BD BBL CHROMagar Salmonella

Transkript

1 GEBRAUCHSANWEISUNG GEBRAUCHSFERTIGE PLATTENMEDIEN PA Rev.: April 2013 BD BBL CHROMagar Salmonella U.S. Patent Nr. 5,098,832, 5,194,374 VERWENDUNGSZWECK BBL CHROMagar Salmonella ist ein selektives Differenzierungsmedium zur Isolierung und vorläufigen Identifizierung von Salmonella- Spezies aus klinischen Stuhlproben. BBL CHROMagar Salmonella wurde außerdem durch das AOAC Research Institute im Rahmen des Programms Performance Tested Methods ausschließlich zur Analyse von rohem Rinderhack, rohem Huhn, rohem Fisch, Salat und Schaleneiern validiert. Für die Vergleichstests wurden ISO-, USDA FSIS- und FDA BAM-Methoden angewandt. 1-3 BBL CHROMagar Salmonella wurde zu den in den ISO-, FDA- und USDA-Methoden empfohlenen Plattenmedien als gleichwertig befundet. GRUNDLAGEN UND ERLÄUTERUNG DES VERFAHRENS Mikrobiologische Methode. Salmonella sind in Tierpopulationen ubiquität vorhanden und werden im Allgemeinen aus dem Darmtrakt von Tieren und Menschen isoliert. Sie gehören zu den häufigsten Organismen, die mit Lebensmittelinfektionen oft tierischen Ursprungs assoziiert werden. 4 Durch Salmonella hervorgerufene Infektionen wurden mit Geflügel, Rind, Schokolade, Milchprodukten und pflanzlichen Erzeugnissen in Verbindung gebracht. 5 BBL CHROMagar Salmonella dient der Isolierung und Differenzierung von Salmonella-Spezies. Der Zusatz chromogener Substrate zu dem Medium ermöglicht den Nachweis von Salmonella-Spezies aus anderer Flora. BBL CHROMagar Salmonella wurde ursprünglich durch A. Rambach, CHROMagar, Paris (Frankreich) entwickelt. BD hat unter einer Lizenzvereinbarung diese Rezeptur optimiert, durch Verwenden des Urheberrechts, das in der Herstellung des BBL CHROMagar Salmonella vorbereiteten Plattenmediums unter Verwendung der Difco CHROMagar Salmonella dehydrierten Rezeptur des Kulturmediums gebraucht wird. Speziell ausgewählte Peptone liefern in BBL CHROMagar Salmonella die Nährstoffe. Grampositive Organismen werden generell aufgrund des selektiven Basismediums gehemmt. Die Zusatz einer antimykotischen Substanz verhindert das Wachstum von Candida-Spezies, und andere antimikrobielle Substanzen dienen zur Wachstumshemmung von gramnegativen, nicht glucosefermentierenden Bakterien und Proteus-Spezies, die möglicherweise die Salmonella Kolonien überwuchern können. In dem Medium ist eine chromogene Mischung enthalten. Aufgrund metabolischer Unterschiede in Anwesenheit ausgewählter Chromogene erscheinen die Kolonien der Salmonella-Spezies in hellvioletter (rosa bis purpurrot) Farbe, wohingegen unerwünschte Bakterien entweder gehemmt werden oder blaugrüne oder farblose Kolonien bilden. *VOM HERSTELLER ZUR VERFÜGUNG GESTELLTE PROBEN DIESES TESTKIT-MODELLS WURDEN UNABHÄNGIG DURCH DAS AOAC RESEARCH INSTITUTE EVALUIERT, DABEI WURDE FESTGESTELLT; DASS DIE LEISTUNG DEN SPEZIFIKATIONEN DES HERSTELLERS WIE AUF DER GEBRAUCHSANWEISUNG DES TESTKITS ANGEGEBEN ENTSPRICHT. DER HERSTELLER BESCHEINIGT; DASS DIESES KIT IN JEDER HINSICHT MIT DEN SPEZIFIKATIONEN; DIE URSPRÜNGLICH DURCH DAS AOAC RESEARCH INSTITUTE EVALUIERT WURDEN WIE IN Performance Tested Methods sm ZERTIFIKAT NR GENAU BESCHRIEBEN; KONFORM GEHEN. PA Seite 1 von 7

