Drosophila melanogaster

Ähnliche Dokumente
SCRIPTUM HIGH PRECISE

Pflanze direkt 2x PCR-Mastermix

Bachelorkurs Evolutionsbiologie II WS 2016/17 Woche 2, Experiment 1: Insertions/Deletions Polymorphismus in D.

Protokoll Praktikum für Humanbiologie Studenten

Novartis Pharma AG Schullabor. Wundermedizin. Experimente im Schullabor

Praktikum: Nachweis einer gentechnischen Veränderung in Lebensmitteln durch PCR

F-I Molekulare Zoologie: Teil I: Expressionsanalysen. Expressionsanalyse mittels RT-PCR

» PCR « Taq Polymerase S. Taq Polymerase E. Pwo Polymerase. Pfu Polymerase. ReproHot Proofreading Polymerase. ReproFast Proofreading Polymerase

RevTrans QPCR One-Step EvaGreen (No ROX)

Methodensammlung des LAG PCR-Nachweis von gentechnisch veränderten Organismen, die von pbr322 abgeleitete Sequenzen enthalten

Genisolierung in 2 Stunden : Die Polymerase-Ketten-Reaktion (PCR)

Squish PCR: Zeitsparende Methode zur Genotypisierung von Drosophila Stämmen

MPP Multiplex 2x PCR-Mastermix

Etablierung einer. Homemade - PCR

Auf der Suche nach der Wundermedizin

Produktkatalog Molekularbiologische Reagenzien

Auf der Suche nach der Wundermedizin

Modifizierte Gene Editor Mutagenese

Abbildungs- und Tabellenverzeichnis Abkürzungsverzeichnis Genbezeichnung. 1. Einleitung 1

Kulturen von humanen Nabelschnur-Endothelzellen (HUVEC) produzieren konstant Endothelin-1 (ET-1) und geben dieses in das Kulturmedium ab.

Western Blot. Zuerst wird ein Proteingemisch mit Hilfe einer Gel-Elektrophorese aufgetrennt.

A.torrentium Mikrosatelliten Protokoll, Mai 2012

Die Connexine Cx33 und Cx43 werden in der Retina der Ratte tageszeitlich reguliert

Molekularbiologische Laboruntersuchungen. Labormedizinvorlesung Krisztina Káldi

Praktikumsteil Charakterisierung und Genotypisierung floraler homöotischer Mutanten

Inhaltsverzeichnis. Polymerase Chain Reaction Theoretischer Hintergrund - 2 -

Grundlagen der Klonierung. Analytische Methoden der Biologie SS09 7 Klonierung und Gentechnik. Modul

Mycobacterium paratuberculosis

Versuchsprotokoll Klonierung eines amplifizierten PCR-Fragments. 0 Inhaltsverzeichnis

S-Dis Hotstart Polymerase

Kapillarelektrophorese DNA-Sequenzierung

5 NUKLEINSÄUREN. In diesem Versuch wird ein kommerzielles Plasmid (plitmus38, Firma: NEB, siehe Abbildung) eingesetzt.

Versuchsanleitung: RFLP als Modell für einen DNA-Fingerprint

1 Einleitung Material und Methoden... 15

Mycoplasma gallisepticum

Charakterisierung eines Borna Disease Virus-spezifischen T-Zell-Epitops der Lewis Ratte und Einsatz dieses Epitops in Immunisierungsexperimenten

Borrelia burgdorferi s.l.

PROTRANS Elektrophorese Equipment

Praktikum Biochemie Biotechnologie (Molekularbiologie & Biochemie) Bettina Siebers

Novartis Pharma AG Schullabor. Plasmid-DNA. Auf der Suche nach dem Antibiotikaresistenz Gen 2019 / 1

Bioinformatik I: Grundlagen der Gentechnik

1. EINLEITUNG Der eukaryontische Translationsinitiationsfaktor 5A (eif5a) Der Polyaminbiosyntheseinhibitor Agmatin...

GVO-Screening Kit. Nachweis von gentechnischen Veränderungen mittels Polymerasekettenreaktion (PCR)

Molekulare Verfahren im Kontext mit klinischer Praxis und Bestandsbetreuung beim Schwein

Abkürzungen...VI. 1 Einleitung Das Immunorgan Darm Das Immunsystem des Darms (GALT)...2

Zellbiologie und Physiologie Labormethoden der Biologie

Modul biol113: Zellbiologie

Ascorbinsäure und Ascorbinsäuresynthese. bei Invertebraten. eine vergleichende Analyse

Bioanalytik-Vorlesung. Vorlesung Bioanalytik/ Westfälische Hochschule WS 1015/16

1 EINLEITUNG Epilepsie Fokale Epilepsie und Temporallappen-Epilepsie... 2

Inauguraldissertation zur Erlangung der medizinischen Doktorwürde der Charité Universitätsmedizin Berlin Campus Benjamin Franklin

High Yield-Polymerase

Zellbiologie und Physiologie Labormethoden der Biologie

GEBRAUCHSANLEITUNG. BlueMarine 100 BlueMarine 200 BlueMarine HTS. Horizontale Elektrophorese-Kammer

