VIROLOGISCHE DIAGNOSTIK

Transkript

1 VIROLOGISCHE DIAGNOSTIK Medizinische Universität Wien D e p a r t m e n t f ü r V i r o l o g i e Kinderspitalgasse 15, 1095 Wien I n f o r m a t i o n s b r o s c h ü r e z u r D u r c h f ü h r u n g v o n L a b o r l e i s t u n g e n S t a n d : 0 6 /

2 I N H A LT SV E R Z E I C H N I S I N H A L T S V E R Z E I C H N I S WICHTIGE TELEFONNUMMERN UND DIENSTZEITEN: Probenannahme: Mo bis Do von 8:00 bis 16:00 Uhr, Fr von 8:00 bis 15:00 Uhr (in dringenden Fällen nach Absprache auch ausserhalb dieser Zeiten) Tel.: e - m a i l : probenannahme-virologie@meduniwien.ac.at Fax: Allgemeine Auskunft: Mo bis Do von 8:00 bis 17:00 Uhr Fr. von 08:00 bis 16:00 Uhr Tel.: o d e r Ärztliche Beratung und Auskunft: Mo bis Do von 8:30 bis 16:30 Uhr Fr. von 08:30 bis 16:00 Uhr Tel.: Ordination (Blutabnahme, FSME-Impfung, etc.): Mo bis Fr. von 14:00 bis 15:00 Uhr und Do zusätzlich von 17:00 bis 18:00 Uhr Wichtige Telefonnummern 4-5 Probenkennzeichnung, Zuweisungsscheine 6-7 Abkürzungen 8-9 Dauer der Ergebnisse und Befundübermittlung 10 Geeignetes Untersuchungsmaterial und Probenvolumina () für die Abklärung von best. klinischen Bildern Untersuchungsmaterial: Abnahme, Lagerung und Transport Anleitung zur Gewinnung von Untersuchungsmaterialien Beispiele von Röhrchen und Transportmedien für den sicheren Transport 34-39

3 1 Wichtige Telefonnummern und Ansprechpartner VIRUS- UND TESTSPEZIFISCHE BERATUNGEN: 1 W I C H T I G E T E L E F O N N U M M E R N U N D A N S P R E C H PA RT N E R HIV Laborleiterin: Prof. Dr. Elisabeth Puchhammer PROBENANNAHME Bereichsleiterin: Prof. Dr. Heidemarie Holzmann probenannahme-virologie@meduniwien.ac.at ALLGEMEINE AUSKUNFT ÄRZTLICHE BERATUNG UND AUSKUNFT VERRECHNUNG KRANKENKASSEN PRIVAT- UND KRANKENHAUS Bereichsleiterin: Prof. Dr. Heidemarie Holzmann HEPATITIS INFEKTIONEN Laborleiterin: Prof. Dr. Heidemarie Holzmann FSME UND FLAVIVIRUS INFEKTIONEN Laborleiterin: Prof. Dr. Heidemarie Holzmann VIRUSNUKLEINSÄURENACHWEIS (PCR) oder Laborleiter: Prof. Dr. Stephan Aberle RESISTENZBESTIMMUNGEN Laborleiterin: Prof. Dr. Elisabeth Puchhammer QUALITÄTSMANAGEMENT QMB: Prof. Dr. Stephan Aberle QM: Karin Stibl Ing. Karin Festl EDV Martin Probst Karin Stibl Bernhard Rezucha ANTIKÖRPERNACHWEIS oder Laborleiterin: Prof. Dr. Heidemarie Holzmann VIRUSNACHWEIS Laborleiterin: Prof. Dr. Theresia Popow-Kraupp TELEFONISCHE ANKÜNDIGUNG VON PROBEN bei Verdacht auf eine Infektion mit hochpathogenen Viren (SARS, Vogelinfluenza,...)