2 REAGENZIEN Zusammensetzung** pro 1 l destilliertem Wasser Chromopepton 22,0 g Chromogenmischung 0,34 g Hemmstoffe 0,02 g Agar 15,0 g ph 7,7 ± 0,2 **Nach Bedarf abgestimmt und/oder ergänzt auf die geforderten Testkriterien. VORSICHTSMASSNAHMEN. Nur zum gewerblichen Gebrauch vorgesehen. Bei übermäßiger Feuchtigkeit das Unterteil der Platte nach oben drehen, versetzt auf den Deckel legen und an der Luft trocknen lassen, um zu verhindern, dass sich während der Inkubation Deckel und Unterteil aneinander festsaugen. Während des Trocknens vor Licht schützen. Siehe AUFBEWAHRUNG UND HALTBARKEIT Um sich mit den durch Salmonella erwarteten chromogenen (Farb-) Reaktionen vertraut zu machen, wird empfohlen, dass der Anwender repräsentative, häufig an der Einrichtung beobachtete Stämme inokuliert. Folgende Stämme sind dabei zu empfehlen: Salmonella ser. Typhimurium, ATCC 14028; Salmonella ser. Dublin, ATCC 15480; Salmonella ser. Typhi, ATCC und Salmonella enterica subsp. arizonae, ATCC Klinische Proben können pathogene Mikroorganismen, z. B. Hepatitis-Viren und HIV enthalten. Beim Umgang mit allen mit Blut oder anderen Körperflüssigkeiten kontaminierten Artikeln sind die Allgemeinen Vorsichtsmaßnahmen 6-9 sowie die internen Richtlinien der Einrichtung zu beachten. Einzelheiten zu Verfahren unter Einhaltung aseptischer Arbeitsweise, Biogefährdung und Entsorgung des gebrauchten Produkts sind den ALLGEMEINEN GEBRAUCHSANLEITUNGEN zu entnehmen. AUFBEWAHRUNG UND HALTBARKEIT Nach Erhalt Platten bis unmittelbar vor dem Gebrauch im Dunkeln bei 2 8 C in der Originalverpackung lagern. Einfrieren und Überhitzen vermeiden. Die Platten können bis zum Verfallsdatum (s. Kennzeichnung auf der Verpackung) inokuliert und entsprechend den empfohlenen Inkubationszeiten inkubiert werden. Platten aus bereits geöffneten Stapeln mit jeweils 10 Platten können bei Lagerung in einem sauberen Bereich bei 2 8 C bis zu einer Woche verwendet werden. Haltbarkeit des Produkts Platten bei Anzeichen von mikrobieller Kontamination, Verfärbung, Austrocknung, Rissen oder sonstiger Anzeichen von Produktverfall nicht verwenden. QUALITÄTSSICHERUNG DURCH DEN ANWENDER Die Platten auf Anzeichen von Verfall (wie unter Haltbarkeit des Produkts beschrieben) überprüfen. Zur Leistungsprüfung repräsentative Platten mit Reinkulturen stabiler Kontrollorganismen inokulieren, die bekannte, gewünschte Reaktionen hervorrufen. Folgende Teststämme werden empfohlen: Stämme Salmonella Typhimurium ATCC Salmonella Enteritidis ATCC Citrobacter freundii ATCC 8090 Escherichia coli ATCC Klebsiella pneumoniae ATCC Proteus mirabilis ATCC PA Page 2 of 7 Wachstum Mäßiges bis starkes Wachstum hellvioletter bis violetter (rosa bis purpurrot) Kolonien Wachstum; violette (=rosa bis purpurrot) Kolonien Mäßiges bis starkes Wachstum hell-blaugrüner bis blaugrüner Kolonien Teilweise bis vollständig gehemmtes Wachstum, blaugrüne Kolonien Teilweise gehemmtes Wachstum, blaugrüne Kolonien Teilweise bis vollständig gehemmtes Wachstum

