Lebende Chemiefabriken: Chemische Verteidigung bei Blattkäferlarven Living Chemical Plants: Chemical Defense in Leaf Beetle Larvae

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1 Lebende Chemiefabriken: Chemische Verteidigung bei Blattkäferlarven Living Chemical Plants: Chemical Defense in Leaf Beetle Larvae Burse, Antje; Frick, Sindy; Discher, Sabrina; Tolzin-Banasch, Karla; Strauß, Anja; Kirsch, Roy; Boland, Wilhelm Max-Planck-Institut für chemische Ökologie, Jena Korrespondierender Autor Zusammenfassung Pflanzen bilden zur Abwehr von herbivoren Insekten eine Fülle von Naturstoffen. Viele Käferarten haben jedoch faszinierende Strategien entwickelt, mit diesen Substanzen umzugehen, und sich so Lebensräume geschaffen, die für andere Organismen nicht attraktiv sind. Oftmals werden die pflanzlichen Substanzen für die eigene Interaktion mit der Umwelt genutzt. Eine interessante Aufgabe in der chemischen Ökologie stellt die Aufklärung dieser Strategien dar, die nicht nur die Evolution von Käfer und Pflanze, sondern auch anderer, in einem Ökosystem lebender Arten beeinflussen können. Summary In response to herbivorous insects plants produce a variety of natural compounds. Many beetle species developed sophisticated strategies to deal with these substances allowing colonization of habitats non attractive for other organisms. Frequently the plant derived compounds are used by the herbivores for their own interaction with the environment. Studying such detoxification strategies is one of the important topics in chemical ecology. They manipulate not only the evolution of beetles and plants but also of other species living in an ecosystem. Die chemische Abwehr mancher Käferarten wird durch ihre Wirtspflanze bestimmt Die Käfer (Coleoptera) sind mit über Arten in etwa 20 Überfamilien und 166 Familien die weltweit größte Ordnung aus der Klasse der Insekten. Seit mehr als 240 Millionen Jahren nutzen Käfer Bedecktsamer als Nahrungsquelle, was zu einer wechselseitigen Anpassung führte und erheblich zu der heute zu beobachtenden Artenvielfalt beider Organismengruppen beitrug [1]. Bei den im Verlaufe der Evolution stattfindenden Adaptationsprozessen spielen Naturstoffe (Sekundärmetabolite) eine entscheidende Rolle. Pflanzenfressende (phytophage) Käfer entwickelten verschiedene Taktiken im Umgang mit pflanzlichen Sekundärmetaboliten, wobei der Sequestrierung, das heißt der Aufnahme und Speicherung von Pflanzeninhaltsstoffen aus der Nahrung, eine wichtige Rolle zukommt. Vor allem innerhalb der Familie der Blattkäfer (Chrysomelidae) ist die Nutzung sequestrierter Verbindungen für die eigene Abwehr von Fraßfeinden weit verbreitet [1]. Häufig führt der Erwerb der Sequestrierung zu einer Spezialisierung der 2009 Max-Planck-Gesellschaft 1/8

2 jeweiligen Chrysomeliden-Art auf einen bestimmten Wirt und stellt einen wichtigen Faktor dar, der zur Koevolution von Pflanze und Konsument beiträgt. Innerhalb der Chrysomelidae sind viele Spezies bekannt, bei denen sich nicht nur die adulten Käfer, sondern auch die Larven durch Pflanzeninhaltsstoffe schützen [2]. So besitzen die Larven des Subtribus Chrysomelina auf dem Rücken spezielle Drüsen, in denen solche Verbindungen gespeichert und bei Gefahr als Sekret abgesondert werden (Abb. 1). Pappelblattkäfer (Chrysomela populi). A : Larve m it