4 2 Allgemeine Hinweise: Probenkennzeichnung, Zuweisungsscheine 2 PROBENKENNZEICHNUNG UND ANFORDERUNGSSCHEINE Am Kopf des Zuweisungsscheines finden Sie sowohl Felder für die Angabe der Einsender- als auch der patientenrelevanten Daten. Am Fuß des Zuweisungsscheines finden sie die Klebeetiketten für die Probenröhrchen. Bitte tragen Sie alle erforderlichen Daten, vor allem die Sozialversicherungsnummer, sowie die Art des entnommenen Materials und das Datum der Probenentnahme gut leserlich in die dafür vorgesehenen Felder ein (siehe rechtsstehende Abbildung). Krankheitsbeginn, Symptome, Schwangerschaft, bisherige Therapie, Auslandsaufenthalte, passive bzw. aktive Immunisierung (Datum der letzten Impfung, Anzahl der Impfungen) sind für eine gezielte Untersuchung und für die ausführliche Interpretation der Testergebnisse besonders wichtig. Bitte versehen Sie jedes Röhrchen (gut verschraubt) mit einer (der auf der unteren Seite unserer Zuweisungsscheine befindlichen) Klebeetikette, die Sie vorher beim Ausfüllen der Zuweisungsscheine mit Name und Vorname des Patienten beschriftet haben. KLEBEETIKETTE: BITTE BESCHRIFTEN SIE JEDES PROBERÖHRCHEN UNBEDINGT MIT EINER KLEBEETIKETTE, DIE SIE AM FUSS DES ZUWEISUNGSSCHEINES FINDEN! 6 7

5 3 Abkürzungen 3 ABKÜRZUNG BEDEUTUNG ABKÜRZUNG BEDEUTUNG Ad Ad e n o Vi r e n H T LV H u m a n e s T - Z e l l - Le u k ä m i e v i r u s Ag A n t i g e n I F T I m m u n f l u o r e s z e n z t e s t A K A n t i k ö r p e r I n f I n f l u e n z a Vi r u s A s t r o A s t r o v i r e n I g A ( A n t i k ö r p e r d. K l a s s e ) I m m u n g l o b u l i n A B K B K Vi r u s I g G ( A n t i k ö r p e r d. K l a s s e ) I m m u n g l o b u l i n G CC R 5 CC - C h e m o k i n - Re z e p t o r 5 I g M ( A n t i k ö r p e r d. K l a s s e ) I m m u n g l o b u l i n M Co r Co r o n a Vi r e n J C J C Vi r u s Co x Co x s a c k i e Vi r e n K B R Ko m p l e m e n t - B i n d u n g s r e a k t i o n C M V / Cy t Cy t o m e g a l i e Vi r u s LC M Ly m p h o c y t ä r e s C h o r i o m e n i n g i t i s Vi r u s E A E a r l y A n t i g e n ( E B V ) M a M a s e r n Vi r u s EBNA Epstein-Barr-Virusspezifische nukleäre Antigene M P M y c o p l a s m a p n e u m o n i a e E B V E p s t e i n - B a r r - Vi r u s M u M u m p s Vi r u s E L I S A E n z y m e l i n k e d i m m u n o s o r b e n t a s s a y M u / K i M u t t e r / K i n d E n t E n t e r o Vi r e n N o r o N o r o Vi r e n F S M E Fr ü h s o m m e r - M e n i n g o e n z e p h a l i t i s Vi r u s N T N e u t r a l i s a t i o n s t e s t H AV H e p a t i t i s A Vi r u s N w N a c h w e i s H b c H e p a t i t i s - B - c o r e O r O r n i t h o s e H b e H e p a t i t i s - B - e Pa r v o Pa r v o v i r u s B 1 9 H b s H e p a t i t i s - B - s u r f a c e Pa r a Pa r a i n f l u e n z a Vi r e n H B V H e p a t i t i s B Vi r u s P C R Po l y m e r a s e Ke t t e n r e a k t i o n H C V H e p a t i t i s C Vi r u s Po l i o Po l i o Vi r u s H DV H e p a t i t i s D Vi r u s Q F Q - Fi e b e r H E V H e p a t i t i s E Vi r u s R h i n o R h i n o Vi r e n H GV H e p a t i t i s G Vi r u s Rö Rö t e l n Vi r u s H H T H ä m m a g g l u t i n a t i o n s - H e m m t e s t Ro Ro t a Vi r u s H H V H u m a n e H e r p e s Vi r e n R SV Re s p i r a t o r y Sy n c y t i a l Vi r u s H I V H u m a n e s I m m u n d e f i z i e n z v i r u s S A R S S c h w e r e s A k u t e s Re s p i r a t o r i s c h e s Sy n d r o m H P V H u m a n e Pa p i l l o m Vi r e n VC A Vi r u s C a p s i d A n t i g e n ( E B V ) H SV H e r p e s S i m p l e x Vi r u s V I S Vi r u s i s o l i e r u n g 8 V Z V Va r i z e l l e n Z o s t e r Vi r u s 9