3 Enterococcus faecalis ATCC Staphylococcus aureus ATCC Aussehen des nicht inokulierten Mediums PA Page 3 of 7 Teilweise bis vollständig gehemmtes Wachstum, kleine blaugrüne Kolonien Hemmung (teilweise bis vollständig) Farblos bis hellgelb, transparent Anmerkungen: Die Qualitätskontrollen müssen unter Einhaltung der örtlich, landesweit und/oder bundesweit geltenden Bestimmungen oder Auflagen der Akkreditierungsorganisationen sowie der Standard-Qualitätskontrollverfahren Ihres Labors erfolgen. VORGEHENSWEISE Mitgeliefertes Arbeitsmaterial BBL CHROMagar Salmonella (90 mm Stacker Platten). Mikrobiologisch kontrolliert. Benötigtes, jedoch nicht mitgeliefertes Arbeitsmaterial Zusätzliche Kulturmedien, Reagenzien, Qualitätskontrollorganismen und andere Laborgeräte, die für das spezielle angewendete Laborverfahren wie ISO 7218, USDA FSIS MLG, FDA BAM oder ein spezielles, an der entsprechenden Einrichtung angewandtes Laborverfahren, gebraucht werden. Probenentnahme Einzelheiten zur Probenentnahme und -handhabung sind der einschlägigen Fachliteratur zu entnehmen. 1-5 Probenarten Diese Medium kann mit klinischen Stuhlproben und verschiedener Lebensmittelproben (rohes Rinderhack, rohes Huhn, roher Fisch, Salat und Schaleneier) verwendet werden. Testverfahren Aseptisch vorgehen. Die Agaroberfläche sollte glatt und feucht sein, jedoch keine überschüssige Feuchtigkeit aufweisen. Das Medium vor der Inokulation auf Raumtemperatur erwärmen lassen. Für klinische Proben: Die Proben so bald wie möglich nach Eingang im Labor auf einer BBL CHROMagar Salmonella inokulieren und zum Isolieren ausstreichen. Falls die Probe von einem Tupfer gezüchtet wird, Tupfer leicht über einen kleinen Bereich am Rand der Oberfläche rollen und anschließend aus diesem Bereich mit einer Öse ausstreichen. Je nach örtlicher Vorgehensweise kann zur Isolation von Salmonella und zum Nachweis anderer enteraler Pathogene eine Inokulation zusätzlicher Medien obligatorisch sein. Platten in ungekehrter Position (Agarseite nach oben) aerob für 24 h bei 35 ± 2 C inkubieren. Ist das Ergebnis nach 24 h negativ, für ein endgültiges Ergebnis weitere 24 h inkubieren. Hat sich die Farbe der Kolonie entwickelt, kann der BBL CHROMagar Salmonella dem Licht ausgesetzt werden. Typische Salmonella-Kolonien müssen biochemischen oder serologischen Bestätigungstests unterzogen werden. BBL CHROMagar Salmonella kann auch zur Subkultivierung aus vorangereicherten Medien wie Selenitbouillon oder Tetrathionat-Bouillon verwendet werden. Für Lebensmittelproben: Probenvorbereitung nach der im Microbiology Laboratory Guidebook der USDA FSIS beschriebenen Methode: Isolation and Identification of Salmonella from Meat, Poultry, and Egg Products (Isolation und Identifizierung von Salmonella aus Fleisch, Geflügel und Eiprodukten), das FDA BAM Kapitel über Salmonella, ISO-Richtlinien oder die für den Probentyp und der geografischen Region angemessenen Verfahrensanweisungen. Die inkubierte angereicherte Bouillonprobe auf einer BBL CHROMagar Salmonella-Platte inokulieren. Probe zur Isolierung ausstreichen, Platten in ungekehrter Position (Agarseite nach oben) aerob für 24 h bei 35 ± 2 C inkubieren. Ist das Ergebnis nach 24 h negativ, für ein endgültiges Ergebnis weitere 24 h inkubieren. Die auf dem BBL CHROMagar Salmonella für Salmonella typischen Kolonien einem Bestätigungstest wie in den Verfahren der ISO, USDA FSIS und FDA BAM dargestellt unterwerfen. 1-3 Ergebnisse Nach ordnungsgemäßer Inkubation die Platten vor einem weißen Hintergrund ablesen. Salmonella Typhimurium aund andere Salmonella-Spezies erscheinen, mit Ausnahme der