3,58 g 0,136 g. ad 100 ml

Protokoll zur Übung PCR

SERVA ProteinStain Fluo-Y Sensitive Fluoreszenz-Proteinfärbung für Polyacrylamidgele

Modul biol110/310: Zellbiologie

Robin Martin. Elektrophorese. von Nucleinsäuren

Sequenzierung. Aufklärung der Primärstruktur von DNA. Biotechnik Kurs WS 2006/07

Restriktion zweier Plasmide zur Erstellung einer physikalischen Karte, Grundlagen der DNA- Trennung und Analyse über Agarosegele

'Agaroselels große DNA-Fragmente im Ethidiumbromid-gefärbten Agarosegel normalenrueise

Charakterisierung von Transkripten mittels RT-PCR

Inhalt 1 Modellorganismen

Bestimmung des Schlüsselenzyms für den biologischen Abbau mittels der Planreal DNA-Methodik PRA-DNA

vwf-agarose Datenblatt (Nur für die Forschung) Artikel-Nr. BS Mindestens haltbar bis: Bio&SELL

Chlamydia sp. BACTOTYPE PCR Amplification Kit. Gebrauchsanweisung. Labor Diagnostik Leipzig

CYCLER CHECK. Testkit zur Überprüfung der Temperaturuniformität in Thermocyclern. gebrauchsfertig vorgetropft. REF 7104 (10 Tests) REF (4 Tests)

Abb. 1: Strukturformel von L-Arginin; Molekulargewicht 174,20 g/mol; Summenformel C 6 H 15 N 4 O 2. 6

Gentechnologie: Isolierung und Charakterisierung von DNA

Entwicklungsbiologie der Pflanzen biol 117

PCR (polymerase chain reaction)

AdnaTest ER/PR-Detect

Genetik Praktikumsklausur SS2005

Praktikumsteil: 3 - RACE-PCR und Klonierung von MADS-Box- Genen aus Monokotylen

Modul biol113: Zellbiologie

Anwendungsbericht zur Herstellung des Proteins GST-GFP-NLS

Sequenzierung. Sequenzierung. DNA in den letzten 50 Jahren. Warum Sequenzierung

Die RT-PCR Untersuchungen wurden anhand 27 Struma nodosa- (siehe Tab. 7) und 15 Adenom- (siehe Tab. 11) Präparaten durchgeführt.

Praktikum der Molekulargenetik

Medizinische Fakultät Auswertestrategien von Microarrays Einführung

3 GFP green fluorescent protein

AdnaTest EMT-2/StemCell Add-on ProstateDetect

Praktikum Biochemie Einführung in die Molekularbiologie. Bettina Siebers

Tierartbestimmung mittels spezifischer Polymerasekettenreaktion

Integron und Integrase

Protokoll Versuch A1 Klonierung des Tyro3-D1D2-Fragments mittels PCR

Transkript:

Modul biol113 Zellbiologie Drosophila melanogaster Komponenten der angeborenen Immunabwehr

Experimente 1) RT (Reverse Transkriptase)-PCR zum Nachweis einer AMP- Expression nach Infektion 1.1 PCR-Reaktion 1.2 Gel-Elektrophorese (klassisch) 2) LacZ-Färbung infizierter Drosophila- Larven

Versuchsansatz Kontrolle Infektion 24 h Analysen 1) Änderungen in den Transkriptmengen antimikrobieller Peptidgene à RT-PCR 2) Histologische Analyse der induzierten Expression antimikrobieller Peptidgene mittels Reporterstämmen à Enzymfärbung

1) Kontrolle Infektion mrna mrna ss-cdna ss-cdna RT-PCR RT-PCR

Kontrolle Infektion mrna mrna ss-cdna ss-cdna RT-PCR RT-PCR

3 unterschiedliche cdnas als Template A B C RT-PCR wird pipettiert (ACHTUNG 6 Reaktionen in kleinen Tubes) Kontrollgen = rpl32 AMPgen = dipt PCR-reaktion 45 min PCR-Proben für das Gel vorbereiten (+5 µl Ldye pro Reaktion) Gel laufen lassen (ca. 20 min) & analysieren

DNA-Elektrophorese Ethidiumbromid Ethidium bromide

DNA-Elektrophorese Alternative Färbung mit MidoriGreen Anregung mit blauem Licht Direkte Ansicht der Proben Ungiftig, nicht mutagen ABER: Nitrilhandschuhe verwenden Sie bitte trotzdem zur Sicherheit.