6 4 Dauer der Ergebnisse und Befundübermittlung 5 DAUER DER ERGEBNISSE UND BEFUNDÜBERMITTLUNG ANTIKÖRPERNACHWEIS (KBR, ELISA, HHT, IFT, NT, Immunoblot): Ergebnisdauer (Durchschnitt) 2. Arbeitstag nach Probeneingang Ausnahme: Neutralisationstest Ergebnisdauer (Durchschnitt): 6. Arbeitstag nach Probeneingang VIRUSNACHWEIS: Virusisolierung: Abrufbares Ergebnis durchschnittlich ab: 3. bis 10. Arbeitstag nach Probeneingang (bei pos. Proben abhängig von der Viruskonzentration im klin. Material; bei neg. Proben mind. eine Blindpassage erforderlich) Ag-ELISA: Abrufbares Ergebnis durchschnittlich ab : 1. Arbeitstag nach Probeneingang PCR: Abrufbares Ergebnis durchschnittlich ab: 1. bis 2. Arbeitstag nach Probeneingang Ausnahme: Bestimmung der antiviralen Resistenzen mittels Sequenzanalyse: Abrufbares Ergebnis durchschnittlich ab: 4. bis 7. Arbeitstag nach Probeneingang Art der Befundübermittlung: Schriftliche Befunde werden am Tag der Ergebniseingabe per Post versendet. Auf Wunsch können Befunde per Fax oder elektronischem Befundversand übermittelt werden. Achtung: Schriftliche Einwilligung zum Faxen von Befunden notwendig!!! GEEIGNETES UNTERSUCHUNGSMATERIAL IM HINBLICK AUF KLINISCHE ERKRANKUNGEN Eine Auflistung, der für die einzelnen klinischen Erkrankungen in Frage kommenden Viren finden Sie auf unseren Zuweisungsscheinen unter dem jeweiligen, dem klinischen Erscheinungsbild zugeordneten Untersuchungsblock. Virale Infektionen des Nervensystems 12 Virale Infektionen der Atemwege 13 Virale Infektionen des Herzens 14 Virale Infektionen des Magen-, Darmtraktes 15 Virale Infektionen der Haut Intrauterine/Perinatale Virusinfektionen Postnatale Virusinfektionen 20 Immunsupprimierte Patienten (Screening) Unklares, fieberhaftes Zustandsbild 23 Lymphknotenschwellung 24 Virale Infektionen der Speicheldrüse 24 Virale Infektionen während/nach Auslandsaufenthalt 25 Verdacht auf genitale Papillom-Virusinfektionen 25 HIV 26 Hepatitis 27 Immunitätsbestimmung 28 Anleitung zur Gewinnung von Untersuchungsmaterialien 32 10

7 Geeignetes Untersuchungsmaterial im Hinblick 5 5 auf klinische Erkrankungen V I R A L E I N F E K T I O N E N D E S N E R V E N SY ST E M S Für die optimale Abklärung von viralen Infektionen des Nervensystems empfehlen wir Liquor, Rachenspülflüssigkeit, Stuhl, Serum einzusenden BLOCK Neurotrope Viren Methode Material zellhaltiger Liquor, nativ 0,5-1 ml Serum 1 ml Stuhl bohnengroßes Stk. zellhaltiger Liquor, nativ 0,5-1 ml Rachenspülflüssigkeit mit steriler, physiologischer Kochsalzlösung 2-5 ml oder bei Kleinkindern abgesaugtes Rachensekret 0,5-1 ml IFT Serum 50 µl (KBR) 10 µl (ELISA, IFT) Liquor 100 µl (ELISA, IFT) V I R A L E I N F E K T I O N E N D E R AT E M W E G E Für die optimale Abklärung von viralen Infektionen der Atemwege empfehlen wir Respiratorische Sekrete bzw. Nasen- Rachenabstrich, Serum einzusenden BLOCK Pneumonie Methode Material Antigennachweis Serum (nur bei Schulkindern und Erwachsenen) 1 ml HHT Bei Schulkindern und Erwachsenen Nasen-Rachenabstrich in 1 ml steriler, physiologischer Kochsalzlösung oder in Transportmedium (kann bei uns angefordert werden) 1 ml oder bei Säuglingen und Kleinkindern abgesaugtes Nasen-Rachensekret 0,5-1 ml Bronchiallavage 1 ml Bei Schulkindern und Erwachsenen Nasen-Rachenabstrich Antigennachweis in 1 ml steriler, physiologischer Kochsalzlösung oder in Transportmedium (kann bei uns angefordert werden) 1 ml oder bei Säuglingen und Kleinkindern abgesaugtes Nasen-Rachensekret 0,5-1 ml Bronchiallavage 1 ml Serum (nur bei Schulkindern und Erwachsenen) 50 µl (KBR) 100 µl (HHT) 12 13