4 Salmonella enterica Subspecies arizonae und anderer Salmonella-Spezies, die für Lactose und Beta-Glucosidase positive sind, als hellviolette bis violette Kolonien. Diese Isolate erscheinen als blauviolette bis purpurrote Kolonien. Citrobacter und andere Colibakterien erscheinen als hellblaugrüne bis blaugrüne Kolonien. Einige Organismen, die keine der chromogenen Verbindungen hydrolysieren, können als farblose Kolonien erscheinen. LEISTUNGSMERKMALE UND VERFAHRENSBESCHRÄNKUNGEN BBL CHROMagar Salmonella ist ein selektives Differenzierungsmedium zur Isolierung und vorläufigen Identifizierung von Salmonella-Spezies aus klinischen Stuhlproben und verschiedener Lebensmittelproben. Zu erwartende Ergebnisse Salmonella-Spezies erscheinen, mit Ausnahme der für Lactose und Beta-Glucosidase positiven Salmonella-Spezies, auf diesem Medium als hellviolette bis violette (= rosa bis purpurrot) Kolonien. Diese Isolate erscheinen als blauviolette bis purpurrote Kolonien. Die folgenden Organismen wurden während interner und externer Bewertungen klinischer und industrieller Proben auf dem BBL CHROMagar Salmonella isoliert: Salmonella 8, (20):-:26 Salmonella ser. Javiana Salmonella enterica subsp. arizonae Salmonella ser. Johannesburg Salmonella enterica subsp. diarizonae Salmonella ser. Kentucky Salmonella ser. Abony Salmonella ser. London Salmonella ser. Adelaide Salmonella ser. Mbandaka Salmonella ser. Agona Salmonella ser. Michigan Salmonella ser. Anatum Salmonella ser. Minnesota Salmonella ser. Bareilly Salmonella ser. Montevideo Salmonella ser. Berta Salmonella ser. Muenster Salmonella ser. Brandenburg Salmonella ser. Newport Salmonella ser. California Salmonella ser. Oranienburg Salmonella ser. Cerro Salmonella ser. Panama Salmonella ser. Choleraesuis Salmonella ser. Paratyphi A Salmonella ser. Cubana Salmonella ser. Paratyphi B Salmonella ser. Derby Salmonella ser. Pomona Salmonella ser. DT 104 Salmonella ser. Poona Salmonella ser. Dublin Salmonella ser. Potsdam Salmonella ser. Enteritidis Salmonella ser. Pullorum Salmonella ser. Essen Salmonella ser. Rubislaw Salmonella ser. Gallinarum Salmonella ser. Schwarzengrund Salmonella ser. Gaminara Salmonella ser. Senftenberg Salmonella ser. Hadar Salmonella ser. St. Paul Salmonella ser. Hartford Salmonella ser. Thompson Salmonella ser. Heidelberg Salmonella ser. Typhi Salmonella ser. Illinois Salmonella ser. Typhimurium Salmonella ser. Infantis Salmonellaser. Typhimurium (Lactose positiv) Salmonella ser. Iverness Salmonella ser. Weltevreden Leistungsmerkmale 10 Klinische Tests: Der BBL CHROMagar Salmonella wurde in einem großen Diagnostiklabor getestet. Insgesamt 150 bekannt negative Stuhlproben und 110 bekannt positive Stuhlproben wurden auf dem BBL CHROMagar Salmonella getestet und mit der Leistung des XLD- und Hektoen Enteric-Agars verglichen. Die