Analytische Gelelektrophorese 1. 10 µl PCR Produkt inkl. Ladepuffer 2. Geben Sie DNA-Mix in die Taschen des Gels 3. Legen Sie ein Spannungsfeld an. Run to Red (Anode +) 4. Aufnahme des Gels

Ablauf/Pipettierschema RT-PCR 1 Mastermix vorbereiten Menge Substanz 2 Eppis beschriften 6 Tubes á 0,2 ml 6 4 1,5 ml Probe A B C je 2 µl 70 µl 5 X-Puffer 14 µl dntps (2,5 µm each) 3,5 µl Taq-Polymerase 220 µl H 2 O Auf EIS halten!!!! 5 Kontrollgen LDye je +5 µl rpl32 44 µl DECKEL auch beschriften AMPgen dipt R = rpl32 je 10 µl 1-A-R 7 Primerpaarung Probe Gruppennummer D = dipt 3 RS RAS Primer DS DAS je 0,5 µl

Pipettierschema Gelelektrophorese Kammer 1 50bp 50bp rpl32 dipt rpl32 dipt Gruppe 1 Gruppe 2 50bp 50bp rpl32 dipt rpl32 dipt Gruppe 3 Gruppe 4 50bp 2 µl je 10 µl (inkl. LDye)

Pipettierschema Gelelektrophorese Kammer 2 50bp 50bp rpl32 dipt rpl32 dipt Gruppe 5 Gruppe 6 50bp 50bp rpl32 dipt rpl32 dipt Gruppe 7 Gruppe 8 50bp 2 µl je 10 µl (inkl. LDye)

Versuchsansatz Dipt-Promotor Lac-Z (ß-Galactosidase) Kontrolle Infektion I Infektion II 24 h 24 h

LacZ-Färbung X-Gal 5-Brom-4-chlor-3-indoxyl-β-Dgalactopyranosid 5-Brom-4-chlor-indoxyl 5, 5 -Dibrom-4,4 -dichlor-indigo Blauer Farbniederschlag ß-Galaktosidasen spalten ß-glycosidische Bindungen X-Gal ist ein Farbstoff, der nach Umsetzung einen blauen Niederschlag liefert

3 unterschiedliche Schalen/Proben mit Larven 1 a) b) c) d) e) f) 2 3 Färbelösung ansetzen Larven präparieren (aufreißen, Gewebe freilegen) Fixieren der Larven (ca. 20 min) Waschen mit Puffer (2-3 X) Färben mit Färbelösung Analysieren/Skizzieren Dipt-Promotor Lac-Z (ß-Galactosidase)

Ablauf LacZ-Färbung 1 Färbelösung vorbereiten 2 Fixierlösung vorbereiten 300 µl 3 Gewebe präparieren 4 20 min fixieren 6 Färbung 37 C (5-10 min) je 300 µl 5 1xPBS Waschen 3x 5 min je 300 µl 1

Zeitplan 1) Vorbesprechung 2) Ansetzen der PCR 3) Start der PCR 4) X-Gal in die Färbelösung geben (37 C) 5) Präparation der Gewebe für die histologische Analyse 6) Fixierung der Gewebe (15-20 min) 7) Waschen der Gewebe (3 X 2 min) 8) Färbelösung auf die Gewebe (s.4) 9) Vorbereitung der PCR-Proben für die DNA Elektrophorese 10) Beladen der Gele (Gele laufen lassen) 11) Analyse der Färbungen 12) Analyse der Gele

Modul biol113 Zellbiologie Drosophila melanogaster Komponenten der angeborenen Immunabwehr NACHBESPRECHUNG

cdna-sythese (mittels RT) & anschließende PCR = hier RT-PCR http://www.chimicare.org

Unterschiede: PCR Drosophila vs PCR C. elegans Einsatz des Templates Drosophila PCR - cdna (aus mrna geschrieben) C.ele. PCR - genomische DNA PCR mit cdna Ermöglicht die Analyse exprimierter Gene Überprüfung ob Transkripte vorhanden sind PCR mit gdna Ermöglicht genomische Unterschiede zu identifizieren z.b. Deletionen, Duplikationen

Auswertung Gelelektrophorese rpl32 dipt 50bp A B C A B C

Auswertung Gelelektrophorese rpl32 dipt 50bp A B C A B C

Auswertung LacZ-Färbung???

Auswertung LacZ-Färbung keine bis leichte Färbung Färbung im Darm Färbung des Fettkörpers

Auswertung LacZ-Färbung keine bis leichte Färbung Färbung im Darm Färbung des Fettkörpers???

Auswertung LacZ-Färbung keine bis leichte Färbung Färbung im Darm Färbung des Fettkörpers nur geringe Konz. an AMPS Orale Infektion LOKALE IA Infektion Hämolymphe SYSTMISCHE IA

Auswertung LacZ-Färbung keine bis leichte Färbung Färbung im Darm Färbung des Fettkörpers nur geringe Konz. an AMPS Orale Infektion LOKALE IA Infektion Hämolymphe SYSTMISCHE IA

Immunabwehr in Drosophila - ein kleiner Überblick zum Schluss - NUR ein angeborenes Immunsystem vorhanden Unterscheidung in à Humorale Abwehr AMPs ROS à Zelluläre Abwehr ROS Plasmatozyten (Phagozytose) Lamellozyten (Einkapselung) Kristallzellen (Melanisierung) Abbildungen-The Host Defense of Drosophila melanogaster Bruno Lemaitre & Jules Hoffmann, 2006