Sekrettropfen, die durch Muskelkontraktion aus den Reservoirs des Wehrsystem s vorübergehend abgesondert werden können, wenn das Tier gereizt wird. B: Wehrdrüse m it Sekret. Max-Planck-Institut für chem ische Ökologie/Kirsch; Burse Chrysomelina-Larven können die wirksamen Komponenten ihres Wehrsekretes entweder autogen synthetisieren oder Vorstufen aus der Nahrung sequestrieren. Dabei scheint die de-novo-synthese von cyclopentanoiden Monoterpenen (Iridoiden) eine entwicklungsgeschichtlich alte Fähigkeit zu sein [3], (Abb. 2a). Sequestriert werden von diesen Tieren biologisch inaktive Glucoside, die erst im Drüsenreservoir in die aktive Form umgewandelt werden. Dadurch gestaltet sich die Synthese von Abwehrsubstanzen einerseits ökonomischer, andererseits liefert die freigewordene Glucose aus dem Glucosidkatabolismus zusätzliche Energie. Im Gegensatz zur Nutzung von nur einem einzigen Sekundärmetaboliten aus der Wirtspflanze wie zum Beispiel Salicin, das zu Salicylaldehyd umgesetzt wird gibt es innerhalb der Chrysomelina-Gruppe Arten, die Glucoside verschiedenster Alkohole aufnehmen und mit autogen synthetisierten Carbonsäuren verestern, was zu mehr als 70 verschiedenen Verbindungen im Wehrsekret führt ( Abb. 2b,c). Kombiniert man dieses entwicklungsgeschichtliche Szenario mit der Abhängigkeit von der Wirtspflanze, so können Stammbäume erstellt werden, die die wechselseitige Anpassung von Blattkäfern und Wirt widerspiegeln [3,4], (Abb. 2d) Max-Planck-Gesellschaft 2/8

3 Rekonstruktion der Phylogenie des Subtribus Chrysom elina unter Berücksichtigung der Biosynthesestrategien der Wehrverbindungen. A : rot, autogene Biosynthese von Iridoiden; B: grün, Produktion von Salicylaldehyd ausgehend von Salicin (Sequestrierung aus Pflanzen der Salicaceae- Fam ilie); C: blau, Produktion von Esterverbindungen, die aus de-novo-synthetisierter Carbonsäure und sequestrierten, glucosidisch gebundenen Alkoholen gebildet werden; D: Rekonstruktion der Phylogenie anhand m itochondrialer Kontrollregionen und unter Berücksichtigung der Wirtspflanzenabhängigkeit (nach Term onia et al. [3]). Max-Planck-Institut für chem ische Ökologie/Tolzin- Banasch; Burse So sind Arten, die ausschließlich Salicin sequestrieren, an Weidengewächse adaptiert. Interessanterweise wurden im zentralasiatischen Altai von einer Chrysomelina-Art (C. lapponica) Populationen auf Weide und Birke entdeckt, sodass hier bereits ein Wirtswechsel innerhalb einer Spezies stattgefunden hat. Dadurch verändern sich die Komponenten des Abwehrsekretes, was sich auch auf das Spektrum der Fraßfeinde im neuen Lebensraum auswirken kann. Im Verlauf der Evolution müssen Sequestrierer sich also immer wieder mit der Wirkung neuer pflanzlicher Sekundärmetabolite auseinandersetzen. Transportproteine vermitteln die Aufnahme von Pflanzeninhaltsstoffen Um Faktoren zu identifizieren, die sich bei einem Wirtswechsel verändern, wurden die Vorgänge, die in den Blattkäferlarven bei der Sequestrierung ablaufen, genauer untersucht. Zunächst konnte anhand von Fütterungsexperimenten mit eigens dafür synthetisierten Thioglucosiden gezeigt werden, dass Transportproteine den Import pflanzlicher Glucoside in die Larven vermitteln müssen [5,6]. Diese strukturellen S-Analoga der natürlichen O-Glucoside eignen sich wegen ihrer Stabilität gegenüber enzymatischer