Sensibilität und Spezifität des BBL CHROMagar Salmonella- Mediums betrug nach h Inkubation 76 % bzw. 99 % und 90 % bzw. 94 % nach 48 h Inkubation. Die Sensibilität und Spezifität stieg nach Subkultivierung in Selenit F-Bouillon auf 99 % bzw. 97 % an. Ergebnisse zur Vergleichssensibilität und -spezifität des XLD-Agars betrugen 71 % und 97 % nach h Inkubation, 78 % und 95 % nach 48 h Inkubation. Die Sensibilitäts- und Spezifitätsergebnisse auf dem Hektoen Enteric-Agar betrugen 71 % und 94 % nach h, und 79 % und 93 % nach 48 h Inkubation. PA Page 4 of 7

5 Lebensmitteltests: USDA- und FDA-Methoden BBL CHROMagar Salmonella wurde auf Isolierung von Salmonella in rohem Huhn, rohem Rinderhack, rohem Fisch, Salat und Schaleneier in internen und AOAC anerkannten externen Labors evaluiert. Das rohe Huhn und Rinderhack wurde gemäß der USDA FSIS- Referenzmethoden verarbeitet. Der rohe Fisch und die Schaleneier wurden gemäß den FDA BAM-Verfahren verarbeitet. BBL CHROMagar Salmonella wurde mit dem Referenzmethodenmedium für die selektive Isolierung von Salmonella verglichen. Insgesamt 16 positive Kulturen wurden aus dem rohen Huhn gewonnen, 17 aus dem rohen Rinderhack, 18 aus dem rohen Fisch und Salat sowie 11 aus den Schaleneierproben. BBL CHROMagar Salmonella produziert mit den Referenzmethoden auf allen Grundsubstanzen vergleichbare Ergebnisse, was eine Methodenübereinstimmung von 100 % ergab. Zwanzig beimpfte rohe Hühnerproben wurden gemäß der USDA FSIS-Referenzmethode getestet. Das Huhn wurde mit einem niedrigen Inokulum von 8 CFU/25 g und einem hohen Inokulumspiegel von 50 CFU/25 g der Probe beimpft. BBL CHROMagar Salmonella isolierte 100 % (20/20) der niedrigen und hohen Impfspiegel von Salmonella. Bei Inokulumspiegel von unter 1 CFU/25 g wurde eine teilweise Isolierung erzielt. Es wurde natürlich kontaminiertes Huhn getestet. Die Isolierung von Salmonella betrug 100 % und die Most Probable Number (MPN = höchst wahrscheinliche Anzahl)/g ergab 0, Salmonella Isolate aus Lebensmitteln einschließlich verschiedene Serotypen wurden in Lactose-Bouillon für 24 h gezüchtet und anschließend 24 h in Tetrathionat-Bouillon subkultiviert. Die Tetrathionat-Bouillons wurden auf BBL CHROMagar Salmonella subkultiviert und bei 35 C inkubiert. Konnten nach 24 h keine violetten Kolonien isoliert werden, wurden die Platten für weitere 24 h inkubiert. BBL CHROMagar Salmonella isolierte 111 der Isolate. Vier Stämme wurden durch die Tetrathionat-Bouillon gehemmt und nicht auf dem BBL CHROMagar Salmonella oder einer nicht selektiven Kontrollplatte isoliert. Andere Isolate derselben Serotypen wie die vier Negativen erzeugten typische Kolonien, so dass die fehlende positive Reaktion Stamm- und nicht Serotyp-spezifisch war. Gesamtsensibilität des BBL CHROMagar Salmonella betrug 94 % (111 von 118 Isolaten). 65 Isolate einer Non-Salmonella wurden in Brain-Heart-Infusion-Bouillon für 24 h bei 35 C gezüchtet und auf BBL CHROMagar Salmonella für 24 h bei 35 C subkultiviert. Negative Platten wurden für insgesamt 48 h inkubiert. 