozyten 0,1 0,6 x 10 9 /l Eosinophile 0,0 0,4 x 10 9 /l Basophile 0,0 0,2 x 10 9 /l Erythrozyten 4,4 6,0 x /l Hämoglobin (Hb) m 13,5 18,0 g/dl w 12,0 16,0 g/dl Hämatokrit (HK) m 0,38 0,52 l/l w 0,37 0,46 l/l MCV (mittleres corpusculäres Volumen) fl MCH (mittleres corpusculäres Hämoglobin) pg MCHC (mittlere zelluläre Hämoglobinkonzentration) g/dl Thrombozyten x 10 9 /l MPV (mittleres Plättchenvolumen) 7,4 11,0 fl Retikulozyten (0,5 2,0 %) x 10 9 /l Kammerzählung (Neubauer) 1 ml EDTA-Blut Indikation: Kontrolle auffälliger Ergebnisse der elektronischen Messung Lagerung und Transport: Bei Raumtemperatur innerhalb von sechs Stunden Bestimmung: - Leukozyten - Thrombozyten Hb-Messung Azidmethämoglobin-Photometer (HemoCue) 1 Tropfen frisches Kapillarblut Indikation: Blutspenderscreening Bestimmung: Hämoglobin Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 33 von 45

34 Differentialblutbild (manuell) Blutausstrich mikroskopisch (Pappenheim-Färbung) 1 ml EDTA-Blut (nicht älter als 6 Stunden) Indikation: Kontrolle auffälliger Ergebnisse der elektronischen Messung Bestimmung: Morphologie von Erythrozyten, Thrombozyten und Leukozyten mit Differentialverteilung und Nachweis pathologischer Zellen Differentialverteilung Normalwerte Stabkernige 0 5 % Segmentkernige % Lymphozyten % Monozyten 2 10 % Eosinophile 2 4 % Basophile 0 1 % Viabilität Fluoreszenzmikroskopisch (Ethidium-Bromid/Acridin-Orange) 0,1 ml Zellsuspension (EDTA / ACD) Indikation: Qualitätskontrolle der NC-Präparate Lagerung und Transport: Bei Raumtemperatur innerhalb von sechs Stunden Bestimmung: Anteil viabler kernhaltiger Zellen Bestrahlung von Zellen 30-Gy-Bestrahlung (STS BIOBEAM 8000) Blutpräparate, Zellproben Indikation: Prophylaxe einer Spender-gegen-Wirt-Reaktion Proliferationshemmung von Zellen für wissenschaftliche Zwecke Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 34 von 45

35 Gewinnung, Manipulation und Charakterisierung von Stammzellen und anderen speziellen Zellpräparationen Durchflusszytometrie (FACS-Analyse) Immuntypisierung mit monoklonalen Antikörpern und Fluoreszenzmarkierung (Cytomics FC500 Beckman Coulter) 3 ml EDTA-Blut 1 ml KM/Apherese-Suspension Indikation: Qualitätskontrolle von Stammzelltransplantaten, Lymphozytenpräparaten und Separationsmethoden Lagerung und Transport: Bei Raumtemperatur innerhalb von sechs Stunden Bestimmung: CD 2, 3, 4, 8 T-Lymphozyten CD14 Monozyten CD19/CD20 B-Lymphozyten CD34/45, CD133 Blutstammzellen CD40, 80, 83, 86 Dendritische Zellen CD52 Campath-T-Zell-Depletion CD56 NK-Zellen 7AAD Viabilität CD25 Regulatorische T-Zellen TCR α/β, γ/δ T-Zell Rezeptor Paroxysmale-nächtliche-Hämoglobinurie- (PNH) Diagnostik Durchflusszytometrische Bestimmung der Expression GPI-verankerter Proteine 5 ml EDTA-Blut Indikation: Hämolyse, thrombophile Diathese, Zytopenie mit klinischem Verdacht auf PNH bzw. PNH-Aplastische-Anämie-Syndrom Lagerung und Transport: Lagerung bei +2 C bis +8 C; Transport bei Raumtemperatur Bestimmung: Erythrozyten / Retikulozyten: CD58 und CD59 Monozyten / Granulozyten: CD157 und FLAER Lymphozyten: CD48 Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 35 von 45

36 Chimärismusanalyse mit Granulozyten / Lymphozyten aus Blut und Knochenmark nach allogener Knochenmark-/Blutstammzelltransplantation Genomische quantitative bzw. semiquantitative DNA-Analyse von Short- Tandem-Repeat- (STR) Polymorphismen Ficoll-Trennung von Granulozyten und Lymphozyten 20 ml EDTA-Blut nach allogener Transplantation Indikation: Verlaufskontrolle nach allogener Knochenmark-/Blutstammzelltransplantation Cave: Vergleichsprobe von Spender und Empfänger vor Transplantation erforderlich. Lagerung und Transport: Bei +2 C bis +8 C nach telefonischer Voranmeldung Präparation von autologen und allogenen Knochenmarktransplantaten Erythrozytendepletion und Plasmadepletion mit Zellseparator Knochenmarksuspension mit ACD 1 :10, Heparin IE/ml) Lagerung und Transport: Kurier, nur nach telefonischer Vereinbarung Präparation von autologen und allogenen Blutstammzelltransplantaten CD34-Selektion (CliniMACS) T-Zell-Depletion mit monoklonalen Antikörpern (CD3, CD52 = Campath) B-Zell-Depletion mit monoklonalen Antikörpern (CD19) Blutstammzellapheresepräparat nach G-CSF-Mobilisation Lagerung und Transport: Kurier, nur nach telefonischer Vereinbarung Präparation von Spenderlymphozyten zur Immuntherapie Immunmagnetverfahren CD25-Selektion (CliniMACS) CD56-Selektion (CliniMACS) Lymphozyten des Stammzellspenders Lagerung und Transport: Kurier, nur nach telefonischer Vereinbarung Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 36 von 45