Hydrolyse sehr gut für die Untersuchung von Transportvorgängen. Mit der Nahrung aufgenommene Thioglucoside akkumulierten als intaktes Molekül im Reservoir der Wehrdrüse, sodass sie sowohl die Darmmembran als auch die Membran der Wehrdrüse passiert haben mussten. Dies wäre bei den polaren Glucosiden ohne Transportproteine nicht möglich und erlaubt eine kontrollierte Passage zum Zielort. Die Wissenschaftler am Max-Planck-Institut für chemische Ökologie konnten ferner nachweisen, dass selbst de-novo-produzenten potenziell zur Sequestrierung imstande sind [5]. Fütterungen strukturell unterschiedlicher S-Glucoside zeigten, dass die Iridoidproduzenten nur das S-Glucosid ihrer terpenoiden Vorstufe aufnehmen, während die Sequestrierer ausschließlich das S-Analogon des Salicins importieren [6]. Von einer Art, innerhalb derer bereits ein Wirtspflanzenwechsel stattfand, wurden Larven von Weiden- und Birken-Populationen untersucht. Es zeigte sich, dass alle untersuchten Vertreter prinzipiell in der Lage sind, sowohl Salicin als auch in geringem Ausmaß andere glucosidisch gebundene Alkohole zu sequestrieren [7]. Eine Erweiterung des Substratspektrums der Transportproteine, die für die Naturstoffaufnahme verantwortlich 2009 Max-Planck-Gesellschaft 3/8

4 sind, könnte demzufolge für den Wirtspflanzenwechsel eine wichtige Voraussetzung gewesen sein. Auch de- novo-produzenten können Pflanzeninhaltsstoffe aufnehmen Die Entdeckung, dass auch Vertreter der de-novo-produzenten Transportsysteme zur Aufnahme von Pflanzeninhaltsstoffen besitzen, wirft die Frage auf, inwieweit die Sequestrierung unter natürlichen Bedingungen dort schon eine Rolle spielt. Um eine tatsächliche Aufnahme aus der Pflanze nachzuweisen, wurde ein markiertes Intermediat eines für Pflanzen und Bakterien einzigartigen Stoffwechselweges (MEP- Route) eingesetzt, der Vorstufen für die Terpenoidsynthese liefert [8]. Zunächst wurde Blattmaterial mit dieser eigens für Fraßexperimente synthetisierten markierten Vorstufe behandelt und dann an die Blattkäferlarven verfüttert. Eine Analyse ihres Sekretes ergab den Einbau pflanzenbürtiger Terpenoide in die iridoidalen Wehrsubstanzen bei Arten, die sich an Weidengewächse angepasst hatten. Durch den Einsatz analytischer Methoden konnte eine potenzielle Iridoidvorstufe in den entsprechenden Wirtspflanzen, wie in Weide und Pappel, identifiziert werden, sodass tatsächlich auch bei de-novo-produzierenden Arten Sequestrierung nachweisbar ist. Zusätzlich konnte gezeigt werden, dass nicht nur das Glucosid, sondern auch das Aglucon der Iridoidvorstufe, nämlich 8-OH-Geraniol, die Darmmembran passieren kann [8], (Abb. 3). Letzteres wurde jedoch auf seiner Passage zur Wehrdrüse mit einem Glucoserest versehen. Das Aglucon selbst war im Sekret nicht nachweisbar. Da sich die Glucoside nur kontrolliert mithilfe von Transportern durch Membranen hindurch bewegen können, schützt die Larve sich so vor ungehinderter Diffusion potenziell giftiger Substanzen Max-Planck-Gesellschaft 4/8