8 Geeignetes Untersuchungsmaterial im Hinblick 5 5 auf klinische Erkrankungen V I R A L E I N F E K T I O N E N D E S H E R Z E N S Für die optimale Abklärung von viralen Infektionen des Herzens empfehlen wir Rachenspülflüssigkeit, Stuhl, Serum einzusenden BLOCK Myocarditis Methode Material Rachenspülflüssigkeit mit steriler, physiologischer Kochsalzlösung 2-5 ml oder bei Säuglingen und Kleinkindern abgesaugtes Nasen-Rachensekret Stuhl bohnengroßes Stk. Serum (Parvo) 0,5 ml Serum 1 ml Rachenspülflüssigkeit mit steriler, physiologischer Kochsalzlösung oder bei Säuglingen und Kleinkindern abgesaugtes Nasen-Rachensekret 2-5 ml Stuhl bohnengroßes Stk. Serum 0,5 ml Serum 50 µl (KBR) 10 µl (ELISA) V I R A L E I N F E K T I O N E N D E S M AG E N -, DA R M T R A K T E S Für die optimale Abklärung von viralen Infektionen des Magen-, Darmtraktes empfehlen wir Rachenspülflüssigkeit, Stuhl, Serum einzusenden BLOCK Gastroenteritis Methode Material Antigennachweis Serum 500 µl Antigennachweis Rachenspülflüssigkeit mit steriler, physiologischer Kochsalzlösung 2-5 ml oder bei Kleinkindern abgesaugtes Rachensekret 0,5 ml Stuhl bohnengroßes Stk. Stuhl bohnengroßes Stk. Rachenspülflüssigkeit mit steriler, physiologischer 2-5 ml Kochsalzlösung oder bei Kleinkindern abgesaugtes Rachensekret 0,5-1 ml Serum 50 µl (KBR) 10 µl (ELISA) 14 15

9 Geeignetes Untersuchungsmaterial im Hinblick 5 5 auf klinische Erkrankungen V I R A L E I N F E K T I O N E N D E R H AU T Für die optimale Abklärung von viralen Infektionen der Haut empfehlen wir Rachenspülflüssigkeit, Stuhl, Serum, Harn, Bläschenabstrich einzusenden BLOCK Exanthem Methode Material Bläschenabstrich in steriler, physiologischer Kochsalzlösung 1 ml oder in Transportmedium (kann angefordert werden) IFT Serum 1,5 ml Maculo-papuläre Exantheme: Rachenspülflüssigkeit mit steriler, physiologischer Kochsalzlösung IFT 2-5 ml oder bei Kleinkindern abgesaugtes Rachensekret 0,5-1 ml Stuhl bohnengroßes Stk. Serum 50 µl Harn 1-5 ml Serum 50 µl (KBR) 10 µl (ELISA, IFT) Vesiculäre Exantheme: Bläschenabstrich in steriler, physiologischer Kochsalzlösung oder in Transportmedium (kann angefordert werden) 0,5-1 ml Rachenspülflüssigkeit mit steriler, physiologischer 2-5 ml Kochsalzlösung oder bei Kleinkindern abgesaugtes Rachensekret 0,5-1 ml Stuhl bohnengroßes Stk. IFT Serum 50 µl (KBR) 10 µl (ELISA, IFT) 16 17

10 Geeignetes Untersuchungsmaterial im Hinblick 5 5 auf klinische Erkrankungen I N T R AU T E R I N E / P E R I N ATA L E V I R U S I N F E K T I O N E N Für die optimale Abklärung von intrauterinen/perinatalen Virusinfektionen empfehlen wir Nabelschnurblut, Fruchtwasser, Serum (Mutter/Kind), Liquor, Nasen-, Rachensekret, EDTA-Blut, Stuhl, Harn, Abstrichmaterial einzusenden BLOCK Intrauterine/ perinatale Infektionen Methode Material HHT Fruchtwasser 1 ml Nabelschnurblut (EDTA) 1 ml EDTA-Blut 1 ml Serum (Mutter/Kind) 600 µl Nabelschnurblut (EDTA) 500 µl Nasen-Rachensekret 0,5-1 ml Harn 1-5 ml Verdacht auf pränatale Infektion: HHT Nabelschnurblut (EDTA) 1 ml Harn (vom Kind in der 1. Lebenswoche) 1-5 ml Fruchtwasser 500 µl Nabelschnurblut (EDTA) 1 ml mütterliches Serum 50 µl Verdacht auf perinatale Infektion: Liquor 1 ml EDTA-Blut 1 ml Nasen-Rachensekret 0,5-1 ml Abstrichmaterial in steriler, physiologischer Kochsalzlösung oder in Transportmedium (kann bei uns angefordert werden) 0,5-1 ml Stuhl bohnengroßes Stk. Harn 1-5 ml HHT 50 µl (KBR) kindliches Serum 100 µl (HHT) 10 µl (ELISA) 50 µl (KBR) mütterliches Serum 100 µl (HHT) 10 µl (ELISA) 18 19