61 der 65 Isolate zeigten auf dem BBL CHROMagar Salmonella keine violette Färbung mit einer Spezifität von 94 %. Die vier Non- Salmonella Stämme, die violette Färbung zeigten, wurden in Tetrathionat-Bouillon inokuliert (empfohlene Anreicherungsbouillon für USDA- und FDA-Methoden). Nach 24 h Inkubation wurden die Tetrathionat-Bouillon auf BBL CHROMagar Salmonella subkultiviert. Nach 48 h Inkubation zeigte ein Stamm Wachstum violetter Kolonien, drei Stämme wurden gehemmt. Die Gesamtspezifität der BBL CHROMagar Salmonella in dieser Studie, basierend auf der Anreicherung durch Tetrathionat-Bouillon, betrug 98 %. ISO-Methode BBL CHROMagar Salmonella wurde mit dem Referenzmethodenmedium für die selektive Isolierung von Salmonella in rohem Huhn, rohem Rinderhack, rohem Fisch, Salat und Schaleneier verglichen. Alle Grundsubstanzen wurden gemäß der ISO- Kultivierungsmethoden verarbeitet. Insgesamt 16 positive Kulturen wurden aus dem rohen Huhn gewonnen, 17 aus dem rohen Rinderhack, 9 aus dem rohen Fisch, 19 aus Salat und Schaleneierproben. BBL CHROMagar Salmonella produziert mit den Referenzmethoden auf allen Grundsubstanzen vergleichbare Ergebnisse, was eine Methodenübereinstimmung von 100 % ergab. 20 Proben von rohem Rinderhack, rohem Fisch, Salat und Schaleneiern wurden mit einem Inokulum von Salmonella niedriger Stufe beimpft und gemäß dem ISO-Kultivierungsverfahren analysiert. 20 Proben natürlich kontaminiertem rohen Huhn gemäß den ISO-Kultivierungsverfahren analysiert. BBL CHROMagar Salmonella wurde einem Panel von Referenzmedien für jede PA Page 5 of 7

6 Lebensmittelgrundsubstanz hinzugefügt. Die Methodenübereinstimmung von BBL CHROMagar Salmonella und anderer getesteter Referenzmedien betrug 100 %. Die niedrigen Inokulumspiegel reichten von 0,0036 bis 0,23 MPN/g. 127 Salmonella Isolate aus Lebensmitteln wurden in gepuffertem Peptonwasser für 18 h gezüchtet und anschließend 24 h in Rappaport-Vassiliades-Medium mit Soja (RVS) subkultiviert. Die RVS-Bouillons wurden auf BBL CHROMagar Salmonella subkultiviert und bei 35 C 24 h inkubiert. Konnten nach 24 h keine violetten Kolonien isoliert werden, wurden die Platten weitere 24 h inkubiert. BBL CHROMagar Salmonella isolierte 123 der Isolate. Die Isolierung der 4 Stämme, die auf dem BBL CHROMagar Salmonella nicht gewachsen sind, war auf dem nicht selektiven Kontrollmedium schwach. Gesamtsensibilität des BBL CHROMagar Salmonella betrug 96,8 % (123 von 127 Isolaten). Verfahrensbeschränkungen Gelegentlich können Stämme von Aeromonas hydrophila, Hafnia alvei, Pseudomonas aeruginosa, P. putida, Stenotrophomonas maltophilia, Acinobacter-Spezies oder Candida- Spezies nicht vollständig gehemmt werden, diese Kolonien können eine hellviolette bis violette Pigmentierung aufweisen. Bestätigungstests, die violett oder purpurrot als eine Indikatorfarbreaktion verwenden, können aufgrund der tatsächlichen Koloniefarbe schwer zu interpretieren sein. Seltene Stämme der folgenden Organismen: S. Typhi, S. Paratyphi A, S. Typhimurium, S. Choleraesuis, S. Minnesota, S. enterica subsp. Arizonae und S. Pullorum zeigen auf diesem Medium gar kein oder nur vermindertes Wachstum. Das ist Stamm-spezifisch bedingt und die Mehrheit der auf diese Serovarianten getesteten Stämme wurden isoliert. BD CHROMagar