5 Schem atische Darstellung des Netzwerkes von Transportprozessen. Glucoside und ihre Agluca gelangen m it der Nahrung in den Verdauungstrakt (1). Die glucosidisch gebundenen Substanzen passieren m ithilfe von Transportproteinen die Darm m em bran (2). Sie werden über die Häm olym phe entweder in die Wehrdrüsen transportiert (3), wo sie als Vorstufen zur Biosynthese der Iridoide Verwendung finden (4), oder sie werden durch die exkretorische Aktivität der Malpighischen Gefäße und des Enddarm s wieder ausgeschieden (7). Agluca können die Darm m em bran verm utlich durch Diffusion passieren (5). Sie gelangen zunächst in den Fettkörper, wo sie m it einem Glucoserest versehen werden (6). So reglucosyliert, können sie nun ebenfalls durch die spezifischen Transportm echanism en in die Wehrdrüse aufgenom m en (3) und in Iridoide um gewandelt (4) oder auch ausgeschieden werden (7). Max-Planck-Institut für chem ische Ökologie/Discher Die Forscher nehmen an, dass die Glucosylierung im Fettkörper, einem biosynthetisch hoch aktiven Gewebe der Larven, stattfindet. Durch die Verknüpfung von molekularbiologischen und analytischen Methoden konnten sie zeigen, dass die frühen Stufen der Iridoidbiosynthese scheinbar im Fettkörper ablaufen, wobei als letzte frühe Stufe der Terpenbiosynthese das Glucosid des 8-OH-Geraniols gebildet wird, das dort mit der Hämolymphe zur Wehrdrüse transportiert wird, wo die Toxifizierung stattfindet [9], siehe Abbildung 4. Vergleiche mit anderen Geweben, auch mit Fettkörpergewebe von Salicin-sequestrierenden Larven, deuteten sowohl durch eine erhöhte Transkription als auch enzymatische Aktivität der Hydroxymethylglutaryl-CoA- Reduktase (HMGR) auf eine Lokalisierung dieser Syntheseschritte im Fettkörper hin. HMGR ist ein Schlüsselenzym des Mevalonatwegs und damit auch der frühen Iridoidsynthese, welches die Vorstufen zur Bildung aller Terpenoide im tierischen Organismus liefert. Durch den tatsächlichen Nachweis des 8-OH- Geraniol-O-Glucosids im Fettkörper der Iridoidproduzenten konnten diese Ergebnisse auch analytisch gestützt werden Max-Planck-Gesellschaft 5/8

6 Biosynthese der Wehrsubstanzen in Iridoid-produzierenden Blattkäferlarven. Das Fettkörpergewebe liefert 8-OH-Geraniol- O-Glucosid, das durch die Häm olym phe zur Wehrdrüse transportiert wird, wo es zu Iridoiden um gesetzt wird. Sein Aglucon, näm lich 8-OH-Geraniol, kann durch Hem m ung der Hydroxym ethylglutaryl-coa-reduktase (HMGR) in den Stoffwechselweg eingreifen. Da die Larven Glucosid und Aglucon auch aus der Nahrung aufnehm en können, könnten diese als exogene Substanzen zusätzlich die Iridoidbiosynthese regulieren. IDP, Isopentenyldiphosphat, DMADP, Dim ethylallyldiphosphat, GDP, Geranyldiphosphat. Max-Planck-Institut für chem ische Ökologie/Frick Die Fähigkeit, Vorstufen de novo und über Sequestrierung gewinnen zu können, wirft die Frage auf, ob die Larven auch in der Lage sind, beide Prozesse zu koordinieren. So könnten gemeinsame Vorstufen beider Prozesse (z. B. 8-OH-Geraniol oder das Glucosid) in die Regulation der de-novo-synthese eingreifen. Hemmexperimente der HMGR mit Rohenzymextrakt aus dem Fettkörper oder gereinigtem rekombinanten Protein zeigten, dass 8-OH-Geraniol, aber weder sein Glucosid noch Geraniol, die Aktivität der HMGR inhibiert [10], (Abb. 4). Damit könnten nicht nur endogene, sondern auch exogene Intermediate des Terpenoidstoffwechsels in die Regulation seiner Enzyme eingreifen und je nach Angebot in der Wirtspflanze oder Verbrauch des Wehrsekretes de-novo-synthese und Sequestrierung ausbalancieren. Solch ein duales System zur Herstellung von Wehrsubstanzen könnte dazu beitragen, dass