11 5 Geeignetes Untersuchungsmaterial im Hinblick auf klinische Erkrankungen 5 P O ST N ATA L E V I R U S I N F E K T I O N E N Für die optimale Abklärung von postnatalen Virusinfektionen empfehlen wir Liquor, Rachensekret, Serum, EDTA-Blut, Harn, Stuhl, Abstrichmaterial einzusenden Liquor 1 ml abgesaugtes Nasen-Rachensekret 0,5-1 ml EDTA-Blut 1 ml Stuhl bohnengroßes Stk. Harn 1-5 ml Abstrichmaterial in steriler, physiologischer Kochsalzlösung oder in Transportmedium (kann bei uns angefordert werden) 0,5-1 ml HHT 50 µl (KBR) kindliches Serum 10 µl (ELISA) 100 µl (HHT) 50 µl (KBR) mütterliches Serum 10 µl (ELISA) 100 µl (HHT) I M M U N S U P P R I M I E R T E PAT I E N T E N ( S C R E E N I N G ) Für die optimale Überwachung von immunsupprimierten Patienten empfehlen wir Rachenspülflüssigkeit, Harn, Serum, EDTA-Blut einzusenden BLOCK Organtransplantation Methode. Material IFT EDTA-Blut 2 ml Rachenspülflüssigkeit mit steriler, physiologischer Kochsalzlösung 1-2 ml oder bei Säuglingen und Kleinkindern abgesaugtes Nasen-Rachensekret 0,5-1 ml Harn 1-5 ml Serum 600 µl Rachenspülflüssigkeit mit steriler, physiologischer Kochsalzlösung 1-2 ml oder bei Säuglingen und Kleinkindern abgesaugtes Antigennachweis Nasen-Rachensekret 0,5-1 ml EDTA-Blut 2 ml Harn 1-5 ml F O R T S E T Z U N G N Ä C H S T E S E I T E! 20 21

12 Geeignetes Untersuchungsmaterial im Hinblick 5 5 auf klinische Erkrankungen F O R T S E T Z U N G : I M M U N S U P P R I M I E R T E PAT I E N T E N ( S C R E E N I N G ) Für die optimale Überwachung von immunsupprimierten Patienten empfehlen wir Rachenspülflüssigkeit, Harn Serum, EDTA-Blut einzusenden Resistenzbestimmung bei antiviraler Therapie gegen CMV Sequenzanalyse Harn 1-5 ml EDTA-Blut 2 ml Rachenspülflüssigkeit mit steriler, physiologischer Kochsalzlösung 1-2 ml Resistenzbestimmung bei antiviraler Therapie gegen HSV, VZV (Phenotyp) (abgesaugtes) Rachensekret 0,5-1 ml Bläschenabstrich in steriler, physiologischer Kochsalzlösung oder in Transportmedium (kann bei uns angefordert werden) 500 µl IFT Serum 50 µl (KBR) 20 µl (ELISA, IFT) U N K L A R E S, F I E B E R H A F T E S Z U STA N D S B I L D Für die optimale Abklärung von einem unklaren, fieberhaften Zustandsbild empfehlen wir Stuhl, Nasen-, Rachenabstrich, Harn, Serum einzusenden BLOCK Status febrilis Methode Material IFT Serum 1,5 ml Antigennachweis Stuhl bohnengroßes Stk. Nasen-Rachenabstrich in steriler, physiologischer Kochsalzlösung oder in Transportmedium (kann bei uns angefordert werden) 0,5 ml oder bei Säuglingen und Kleinkindern abgesaugtes Nasen-Rachensekret 0,5-1 ml EDTA-Blut 2 ml IFT Harn 1-5 ml Serum 50 µl (KBR) 20 µl (ELISA, IFT) 22 23

