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1 Tab. I: Übersicht über die verwendeten Wirkstoffe. Substanz Carbazol-1- essigsäure Excitation/ Absorption [nm] Emission [nm] M r LD 50 [mg/kg] ,3 nicht bekannt Strukturformel CH 2 C - NH Diclofenacnatrium ,1 Maus*: 390 oral Cl CH 2 CNa NH Cl Fenoterol ,3 Maus*: H 1100 s.c oral NH xybuprocain 228 bzw. 308 p-aminohippursäure (PAH) p-acetylaminohippursäure (PAAHA) Prednisolon- 21-acetat ,9 Maus # : 42,5 s.c. 6,8 i.v. H 3 C H 2N (CH 2 ) 3 C CH 2 CH 2 CH 2 N CH ,2 Maus # : H 4930 i.v. C N CH 2 C ,2 nicht H bekannt C N CH 2 C ,5 Maus # : 3500 s.c. H 2 N H 3 C C H H N C CH 2 C * Budavari et al., 1989 # Sicherheitsdatenblätter, 1996

2 Tab. II: Diclofenac-Kammerwasserkonzentrationen und die dazugehörigen Einwirkzeiten für 50 Patienten nach Applikation von Diclofenac-Augentropfen (0,1 % Voltaren, einmalig 2 Tropfen). Zeit nach Applikation [min] Berechnete Diclofenac- Konzentration [ng/ml] , , , , ,0 95 5, , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , ,0

3 Tab. III: Übersicht über die Versuche mit der in-situ perfundierten Rattenleber. Ratten- Geschlecht Gewicht [g] Injektionsabfolge Nr. (jeweils 50 µl) 1 männlich Evans Blue/ 14 C-Saccharose/ 3 H 2 4. Diclofenac C-Diclofenac 2 männlich Evans Blue/ 14 C-Saccharose/ 3 H 2 4. Diclofenac C-Diclofenac 3 weiblich Evans Blue/ 14 C-Saccharose/ 3 H 2 4. Diclofenac C-Diclofenac 4 männlich PAH 5 männlich Evans Blue/ 14 C-Saccharose/ 3 H 2 5. PAH 6. PAH 7. PAH 8. PAAHA 6 männlich Evans Blue/ 14 C-Saccharose/ 3 H 2 4. PAAHA 6. Evans Blue/ 14 C-Saccharose/ 3 H 2 7 männlich Evans Blue/ 14 C-Saccharose/ 3 H 2 6. PAAHA 7. PAH + Probenecid 8. PAH + Probenecid 8 männlich Evans Blue/ 14 C-Saccharose/ 3 H 2 Eingesetzte Konzentration 3. 3,9 mg/ml 4. 4,3 mg/ml 5. 1 µci 3. 3,9 mg/ml 4. 4,3 mg/ml 5. 1 µci 3. 3,9 mg/ml 4. 4,3 mg/ml 5. 1 µci 1. 0,0056 mg/ml 2. 0,0112 mg/ml 3. 0,056 mg/ml 4. 0,112 mg/ml 5. 0,060 mg/ml 2. 8,03 mg/ml 3. 8,03 mg/ml 4. 8,03 mg/ml 5. 8,03 mg/ml 6. 8,03 mg/ml 7. 8,03 mg/ml 8. 4,1 mg/ml 2. 8,08 mg/ml 3. 8,08 mg/ml 4. 2,0 mg/ml 5. 2,0 mg/ml 6. 2,0 mg/ml/ 3. 8,0 mg/ml 4. 12,0 mg/ml 5. 2,0 mg/ml 6. 6,0 mg/ml 7. 8,0 mg/ml in 17,4 8. 8,0 mg/ml in 17,4 1. 2,0 mg/ml/ 3. 8,0 mg/ml