Wirtspflanzen leichter gewechselt werden können, ohne den Schutz vor Fraßfeinden zu verlieren. Die Studien an Chrysomelina-Käfern zeigen die Komplexität des Sequestrierungsprozesses, dessen Entwicklung Folgen für die Wechselwirkung der Arten in einem Lebensraum haben kann. Da die Sequestrierung von Glucosiden ein weit verbreitetes Phänomen im Tierreich ist, könnten die anhand des Chrysomelina-Modells gewonnenen Erkenntnisse auf andere Arten übertragbar sein. Originalveröffentlichungen Nach Erweiterungen suchenbilderweiterungchanneltickerdateilistehtml Max-Planck-Gesellschaft 6/8

7 ErweiterungJobtickerKalendererweiterungLinkerweiterungMPG.PuRe-ReferenzMitarbeiter (Employee Editor)PersonenerweiterungPublikationserweiterungTeaser mit BildTextblockerweiterungVeranstaltungstickererweiterungVideoerweiterungVideolistenerweiterungYouTube- Erweiterung [1] P. Laurent, J. C. Braekman, D. Daloze, J. Pasteels: Biosynthesis of defensive compounds from beetles and ants. European Journal of Organic Chemistry 15, (2003). [2] P. Laurent, J. C. Braekman, S. Daloze: Insect chemical defense. Chemistry of Pheromones and Other Semiochemicals II Topics of Current Chemistry 240 (S. Schulz ed.), Springer Verlag, (2005). [3] A. Termonia, T. H. Hsiao, J. M. Pasteels, M. C. Milinkovitch: Feeding specialization and host-derived chemical defense in Chrysomeline leaf beetles did not lead to an evolutionary dead end. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA 98, (2001). [4] P. Fernandez, M. Hilker: Host plant location by Chrysomelidae. Basic and Applied Ecology 8, (2007). [5] B. K. Feld, J. M. Pasteels, W. Boland: Phaedon cochleariae and Gastrophysa viridula (Coleoptera : Chrysomelidae) produce defensive iridoid monoterpenes de novo and are able to sequester glycosidically bound terpenoid precursors. Chemoecology 11, (2001). [6] J. Kuhn, E. M. Pettersson, B. K. Feld, A. Burse, A. Termonia, J. M. Pasteels, W. Boland: Selective transport systems mediate sequestration of plant glucosides in leaf beetles: A molecular basis for adaptation and evolution. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA 101, (2004). [7] J. Kuhn, E. M. Pettersson, B. K. Feld, L. Nie, K. Tolzin-Banasch, S. Machkour M Rabet, J. M. Pasteels, W. Boland: Sequestration of plant-derived phenolglucosides by larvae of the leaf beetle Chrysom ela lapponica: Thioglucosides as mechanistic probes. Journal of Chemical Ecology 33, 5-24 (2007). [8] M. Kunert, A. Søe, S. Bartram, J. Pasteels, S. Discher, K. Tolzin-Banasch, L. Nie, A. David, W. Boland: De novo biosynthesis versus sequestration: a network of transport systems supports in ancestral leaf beetle larvae both modes for the production of iridoid defenses. Insect Biochemistry and Molecular Biology 38, (2008). [9] A. Burse, A. Schmidt, S. Frick, J. Kuhn, J. Gershenzon, W. Boland: Iridoid biosynthesis in Chrysomelina larvae: Fat body produces early terpenoid precursors. Insect Biochemistry and Molecular Biology 37, (2007) Max-Planck-Gesellschaft 7/8

8 [10] A. Burse, S. Frick, A. Schmidt, R. Büchler, M. Kunert, J. Gershenzon, W. Brandt, W. Boland: Implication of HMGR in homoeostasis of sequestered and de novo produced precursors of the iridoid biosynthesis in leaf beetle larvae. Insect Biochemistry and Molecular Biology 38, (2008) Max-Planck-Gesellschaft 8/8