13 5 Geeignetes Untersuchungsmaterial im Hinblick auf klinische Erkrankungen 5 LY M P H K N OT E N S C H W E L LU N G Für die optimale Abklärung von Lymphknotenschwellungen empfehlen wir Serum einzusenden BLOCK Lymphknoten Methode. Material IFT Serum 1,5 ml IFT Immunoblot Serum 50 µl (KBR) 20 µl (ELISA, IFT) 200 µl (Immunoblot) V I R A L E I N F E K T I O N E N D E R S P E I C H E L D R Ü S E Für die optimale Abklärung von viralen Infektionen der Speicheldrüse empfehlen wir Serum, Harn, Speichel einzusenden BLOCK Parotitis Methode Material IFT Serum 1 ml Harn (Mumps) 1-5 ml Speichel (Mumps) 0,5-1 ml IFT Serum 50 µl (KBR) 20 µl (ELISA, IFT) V I R A L E I N F E K T I O N E N WÄ H R E N D / N A C H E I N E M AU S L A N D S AU F E N T H A LT Für die optimale Abklärung von viralen Infektionen nach einem Aufenthalt im Ausland (Fernreisen) empfehlen wir Serum einzusenden HHT Immunoblot 250 µl (HHT) Serum 50 µl (ELISA) 200 µl (Immunoblot) EDTA-Blut 3 ml V E R DA C H T AU F G E N I TA L E PA P I L LO M - V I R U S I N F E K T I O N E N Für die optimale Abklärung eines Verdacht es auf eine Papillom-Virusinfektion empfehlen wir Abstrich mit speziellem Abnahmebesteck (kann bei uns angefordert werden) Nukleinsäurenachweis Abstrich mit speziellem Abnahmebesteck (kann bei uns angefordert werden) lt. Angabe 24 25

14 5 Geeignetes Untersuchungsmaterial im Hinblick auf klinische Erkrankungen 5 H I V Für die optimale Abklärung oder Überwachung von HIV -Infektionen empfehlen wir EDTA-Blut, EDTA-Plasma, Serum einzusenden EDTA-Blut 3 ml Antigennachweis EDTA-Plasma 1,5 ml Resistenzbestimmung Sequenzanalyse EDTA-Blut 5-10 ml Immunoblot Antigennachweis Serum (MIN.!) 0,5-1 ml EDTA-Plasma CCR-5 EDTA-Blut 1 ml H E PAT I T I S Für die optimale Abklärung einer Virushepatitis empfehlen wir EDTA-Blut, Serum einzusenden BLOCK Hepatitis Hep. A, B, C Methode Material Serum 1,5 ml Hep. A Serum 0,6 ml Hep. B (Abklärung) Serum 1 ml Hep. B (Verlauf u. Prognose) Serum 1,2 ml Hep. C Serum 0,5 ml Serum Antigennachweis 0,5 ml (PCR) 0,7 ml (Antigennachw.) Resistenzbestimmung Sequenzanalyse Serum 0,5 ml Serum 0,7 ml Immunoblot IL28B-Polymorphismus Sequenzanalyse EDTA-Blut 3 ml 26 27

15 5 Geeignetes Untersuchungsmaterial im Hinblick auf klinische Erkrankungen Untersuchungsmaterial: Abnahme, Lagerung und Transportbedingungen 6 IMMUNITÄTSBESTIMMUNG LAGERUNG UND TRANSPORT VIRUS gegen Masern, Mumps, Parvo, VZV, FSME gegen FSME bei Personen mit einer Impfanamnese gegen Gelbfieber und Japan B Enzephalitis: Achtung: Aufgrund von Kreuzreaktionen zwischen nah verwandten Flaviviren (FSME-Virus, Gelbfieber-Virus, etc.) ist die Durchführung eines NT notwendig (misst die FSME spezifischen Antikörper) gegen Röteln gegen Polio (1, 2, 3) gegen Hepatitis A+B gegen Influenza A/B gegen Tollwut METHODE ELISA IgG NT HHT NT ELISA IgG (quant.) HHT NT A ) L AG E R U N G 1) Untersuchungsmaterial für den SERUM UND LIQUOR möglichst nicht länger als 24 Stunden bei Raumtemperatur möglichst nicht länger als 72 Stunden bei 2 bis 8 Celsius längere Lagerung unter 18 Celsius 2) Untersuchungsmaterialien für den a) Stuhl, Harn, zellhaltiger Liquor, Bläschenabstriche, Nasen- Rachensekrete, Nasen-Rachenabstriche, Lavagen, Punktate, Gewebeproben, z.b. Biopsie- bzw. Leichenmaterial (immer in steriler, physiologischer Kochsalzlösung oder in geeignetem Transportmedium*) etc. VIRUSISOLIERUNG Materialien unbedingt so schnell wie möglich in das Labor transportieren Transportdauer sollte 24 Stunden nicht überschreiten Ausnahme: Bei Probengewinnung am Wochenende oder Feiertag. Aufbewahrung bei 2 bis 8 Celsius (nicht einfrieren) b) Nasen-, Rachensekret- und -abstriche, Bronchialsekret, Stuhl AG-ELISA Materialien unbedingt so schnell wie möglich in das Labor transportieren Transportdauer sollte 24 Stunden nicht übersteigen Ausnahme: Bei Probengewinnung am Wochenende oder Feiertag. Aufbewahrung bei 2 bis 8 Celsius * kann bei uns angefordert werden 28 29