37 Herstellung von dendritischen Zellen Monozytapherese Ficoll-Separation, Monozytenadhäsion Differenzierungskultur mit Zytokinen zur klinischen Anwendung Autologe mononukleäre Zellen Lagerung undtransport: Kurier, nur nach telefonischer Vereinbarung Kryokonservierung von peripheren Blutstammzell- und Knochenmarktransplantaten, Erythrozyten, Thrombozyten, Lymphozyten und dendritischen Zellen Lagerung in Stickstoff-Dampfphase bei -140 C mit DMSO- bzw. Glycerin- Gefrierschutz Einfriergerät: Biofreeze BV 50 (Consartic) Autologe und allogene Zellen zur Transplantation, Zellen mit seltenem Antigen-Muster Lagerung und Transport: Kurier, nur nach telefonischer Vereinbarung Fluoreszenzaktivierte Hochgeschwindigkeitszellsortierung (FACS) Sortierung mittels Hochgeschwindigkeitssortiersystem Variabel, je nach zu sortierender Zellpopulation und Zellmenge Indikation: Generierung reiner Zellpopulationen, insbesondere bei Sortierung unter Berücksichtigung mehrerer immunphänotypischer Marker Lagerung und Transport: nach telefonischer Anmeldung Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 37 von 45

38 Transplantationsimmunologie HLA-Klasse-I-Antikörperscreening mittels LCT Indikation: Komplementabhängiger Mikrolymphozytotoxizitätstest 10 ml Vollblut Nachweis von komplementabhängigen HLA-Klasse-I-Antikörpern vor/nach Organ- oder Knochenmarktransplantation, bei HLA-sensibilisierten Patienten vor Thrombozytentransfusion, nach Transfusionszwischenfällen bei gegebener Indikation Lagerung und Transport: Transport bei Raumtemperatur; Vollblut wird bei +2 C bis +8 C gelagert, Serum bei 20 C HLA-Klasse-I-Antikörperdifferenzierung mittels LCT Indikation: Komplementabhängiger Mikrolymphozytotoxizitätstest 10 ml Vollblut Nachweis von spezifischen komplementabhängigen HLA-Klasse-I- Antikörpern vor/nach Organ- oder Knochenmark-/ Stammzelltransplantation, bei HLA-sensibilisierten Patienten vor Thrombozytentransfusion, nach Transfusionszwischenfällen bei gegebener Indikation Lagerung und Transport: Transport bei Raumtemperatur; Vollblut wird bei +2 C bis +8 C gelagert, Serum bei 20 C HLA-Klasse-I-Antikörperscreening mittels Festphasentechnik Indikation: ELISA/Luminex 10 ml Vollblut, Plasma Nachweis von HLA-Klasse-I-Antikörpern (komplementunabhängig) vor/nach Organ- oder Knochenmark-/ Stammzelltransplantation, bei HLAsensibilisierten Patienten vor Thrombozytentransfusion, nach Transfusionszwischenfällen bei gegebener Indikation Lagerung und Transport: Transport bei Raumtemperatur, Vollblut wird bei +2 C bis +8 C gelagert, Serum bzw. Plasma bei 20 C Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 38 von 45

39 HLA-Klasse-II-Antikörperscreening mittels Festphasentechnik Indikation: ELISA/Luminex 10 ml Vollblut, Plasma Nachweis von HLA-Klasse-II-Antikörpern (komplementunabhängig) vor/nach Organ- oder Knochenmark-/ Stammzelltransplantation, bei HLAsensibilisierten Patienten vor Thrombozytentransfusion, nach Transfusionszwischenfällen bei gegebener Indikation Lagerung und Transport: Transport bei Raumtemperatur, Vollblut wird bei +2 C bis +8 C gelagert, Serum bzw. Plasma bei 20 C HLA-Klasse-I-Antikörperdifferenzierung mittels Festphasentechnik Indikation: Luminex 10 ml Vollblut, Plasma Nachweis von HLA-Klasse-I-Antikörpern (komplementunabhängig) vor/nach Organ- oder Knochenmark-/ Stammzelltransplantation, bei HLAsensibilisierten Patienten vor Thrombozytentransfusion, nach Transfusionszwischenfällen bei gegebener Indikation Lagerung und Transport: Transport bei Raumtemperatur, Vollblut wird bei +2 C bis +8 C gelagert, Serum bzw. Plasma bei 20 C HLA-Klasse-II-Antikörperdifferenzierung mittels Festphasentechnik Indikation: Luminex 10 ml Vollblut, Plasma Nachweis von HLA-Klasse-II-Antikörpern (komplementunabhängig) vor/nach Organ- oder Knochenmark-/ Stammzelltransplantation, bei HLAsensibilisierten Patienten vor Thrombozytentransfusion, nach Transfusionszwischenfällen bei gegebener Indikation Lagerung und Transport: Transport bei Raumtemperatur, Vollblut wird bei +2 C bis +8 C gelagert, Serum bzw. Plasma bei 20 C Gültige bzw. genehmigte Formblätter sind elektronisch signiert und daher ohne Unterschrift gültig. Seite 39 von 45