Salmonella Medium ist nicht zur Isolierung anderer pathogener Darmkeime als Salmonella geeignet. Bei einigen Proben kann eine purpurrote Verfärbung des Mediums ohne nachweisbaren Kolonienwachstum auftreten. Dieses ist als ein negatives Ergebnis zu werten. Sowohl vor als auch während der Inkubation BBL CHROMagar Salmonella vor Lichteinwirkung schützen, da Licht die Chromogene zerstören kann. Die Platten während der gesamten Lagerperiode originalverpackt im Karton aufbewahren. Inkubation in CO 2 wird nicht empfohlen. LITERATUR 1. Rose, Bonnie E Isolation and identification of Salmonella from meat, poultry and egg products. In: Microbiology laboratory guidebook, 3 rd ed., Food Safety and Inspection Service, U.S. Department of Agriculture, Washington, D.C. 2. U.S. Food and Drug Administration Bacteriological analytical manual (online), AOAC International, Gaithersburg, MD. 3. International Organization for Standards (ISO). Microbiology of food and animal feeding stuffs - Horizontal method for the detection of Salmonella spp., 4 th Edition, ISO 6579: Bopp, Brenner, Fields, Wells and Strockbine Escherichia, Shigella, and Salmonella. In Murray, Baron, Jorgensen, Pfaller, and Yolken (ed.), Manual of clinical microbiology, 8 th ed. American Society for Microbiology, Washington, D.C. 5. D Aoust, Mauer and Bailey Salmonella species. In: Doyle, Beuchat and Montville (ed.), Food microbiology: fundamentals and frontiers, 2 nd ed. American Society for Microbiology, Washington, D.C. 6. National Committee for Clinical Laboratory Standards Approved Guideline M29-A2. Protection of laboratory workers from occupationally acquired infections, 2 nd ed. NCCLS, Wayne, Pa. 7. Garner, J.S Hospital Infection Control Practices Advisory Committee, U.S. Department of Health and Human Services, Centers for Disease Control and Prevention. Guideline for isolation precautions in hospitals. Infect. Control Hospital Epidemiol. 17: U.S. Department of Health and Human Services Biosafety in microbiological and biomedical laboratories, HHS Publication (CDC), 4 th ed. U.S. Government Printing Office, Washington, D.C. 9. Directive 2000/54/EC of the European Parliament and of the Council of 18 September 2000 on the protection of workers from risks related to exposure to biological agents at work (seventh individual PA Page 6 of 7

7 directive within the meaning of Article 16(1) of Directive 89/391/EEC). Official Journal L262, 17/10/2000, p Unterlagen liegen vor, BD Diagnostic Systems. VERPACKUNG/LIEFERBARE PRODUKTE BBL CHROMagar Salmonella REF Gebrauchsfertige Plattenmedien, 20 Platten WEITERE INFORMATIONEN Weitere Informationen erhalten Sie bei Ihrer örtlichen BD-Vertretung. Becton Dickinson GmbH Tullastrasse 8 12 D Heidelberg/Germany Phone: Fax: Reception_Germany@europe.bd.com AOAC is a trademark and Performance Tested is a service mark of AOAC International. CHROMagar is a trademark of Dr. A. Rambach. Difco is a trademark of Difco Laboratories, subsidiary of Becton, Dickinson and Company. ATCC is a trademark of the American Type Culture Collection BD, BD Logo and all other trademarks are property of Becton, Dickinson and Company BD PA Page 7 of 7