16 Untersuchungsmaterial: Abnahme, Lagerung und Transportbedingungen c) EDTA-Plasma, EDTA-Blut, Serum, Liquor, Stuhl, Harn, Abstrichmaterial, resp. Sekrete, EDTA-Knochenmark, Biopsie-, Leichenmaterial, etc. PCR 24 Stunden bei Raumtemperatur 72 Stunden bei 2 bis 8 Celsius längere Lagerung unter 18 Celsius Achtung: Bei Lagerung unter 18 Celsius muß das Material tiefgekühlt versendet werden. d) Stuhl ANTIGENNACHWEIS Materialien sollen so schnell wie möglich in das Labor transportiert werden Ausnahme: Bei Probengewinnung am Wochenende oder Feiertag. Aufbewahrung bei 2 bis 8 Celsius (nicht einfrieren). WICHTIG: Ihre Proben dürfen ausschließlich in bruchsicheren Gefäßen und von einer Schutzhülle (siehe Beispiel) umgeben per Post transportiert werden. HINWEIS: Bitte verwenden Sie sterile Röhrchen bzw.gefäße ohne Zusätze Kleine Gewebe bzw. Biopsieproben in sterilen Röhrchen mit Zusatz von ca. 1 ml 0,9%iger NaCl Lösung versenden Für die Untersuchung von Blut verwenden Sie bitte EDTA-Röhrchen KENNZEICHNUNG: UN mm 6 B) TRANSPORT Der Transport für alle genannten Materialien sollte über ein eigenes Transportsystem oder per Post erfolgen. Beim Versand von "Diagnostischen Proben" per Post muss unbedingt das Gefahrgutbeförderungsgesetz (GGBG) eingehalten werden. Die Versandstücke sind mit einer Aufschrift zu kennzeichnen, die in einem, auf die Spitze gestellten Quadrat die Buchstabenkombination "UN" und die Kennzeichnungsnummer des enthaltenen Füllgutes angibt. Die Kennzeichnungsnummer bezüglich Ihrer Proben entnehmen Sie bitte dem Gefahrgutbeförderungsgesetz. Proben von Patienten mit Verdacht auf eine Infektion mit hochpathogenen Viren (SARS, Vogelinfluenza, etc.) nur nach telefonischer Vorankündigung einsenden. Bei der Beförderung muss das Gefahrgutbeförderungsgesetz (GGBG) eingehalten werden. BEISPIELE VON VERSANDSTÜCKEN MIT DIAGNOSTISCHEN PROBEN : VERPACKUNG: mindestens dreischalige Verpackung PRIMÄRGEFÄSS (Innenverpackung) max. je 100 ml ZWEITE VERPACKUNG und Aufsaugmaterial AUSSENVERPACKUNG VERSANDSTÜCK 30 31