4 6. PAAHA 7. PAH + Probenecid 8. PAH + Probenecid 9 männlich Evans Blue/ 14 C-Saccharose/ 3 H 2 4. Fenoterol 5. Fenoterol 6. Fenoterol und Diclofenac 7. Fenoterol und Diclofenac 8. Diclofenac 10 männlich Evans Blue/ 14 C-Saccharose/ 3 H 2 4. Fenoterol 5. Fenoterol 6. Fenoterol und Diclofenac 7. Fenoterol und Diclofenac 8. Diclofenac 11 männlich Evans Blue/ 14 C-Saccharose/ 3 H 2 2. Fenoterol 4. Fenoterol 5. Fenoterol und Diclofenac 6. Fenoterol und Diclofenac 7. Diclofenac 8. Diclofenac 12 männlich Evans Blue/ 14 C-Saccharose/ 3 H 2 2. Fenoterol 6. PAAHA C-Diclofenac C-Diclofenac 4. 12,0 mg/ml 5. 1,99 mg/ml 6. 5,98 mg/ml 7. 8,0 mg/ml in ,0 mg/ml in ,06 mg/ml 3. 12,05 mg/ml 4. 16,12 mg/ml 5. 8,06 mg/ml 6. 8,06 mg/ml und 7. 8,06 mg/ml und ,09 mg/ml 3. 16,06 mg/ml 4. 8,02 mg/ml 5. 16,08 mg/ml 6. 8,04 mg/ml und 7. 8,04 mg/ml und ,0 mg/ml 3. 10,0 mg/ml 4. 15,0 mg/ml 5. 7,5 mg/ml und 6. 7,5 mg/ml und 1 0,5 mg/ml ,0 mg/ml 2. 11,05 mg/ml 3. 22,1 mg/ml 4. 16,3 mg/ml 5. 4,75 mg/ml 6. 9,5 mg/ml 7. 1 µci 8. 1 µci

5 Tab. IV: Injektionsschema für die Anästhesie von Ratten (Ketamin: 80 mg/kg und Xylazin: 10 mg/kg Körpergewicht). Gewicht der Ketamin [ml] Xylazin [ml] Gesamt [ml] Ratte [g] 180 0,144 0,090 0, ,152 0,095 0, ,160 0,100 0, ,168 0,105 0, ,176 0,110 0, ,184 0,115 0, ,192 0,120 0, ,200 0,125 0, ,208 0,130 0, ,216 0,135 0, ,224 0,140 0, ,232 0,145 0, ,240 0,150 0, ,248 0,155 0, ,256 0,160 0, ,264 0,165 0, ,272 0,170 0, ,280 0,175 0, ,288 0,180 0, ,296 0,185 0, ,304 0,190 0, ,312 0,195 0, ,320 0,200 0, ,328 0,205 0, ,336 0,210 0, ,344 0,215 0, ,352 0,220 0, ,360 0,225 0, ,368 0,230 0, ,376 0,235 0, ,384 0,240 0, ,392 0,245 0, ,400 0,250 0, ,408 0,255 0, ,416 0,260 0, ,424 0,265 0, ,432 0,270 0, ,440 0,275 0,715

6 Anhang: Abbildungen Abb. I: Anleitung zum Häkeln sogenannter Luftmaschen als Reaktionskapillare für den photochemischen Reaktor. Zuerst einen losen Knoten ca. 15 cm vom Ende entfernt bilden (A), dann mit der Häkelnadel die Kapillare durch die entstandene Schlaufe ziehen (B) und diesen Vorgang solange wiederholen (C) bis ca. 15 cm verbleiben.

7 Anhang: Software Verwendete Software 1. Der Text der vorliegenden Arbeit wurde mit dem Programm Word 6.0c (Microsoft Corperation, Houghton, U.S.A.) geschrieben. 2. Die ersten Bearbeitungen (Berechnungen) der Daten erfolgten mit Excel 5.0c (Microsoft Corperation, Houghton, U.S.A.). 3. Für die Darstellung der Daten (incl. HPLC-Chromatogramme) wurde rigin 4.1 (Microcal Software, Inc., Northampton, U.S.A.) verwendet. 4. Die Strukturformeln wurden mit dem Programm ChemWindow (Cherwell Scientific Publishing, xford, England) gezeichnet. 5. Die Abbildungen 3-6, 8-10, 53 und 57 wurden unter Verwendung des Programmes Harvard Graphics 2.0 (Software Publishing Corporation, Mountain View, U.S.A.) erstellt. 6. Powerpoint 4.0c (Microsoft Corperation, Houghton, U.S.A.) wurde für die Erstellung von Diapositiven genutzt. 7. Die Modellberechnungen und statistischen Auswertungen erfolgten mit SCIENTIST 2.01 (MicroMath Scientific Software, Salt Lake City, U.S.A.). 8. Die verwendete HPLC-Software für die Arbeit in Deutschland war das Programm PC1000 Version 3.0 (Thermo Separation Products, Darmstadt-Kranichstein) und für den Aufenthalt an der University of Queensland/Brisbane (Australien) das Programm Delta Chromatography Data System 5.0 (Digital Solutions Pty. Ltd., Margate, Australien). 9. Die Systemoberfäche war S/2 Warp (IBM, Dortmund), bzw. Windows 95 (Microsoft Corperation, Houghton, U.S.A.) bei Verwendung des Programmes SCIENTIST 2.01.

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