17 7 Anleitung zur Gewinnung von Untersuchungsmaterialien 7 ANLEITUNG ZUR GEWINNUNG VON UNTERSUCHUNGSMATERIALIEN ABSTRICHMATERIAL a) Bläschenabstrich Bläschen seitlich mit einer Tuberkulinspritze anstechen und den Bläscheninhalt in die Spritze aufnehmen. Anschließend Bläscheninhalt in ein Röhrchen mit 0,5-1 ml steriler, physiologischer Kochsalzlösung oder Transportmedium (kann bei uns angefordert werden) entleeren und die Spritze damit ausspülen. Dann Bläschendeckel mit der Nadel abheben und den Bläschengrund mit einem sterilen Wattestieltupfer kräftig abstreichen und im selben Röhrchen mit steriler, physiologischer Kochsalzlösung bzw. Transportmedium ausquirlen. Vor dem Herausziehen durch Drücken gegen die Röhrchenwand auspressen. Wattestieltupfer danach entsorgen und keinesfalls in die Transportflüßigkeit abbrechen. Anschließend das Röhrchen fest verschrauben und mit einer der am Fuß unserer Laborzuweisung befindlichen Klebeetiketten, die vorher beschriftet wurde, kennzeichnen. b) Nasen-Rachenabstrich Mit einem sterilen Wattestieltupfer einen Abstrich von der Rachenschleimhaut entnehmen und in einem Röhrchen mit 0,5-1 ml steriler, physiologischer Kochsalzlösung oder Transportmedium (kann bei uns angefordert werden) ausquirlen. Anschließend denselben Wattestieltupfer zuerst in eine, dann in die andere Nasenöffnung so tief wie möglich einführen und mit drehender Bewegung Nasensekret von der Schleimhaut abstreichen. Im selben Röhrchen mit steriler, physiologischer Kochsalzlösung bzw. Transportmedium ausquirlen. Wattestieltupfer vor dem Herausziehen durch Drücken gegen die Röhrchenwand auspressen und danach entsorgen (keinesfalls in die Transportflüssigkeit abbrechen). Anschließend das Röhrchen fest verschrauben und mit einer der am Fuß unserer Laborzuweisung befindlichen Klebeetiketten, die vorher beschriftet wurde, kennzeichnen. STUHL: Ein bohnengroßes Stück in einem geeigneten Transportgefäß. HARN: Erwachsene: ml morgendlicher Mittelstrahlharn bzw Stunden Sammelharn. Säuglinge und Kleinkinder: 5-20 ml gereinigter 8-12 Stunden Sammelharn RACHENSPÜLFLÜSSIGKEIT: Mit 5-10 ml steriler, physiologischer Kochsalzlösung kräftig gurgeln und danach in ein Transportgefäß ausspucken lassen. NASEN-RACHENSEKRET: Bei Säuglingen und Kleinkindern wird 0,5-1 ml Sekret mit einem Trachealabsaugset und einer Vakuumpumpe aus der Nase und dem Rachenraum in ein Röhrchen gesaugt. GEWEBEPROBEN UND FEINNADELBIOPSIEMATERIAL: Immer nativ und in 0,5-1 ml steriler, physiologischer Kochsalzlösung bzw. Transportmedium einsenden (soll nicht austrocknen!). LIQUOR, LAVAGEN, PUNKTIONSFLÜSSIGKEITEN, MUTTERMILCH Ohne Verdünnungs- und Konservierungsmittel 1-5 ml in sterilen Röhrchen einsenden. c) Haut, Augen- und Schleimhautabstrich Gleiche Vorgangsweise wie bei Nasen-Rachenabstrich

18 7 Beispiele von Röhrchen und Transportmedien für den sicheren Transport 7 (7) BEISPIELE VON VERSCHIEDENEN RÖHRCHEN UND TRANSPORTMEDIEN VON UNTERSUCHUNGSMATERIALIEN Serum/Vollblut EDTA/Blut Liquor, nativ Abgesaugtes Nasen- Rachensekret, Bronchialsekret Versandfertig! Rachenspülflüssigkeit in steriler, physiologischer Kochsalzlösung Broncho-alveoläre Lavage Abstrichmaterial in geeignetem Transportmedium oder 500 µl steriler, physiologischer Kochsalzlösung 34 35

19 7 Beispiele von Röhrchen und Transportmedien für den sicheren Transport 7 Diverse Abstrichmaterialien, z.b. Bläschenabstrich, Cervixabstrich in 500 µl steriler, physiologischer Kochsalzlösung Harn Punktate Stuhl HINWEIS: Papillomviren nur mit speziellem Abnahmebesteck NUR für den Nachweis von Papillomviren im Cervixabstrich: Gewebeproben, Biopsiematerial in 500 µl steriler, physiologischer Kochsalzlösung oder in Transportmedium (kann bei uns angefordert werden). Sollten niemals austrocknen. Evtl. Sektions-, Leichenmaterial (klein) in steriler, physiologischer Kochsalzlösung oder in Transportmedium. Sollte niemals austrocknen. NICHT IN FORMALIN FIXIEREN! Alle Transportmedien und Bestecke für Papillomvirusnachweis können bei uns angefordert werden. Anforderungen unter: Tel.: Fax: probenannahme-virologie@meduniwien.ac.at Für alle anderen Materialien die nicht unter die angegebenen Kategorien fallen, wenden Sie sich bitte unter genannter Telefonnummer an eine unserer Mitarbeiter/innen, die Ihnen gerne weiterhelfen werden

20 7 Beispiele von Röhrchen und Transportmedien für den sicheren Transport 7 Beispiele für Transportboxen Für einen vorschriftsmäßigen Transport müssen folgende Schutzhüllen der jeweiligen Röhrchen zugeordnet werden. Beispiel 2 > für alle kurzen Röhrchen Beispiel 1 > für Urinproben u.ä. Beispiel 3 > für alle langen Röhrchen 38 39

21